需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

一种可自动创建稳定且可重复的无细胞间隙以提高细胞划痕愈合实验可靠性的工具

1.4K 次观看

⸱

DOI:

10.3791/65794

⸱

2024年10月4日

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

通过引入交互体验设计和用户需求分析,我们开发了一种创新的细胞刮刀,可在可重复性、可靠性、实用性、细胞完整性及用户体验方面显著提升细胞创伤愈合实验的效果。

摘要

在伤口愈合实验中,细胞迁移测量的可靠性常因普遍使用的方法学不稳定性(即移液枪头法)而受到削弱。我们介绍了一种旨在克服这些局限性的创新仪器。我们研发的新型细胞刮除器优于现有方法,能够产生更一致且稳定的无细胞间隙。重复的生物学实验表明,细胞刮除器产生的无细胞间隙相较于移液枪头法具有更平直的边缘以及更均匀的尺寸和形状(p < 0.05)。在产品设计方面,该细胞刮除器采用适合实验室环境的优化配色方案,有助于实验结果的观察,并可通过高压灭菌实现重复使用。值得注意的是,处理后细胞刮除器对细胞活力和增殖的影响极小(分别为97.31%和24.41%)。相比之下,移液枪头法导致的细胞活力(91.37%)和增殖水平(18.79%)均较低。本研究将细胞刮除器作为一种新型可重复使用的装置加以呈现,其能够在保持细胞活性的同时生成可重复的无细胞间隙,从而相较于现有技术显著提高了伤口愈合实验的可靠性。

引言

肿瘤具有多种显著特征,例如选择性生长优势、代谢重编程以及免疫调节,这些特征引人注目地促进了肿瘤细胞迁移能力的增强,而细胞迁移是肿瘤细胞关键的恶性行为之一。这一特性直接影响原发性肿瘤的远端转移,从而降低患者的长期生存率1,2,3。选择性生长优势使癌细胞能够战胜正常细胞,而代谢重编程则通过改变能量代谢通路来支持这种快速增殖。同时,免疫调节使肿瘤能够逃避免疫系统的攻击。研究强调了这一问题的严重性,表明肺转移通常由增强的细胞迁移所致,是多种癌症患者死亡的终末事件4。例如,乳腺癌5、宫颈癌4和骨肉瘤6分别占此类病例的20%、9%和30%。因此,评估肿瘤细胞的迁移能力已成为当前肿瘤学研究的重要组成部分,进一步凸显了肿瘤进展的多面性。

细胞伤口愈合实验是一种易于使用的测量方法 体外 细胞迁移,常用于肿瘤学研究7大多数实验人员使用移液器吸头手动制造细胞伤口8尽管这种方法能够快速、便捷地形成细胞伤口,但在评估细胞迁移时仍存在诸多影响可重复性和准确性的局限性。首先,使用移液器枪头手动划痕时,操作者的操作角度、力度和速度会显著影响结果,从而降低该方法的重复性。8其次,移液枪头产生的细胞缺陷通常具有锯齿状边缘而非直线边缘,因为移液枪头是具有一定弹性的塑料制品9一些研究通过将预制的培养插件直接放入细胞培养板中,以限制细胞增殖范围,从而形成伤口10该方法克服了基于针尖技术的局限性,例如边缘不规则和可重复性差等问题。然而,即使使用生物相容性材料,嵌入物与细胞的长期共存仍然会影响细胞生长。11此外,包埋还可能因接触受限而导致边缘区细胞发生表观遗传学改变12此外,由生物相容性材料制成的接触式插件价格昂贵且难以重复使用,限制了其应用可行性13因此,需要一种新型、可重复且实用的工具,以方便地进行定量分析 体外 细胞迁移

该方法的主要目标是引入一种用于定量分析的创新工具 体外 肿瘤学研究中的细胞迁移,旨在解决现有技术的局限性,并提高细胞迁移评估的可重复性和准确性。

该技术的开发原理在于评估肿瘤细胞迁移在肿瘤学中的关键重要性。肿瘤具有多种显著特征,包括选择性生长优势、代谢重编程以及免疫调节,这些因素共同促进了细胞迁移能力的增强,而细胞迁移是癌症恶性程度的基本特征之一。本方法旨在提供一种更为可靠的细胞迁移研究手段,从而加深对肿瘤行为的理解。

