单碘乙酸钠注射液诱导膝骨关节炎大鼠模型的推拿干预

膝骨关节炎（KOA）是一种常见的退行性骨关节炎，以慢性疼痛和残疾为特征，相对严重的KOA会导致关节不可逆的结构性损伤¹。KOA 的全球高患病率已成为全球公共卫生的重大挑战^2,3，^严重损害患者的生活质量 ^4,5。研究表明，KOA 影响着全球超过 2.6 亿人⁶。随着人口老龄化，我国40岁以上KOA总患病率高达17.0%，给受影响者的家庭带来了沉重的负担^7,8。

根据中医的说法，KOA属于"麻痹"的范畴⁹，《黄帝内科经》将肌腱、骨骼和肉与麻痹联系在一起。因此，我们需要注意 KOA 中软骨、肌肉、滑膜以及膝关节周围其他组织之间的联系。在现代医学中，肌肉和骨骼炎症是关节炎免疫稳态的主要组成部分，它们推动了 KOA 疼痛的进展。然而，大多数研究集中在骨关节的软骨炎症和滑膜炎症上，并且缺乏研究骨骼肌炎症现象的文章。因此，需要对骨骼肌在炎症中的作用进行更多研究，以更全面地了解KOA，并为更有效的治疗方式提供思路。在文献综述中，我们发现抑制免疫相关因子程序性死亡配体 1 （PD-L1） 加剧了 KOA 10,11 的进展，并且 IL-15 和 ^FOXO1 在 KOA¹² 患者的骨骼肌中存在差异表达，以及终末期 KOA 患者骨骼肌炎症明显^， 这也与步态的变化有关。研究表明，骨骼肌还可以分泌与炎症免疫密切相关的因子，如IL-6，TNF-α也与PD-L1通路和KOA^13,14,15密切相关。

目前，KOA 的可用治疗方法包括体重控制、运动、药物治疗和手术，通常包括关节内注射、镇痛药物、关节镜手术和膝关节假体周围截骨术¹⁶。目前，KOA疾病的进展无法完全停止或逆转，如果不清楚地了解KOA疼痛的复杂机制，KOA患者有过度使用镇痛药物和高副作用发生率的风险⁸。大多数治疗策略仅在短期内有效，并且仅关注症状的暂时缓解，而不是疾病的发病机制。因此，KOA疼痛仍然是治疗的重点和挑战，构成了严峻的临床挑战。然而，在KOA治疗中，推拿可以直接刺激患处关节周围的骨骼肌，并能提供一些好处。结合前文所述，是研究骨骼肌组织在KOA中的作用的理想疗法，阐明骨骼肌组织在炎症中的作用也可以为KOA推拿提供更好的理论支持。

研究表明，按摩疗法、整骨手法疗法和脊柱推拿可以帮助缓解疼痛和恢复身体功能^17,18。这些操作可以作用于局部炎症，并通过外部机械作用缓解痉挛和镇痛。它们可以缓解全膝关节置换术后的疼痛，减少镇痛药物的使用，促进术后恢复，改善生物力学平衡¹⁹。瑞典式按摩在治疗骨关节炎方面是可行的，可以减轻压力和提高生活质量²⁰.推拿对KOA的治疗效果已经有了一些研究。

在本次实验中，我们团队将基于MIA诱导的大鼠KOA模型，探讨骨骼肌中PD-L1及相关炎症因子的表达是否能诱导KOA并促进其发展。推拿也将实施，看看它是否可以缓解由炎症因子表达增加引起的KOA症状。推拿将与PD-L1抑制相结合，证明推拿介导的PD-1通路在骨骼肌炎症中影响KOA发展和疼痛的关联，为进一步多层次研究推拿干预KOA的治疗机制奠定了基础。

综上所述，本文从免疫-炎症因子表达的角度，结合行为相关指标，阐述了骨骼肌炎症在KOA及其疼痛发展中的机制，以及推拿对KOA的治疗效果，以期为中医"筋骨失衡"理论提供现代研究证据。

所有实验均经上海中医药大学动物护理与使用专业委员会（批准文号:SYXK2018-0040）批准和监督，符合世界医学会赫尔辛基宣言的规定。

1. 动物准备

1. House 32 Sprague Dawley （SD） 雄性大鼠，年龄为 8 周，体重 180-220 g，在特定的无病原体饲养装置中，在 24 ± 2 °C 和 60% 湿度下，在 12 小时光照/12 小时黑暗循环下，标准啮齿动物颗粒饮食。所有动物实验操作均符合实验动物福利伦理和动物实验安全规定。
2. 适应性喂养1周后，将大鼠随机分成四组，每组8只动物:抗PD-L1 +推拿（A组），模型（B组），推拿（C组）和假手术（D组）。