该方法相较于现有技术具有显著优势。手动划痕实验易受操作者主观因素干扰,而细胞培养插件可能影响细胞生长和基因表达。相比之下,该方法具有更高的重复性、准确性和实用性,为测量提供了一种经济高效的解决方案 体外 肿瘤学研究中的细胞迁移。该工具满足了研究多种癌症类型中细胞迁移现象对可靠且易于获取手段的迫切需求,因而成为该领域一项重要的补充。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

所有参与者均提供了完整的书面知情同意书。由于本研究未涉及动物或人体组织样本,因此无需伦理审批。

1. 调查用户群体的需求

  1. 向从事细胞伤口愈合实验的生物学家/实验人员发放问卷,并收集填写完成的问卷用于本研究。在本研究中,从2021年10月12日至2022年2月3日,共向100名生物学家发放了100份问卷,回收率为97%。
  2. 请受访者回答诸如“哪一次细胞划痕实验对您的困扰最大?”以及“进行细胞划痕时使用了哪种工具?”等问题,并通过后续子问题追溯其原因。
  3. 调查实验人员对移液器吸头和细胞培养插入物等工具在细胞伤口愈合实验中的使用感受。通过问卷部分基于阶梯技术的手段-目的链理论14,15,了解并收集他们选择某一工具而非其他工具的原因。
    ​注:阶梯法分为两种类型:一种是采用深度访谈的软性阶梯法,另一种是采用问卷或纸笔测验的硬性阶梯法16。本研究主要采用硬性阶梯法。手段-目的链理论认为,目标用户所持有的显性知识是表层且具体的,而隐性知识则是深层且抽象的17,18,19。

2. 设计与三维建模

  1. 根据先前问卷调查所获得的见解绘制草图,并启动设计流程。将此初步草图作为基础蓝图。
    1. 在建模软件中使用 Dim、DimRadius 和 DimDiameter 功能,详细说明各个组件的尺寸与布局。
    2. 使用精度为 0.02 mm 的游标卡尺对实际的 6 孔板进行测量,以确定细胞刮刀的最终尺寸。确认其长度为 42.1 mm,宽度为 42.1 mm,高度为 18.5 mm。在设计阶段需特别关注细节,尤其是产品高度及其与孔板的适配性,以促进更顺畅的组装。
  2. 构建三维模型并进行渲染。
    1. 在软件中通过创建基本模型开始三维设计。点击 ExtrudeCrv 按钮进行拉伸,Loft 按钮进行造型。优化模型后,点击 FilletEdge 以获得平滑边缘。
      注:其他常用功能按钮包括:Lines — 用于绘制直线段,Polylines — 用于创建由多个线段组成的连续线,Rectangles — 用于绘制矩形,Circles — 用于绘制圆形,Arcs — 用于绘制弧形或椭圆形,Points — 用于放置单个点标记,Text — 用于添加文本标签,Dimensions — 用于为模型添加测量尺寸,Array — 用于创建对象的复制图案,Rotate — 用于将对象旋转至所需角度,Move — 用于将对象移动到新位置,Scale — 用于放大或缩小对象,Trim/Extend — 用于修剪或延伸对象以与其他几何体对齐,Boolean Union/Difference/Intersection — 用于合并、减去或求取对象的交集,Layers — 用于在不同图层上组织对象,Render — 用于生成带有材质和光照的渲染视图,以及 Export — 用于将模型几何体导出为其他文件格式。
    2. 将模型导入三维渲染软件。应用塑料、海绵和钢等材质,然后调整光照以实现逼真的渲染效果。
      注:通用功能按钮列表包括:Drag & Drop — 通过从材质库中拖动材质并将其放置在实时视图中的目标组件上来直接应用材质,Right-click — 右键点击材质库中的材质时,通常会看到以下选项:Apply to Selection — 将材质应用于实时视图中选定的部件,Edit Material — 调整材质属性,Material Properties(选择材质后)— 用于访问并修改材质的特定属性,如颜色、粗糙度、折射率及其他属性,搜索栏 — 通过输入材质名称或相关关键词快速查找材质,Categories/Folders — 用于浏览金属、塑料、玻璃等不同类别的材质或文件夹,Add to Favorites — 将某些材质标记为收藏,以便在后续会话中快速访问,Hotkeys — 某些操作可通过快捷键访问。例如,M 通常是快速调出所选部件材质属性的快捷键。
    3. 最后,在图像与设计软件中增强图像对比度(+56)和饱和度(鲜艳度 +19,饱和度 +7),并添加背景元素(文字信息及从白色到浅灰色渐变的背景),以提供上下文,确保呈现高质量且逼真的产品图像。
      1. 使用 图像 > 调整,亮度/对比度 来调整图像对比度。使用 图像 > 色相/饱和度 来修改图像的饱和度。使用 文字工具(T 图标) 向图像中添加文字信息。
        ​注:通用功能按钮列表包括 椭圆工具(U) — 用于绘制点或圆。将工具设置为绘制形状,选择所需的填充颜色,然后按住 Shift 键点击并拖动(以保持完美的圆形)来创建点。直线工具(U) — 用于在图像上绘制直线。选择该工具,设置所需的线宽,然后点击并拖动以绘制直线。画笔工具(B) — 绘制点和线的另一种方式。选择画笔的大小和形状,然后点击(绘制点)或点击并拖动(绘制线)。
  3. 完成三维模型后,通过研磨与组装方法生产细胞刮刀20,21,22。

3. 生产

  1. 在本研究中应用色彩、材料、表面处理(CMF)理论来设计细胞刮刀的原型。CMF理论作为一种设计方法论,广泛应用于科学研究中,可提升产品的可用性、塑造用户感知,并指导材料的选择23,24,25。
    1. 从标准色卡系统中选择用于细胞刮刀的颜色,包括黑6C、冷灰6C和11-0601TPG26,27。
    2. 为制造符合实验室标准的细胞刮刀,需选用合适的材料,如聚丙烯(PP)、海绵和高碳钢。在制作实体原型时,首先使用3D打印机打印出结构框架,随后利用连接件或粘合剂完成刮刀的组装。
      ​注意:为制备细胞刮刀的实体产品,需对所需材料进行打磨与组装。整个过程中必须遵守安全操作规程,以确保最终产品安全且有效。
    3. 进入表面处理阶段,该过程可能包括切割、打磨、抛光、冲压或其他相关工艺。首先使用中等粒度的120目砂纸对模型进行打磨,以去除所有毛刺和粗糙边缘。
    4. 接着使用细粒度的220目砂纸进一步打磨,以获得光滑的表面。
    5. 打磨完成后,进一步修整表面,并确保插接式或内置连接件能够准确匹配。
    6. 使用连接件(固定杆)将滑片I和II牢固连接,以确保细胞刮刀结构的稳固性和耐久性。通过机械紧固与粘结相结合的方式实现细胞刮刀的最终固定形态。采用特定的紧固结构(如榫卯结构),利用机械力将各部件固定在一起;同时,为增强整体结构强度,还需涂抹粘合剂(胶水)以进一步粘合组件。
    7. 将刮刀在121.3 °C条件下高压灭菌30分钟,以确保其保持原有的形状和物理性能。

4. 细胞培养

  1. 在添加10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素-链霉素的最低必需培养基中培养HOS细胞。在37 °C、5% CO2条件下进行培养。
  2. 每2天更换一次培养基。
  3. 当细胞生长超过80%融合度时,加入1 mL含0.25% EDTA的胰蛋白酶,消化60秒。随后,将细胞在300 x g条件下离心5分钟进行传代。弃去上清液,加入培养基,使最终浓度为每孔5 x 104个细胞。使用自动细胞计数仪进行细胞计数。

5. 评估细胞刮铲和基于尖端方法的细胞损伤潜力

  1. 准备所有用于划痕实验的材料,并通过紫外线照射30分钟进行灭菌处理。
  2. 灭菌后,在6孔板中对100%融合的HOS细胞进行划痕操作,每孔细胞浓度为5 × 104个细胞,可采用细胞刮法或移液枪头法。
    1. 对于移液枪头法,使用100 µL枪头,在含细胞的培养基中水平方向划1次,垂直方向划1次。
    2. 对于细胞刮法,将刮板原型放入其中一个孔中,借助镊子轻轻按压一次,完成细胞划痕。每个划痕实验均需设置三个重复。
  3. 使用数字显微镜系统和成像软件对所有细胞划痕进行分析。