2.膝关节内注射碘乙酸钠（MIA）

注:除D组外，KOA大鼠模型将通过膝关节腔注射MIA在所有组中制备。对于 D 组，将 25 μL 无菌生理盐水注射到右膝关节腔中。

1. 通过将大鼠置于麻醉笼中，然后引入2.5%异氟醚直至完全麻醉来麻醉大鼠。等待幼鼠仰卧、四肢停止移动、脚趾捏合（踏板反射）、睑反射和肌肉松弛无反应时，确认动物已完全麻醉。
2. 在麻醉的幼鼠中加入宠物眼膏和眼药水，以防止眼睛干涩。
3. 剃掉大鼠的右后肢，并用三轮碘伏和75%乙醇交替对膝关节进行消毒。
4. 为了保持标准化的实验条件，小心地将膝关节屈曲固定在90°的精确角度，确保髌韧带朝上。随后，将25μLMIA溶液注射到大鼠的右膝关节腔中，该溶液由在25μL无菌盐水溶液中稀释的4mg MIA组成。
   注:该注射是用专门的显微注射器进行的，确保程序^21,22,23的准确性和一致性。将老鼠放回笼子里，直到它们醒来。接受手术的动物在完全康复之前不会回到其他动物的陪伴下。
5. 在研究结束时，通过注射1%戊巴比妥钠作为100mg / kg剂量对大鼠实施安乐死。

3. 推拿的实施

注:推拿的实施将以"肌腱骨失衡患者，需先治疗肌腱"的理论为指导。A组和B组均在模型评估成功后的第一天开始干预，两组每天手术一次，持续14天。其余两组仅观察14天，没有任何干预。操作操作人员在实验前必须经过严格的培训，以确保力度、频率和节奏的一致性。

1. 准确定位大鼠穴位，包括EX-LE4、ST35、SP10、ST34、SP9和GB34（图 1和 表1），其中手指揉捏方法将使用实验针灸²⁴进行。
2. 将大鼠固定在大鼠固定设备上的俯卧位。
3. 静下肢放松后，用拇指和食指以120-140次/分钟同时揉捏患肢EX-LE4和ST35,4分钟。
4. 用拇指和食指以120-140次/分钟揉捏患肢前外侧肌肉3分钟，重点放在SP10、ST34和膝关节附近的肌肉上。强调对那些僵硬肌肉的强度的操纵，这样老鼠就不会挣扎。
5. 用拇指、食指和中指从上到下以120-140次/分钟揉捏患肢小腿后肌3分钟。要充分暴露治疗区域，请用无名指和小指握住患肢的踝关节，轻轻拉扯患肢。重点关注SP9、GB34和膝关节附近的肌肉，强调刚性肌肉和强度，使大鼠不会挣扎。

4.行为指标的测量

1. 足底机械疼痛阈值的测量
   注意:测量 MIA 注射前 1 天以及注射后 2、9 和 16 天的足底机械疼痛阈值。
   1. 将大鼠带到具有不锈钢网格底部和塑料笼体的足底试验室，在室温（22±2）°C的安静环境中适应30分钟。
   2. 使用带有直径为0.8mm的塑料测试针的电子机械疼痛测试仪垂直刺激大鼠右后足的中心区域。均匀地逐渐增加刺激强度，直到大鼠表现出爪子缩回和回避反应。
   3. 将电子屏幕的读数记录为大鼠右足底的机械疼痛阈值。
   4. 以5分钟的间隔测量每只大鼠5次。
   5. 从五个值中删除最大值和最小值。通过修剪均值法取中间三个值的平均值为结果（表2）。
2. 爪子机械退出阈值的测量
   注意:在 MIA 注射前 1 天、注射后 2、9 和 16 天测量爪子机械退出阈值。
   1. 将大鼠带到具有30°C玻璃底和塑料笼体的加热足底试验室，在室温（22±2）°C的安静环境中适应30分钟。
   2. 在65°C的刺激温度下，用光源加热装置刺激右后足底中心区域，直到大鼠表现出爪子缩回和回避反应。
   3. 记录电子屏幕的时间读数作为大鼠的右足底热痛阈值。
   4. 以5分钟的间隔连续测量每只大鼠5次。
   5. 从五个值中删除最大值和最小值。通过修剪均值法取中间三个值的平均值为结果（表3）。

5.右膝关节肿胀的测量

注:在MIA注射前1天，注射后2,9和16天测量大鼠右膝关节的肿胀。

1. 通过将大鼠置于麻醉笼中并将其暴露于2.5%异氟醚直至完全麻醉来麻醉大鼠。
2. 将大鼠放在手术台上的平坦位置。
3. 用游标卡尺测量右膝关节的宽度（图2 和 表4）。

6. Lequesne MG 评分的测量

注:在MIA注射后2,9和16天测量大鼠的Lequesne MG评分。Lequesne 等人开发了髋关节骨关节炎 （ISH） 严重程度指数，可用于评估治疗干预的有效性。我们考虑四个参数:疼痛刺激、步态改变、关节活动度和关节肿胀。

1. 将大鼠带到室温（22±2）°C的安静环境中的操作平台。
2. 让两名操作员相互隔离，测量局部疼痛刺激反应、步态变化、关节运动和关节肿胀。
   1. 用塑料试针刺激右膝关节外侧，根据反应评分0-3分。0 无响应;3、反应良好;1患肢收缩;2患肢收缩痉挛，伴有轻度全身反应，如颤抖、舔舐、吸吮等。
   2. 将大鼠放在手术台上，观察其右后肢的步态。根据回答以 0-3 的等级评分。0 患肢活动无干扰，跑步正常，步法有力;3 患肢不能参与行走、接触地面或踩踏地面;跑步时有 1 次轻度徒步旅行，有强烈的跺脚;2患肢参与行走，但大鼠运动（跋涉）的干扰明显。
   3. 用手弯曲和伸展大鼠的右膝关节，观察关节活动度。根据回答以 0-3 的等级评分。0关节活动角大于90°;3.关节活动角小于15°;1个关节活动角或45°-90°;2.关节活动角为15°-45°。
   4. 触摸大鼠的右膝关节，并将反应与正常大鼠的反应进行比较。根据回答以 0-2 的等级评分。0:无明显肿胀和可见骨斑纹;2 明显肿胀，无骨斑纹;1 轻度肿胀和浅表骨斑纹。
   5. 将这些分数相加以产生每只大鼠的Lequesne MG分数，并通过修剪方法计算平均值（表5）。

7. 皮肤温度的测量

注意:在注射 MIA 前 1 天以及注射后 9 天和 16 天测量皮肤温度。

1. 通过将大鼠置于麻醉笼中，然后引入异氟醚直至完全麻醉，麻醉大鼠。
2. 将大鼠在室温（22±2）°C下置于手术台上的侧向位置。
3. 用手轻轻抓住脚，伸直右膝关节。使用 Filr 红外热像仪拍照以确定皮肤温度。
4. 使用配套的编辑软件读取大鼠膝关节和膝关节周围的皮肤温度。在温度逐渐降低的踝关节和膝关节处设置控制点。

8. 统计分析

1. 使用统计软件以四分位数表示实验数据。
2. 使用修剪均值方法处理异常值。行为测试的结果被记录为平均值的平均值±标准误差。
3. 进行独立样本 t检验以进行组间比较。使用双向重复测量方差分析 （ANOVA） 分析行为数据，然后进行 Bonferroni 的多重比较检验。如果数据不表现出正态性或同方差性，则执行非参数检验（Kruskal-Wallis k 样本）。
   注: P < 0.05 表示差异具有统计学意义。所有数据都符合所应用的统计检验的假设。

所述方案在岳阳市中西医结合医院的临床环境中实施。 图 1 显示了在大鼠体内推动穴位的确切位置， 表 1 说明了刺激这些穴位的共同好处。表 2 和 表 3 提供了令人信服的证据，表明即使在没有 PD-1 通路抑制的情况下，推拿疗法也能显着缓解疼痛。表 4、 表 5 和 图 2 中提供的研究结果还说明了推拿应用与膝骨关节炎 （KOA） 进展之间的相关性，这意味着手法治疗可以作为增强大鼠 KOA 症状管理的辅助方法。在骨关节炎诱导 MIA 3 天后，我们给手法治疗抗 PD-L1 （MTA） 组的每只大鼠注射了 200 μg 的抗 PD-L1 以阻断通路。然后，在骨关节炎诱导后3 d后，在大鼠穴位（包括EX-LE4、ST35、SP10、ST34、SP9和GB34）进行手法治疗，每2 d一次，持续2周。

图1:大鼠体内的点图。 请点击这里查看此图的较大版本.

图2:大鼠膝盖不同程度的肿胀。肿胀可以通过推拿的实施来控制。在PD-L1通路被阻断之前，测量右膝关节直径（注射MIA的膝关节）（1月19日），并在1周后再次测量。PD-L1阻断后，推拿对控制膝关节肿胀的影响变得微不足道。表示 P < 0.0001，** 表示 P < 0.01，* 表示 P < 0.05）。请点击这里查看此图的较大版本.

表1:刺激这些点的效果。

表 2:基线（PD-L1 阻断日）、成功诱导后 1 周和 2 周各组间机械疼痛阈值的比较。表中的数据是当天测量的各组的平均值。除A组和B组之间的P值外，任意两组之间的P值均为<0.05。

表 3:成功诱导后基线、1 周和 2 周时各组间热痛阈值的比较。表中的数据是当天测量的各组的平均值。除A组和B组之间的P值外，任意两组之间的P值均为<0.05。

表4:基线、成功诱导后1周和2周膝骨关节炎肿胀情况的比较。表中的数据是当天测量的各组的平均值。任意两组之间的 P 值为 <0.05，A 组和 B 组之间的 P 值除外）

表 5:基线、成功诱导后 1 周和 2 周各组间 Lequesne MG 指数的比较。表中的数据是当天测量的各组的平均值。除A组和B组之间的P值外，任意两组之间的P值均为<0.05。

作者声明不存在利益冲突。