6. 细胞活力与细胞增殖的测定

  1. 按照CCK-8试剂盒提供的说明书进行所有细胞活力检测。
  2. 在37 °C条件下,将细胞与CCK-8溶液共同孵育2小时,然后使用酶标仪在450 nm处测定其吸光度,以定量细胞活力。
  3. 设计5-乙炔基-2'-脱氧尿苷(EdU)掺入实验,以准确量化DNA复制并直接测定细胞增殖比率。根据先前发表文献28中所述的实验方案,利用EdU实验确定不同方法制造细胞划痕对细胞增殖的影响。
  4. 对细胞进行染色,并使用数字显微镜系统成像。确保每项实验均设三个重复。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

解析用户对细胞损伤生成工具的需求
目前用于生成细胞损伤的实验方法仍需进一步改进,以解决诸多影响细胞伤口愈合实验生物学可重复性、稳健性、经济性及用户体验的问题。我们采用硬性阶梯法(hard laddering method),通过问卷调查分析参与生物学实验的用户需求29(图1A)。问卷中涉及的个人信息(如姓名)均经过匿名化处理,以保护受访者隐私。问卷的具体内容见表1。在为期6周、面向100人的调查中,共收到97份完整有效的问卷,3份可疑或无效问卷被排除,问卷回收率为97.00%。

结果表明,细胞划痕实验中最令人困扰的问题是划痕边缘呈锯齿状(不平直)以及划痕宽度或面积不稳定,分别占55.67%和29.90%。这些问题的发生率显著高于细胞生长速率低、细胞污染及其他选项,后者的比例分别为3.09%、5.15%和6.19%(p < 0.001,图1B

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

本研究旨在开发一种用于细胞划痕愈合实验的自动机械化工具。据我们所知,这是首次尝试通过机械化驱动结构实现一键式自动创建细胞划痕。该工具旨在解决传统移液枪头法存在的可重复性低、划痕状态不稳定等缺点。得益于积极的实验结果以及用户群体的鼓励性反馈,该细胞刮刀有望为实验人员提供一种高效且稳定的细胞划痕制备替代方案,从而显著提高实验分析结果的可信度。

使用当前的细胞刮刀时,用户应执行以下步骤:1)按照与传统方法(如移液枪头法)类似的方式,将细胞以特定密度接种到六孔板中,准备形成无细胞间隙;2)等待细胞汇合率达到> 90%;3)将无菌细胞刮刀放入孔板的一个孔中,按下如图5所示的按钮,无细胞间隙将在1-2秒内自动形成。

细胞划痕愈合实验已广泛用于测量细胞迁移能力。通常,实验人员使用移液器枪头制造细胞划痕。例如,Tariq 等人使用移液器枪头制造细胞划痕以评估细胞迁移能力45;Rahimi 等人也在实验中使用移液器枪头观察 PC3 ...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

作者声明不存在利益冲突。

致谢

本研究得到国家社会科学基金(22FYSB023)、湖北工业设计中心研究基金(08hqt201412046)以及湖北省教育厅人文社会科学基金(15Y054)的资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
CCK-8试剂盒Beyotime Company, 中国C0037
数字显微镜系统OlympusIX81
胎牛血清Gibco, 美国16000044
HOS Procell Life Science & Technology Co., LtdCL-0360
Image-Pro PlusMedia Cybernetics版本 6.0
KeyShotLuxion版本 11.03D渲染软件
酶标仪BioTek, 德国ELX808
最低必需培养基Gibco, 美国11095080
Pantone配色系统Pantone商业配色系统
青霉素-链霉素Beyotime Company, 中国ST488
PhotoshopAdobe图像处理与设计软件
Rhinoceros 3DRobert McNeel & Associates版本 7.03D设计软件
TC20全自动细胞计数仪Bio-RadTC20
胰蛋白酶Cytiva HyClone, 美国SH30042.01

参考文献

  1. Trepat, X., Chen, Z., Jacobson, K. Cell migration. Compr Physiol. 2 (4), 2369-2392 (2012).
  2. Moncharmont, C., et al. Radiation-enhanced cell migration/invasion process: a review. Crit Rev Oncol Hematol. 92 (2), 133-142 (2014).
  3. Verbeek, B. S., Adriaansen-Slot, S. S., Vroom, T. M., Beckers, T., Rijksen, G. J. F. I. Overexpression of EGFR and c-erbB2 causes enhanced cell migration in human breast cancer cells and NIH3T3 fibroblasts. FEBS Lett. 425 (1), 145-150 (1998).
  4. Vaideeswar, P., Aswani, Y., Damani, S., Singaravel, S. Pulmonary microvascular metastases in cervical carcinoma: A case series. J Postgrad Med. 66 (3), 155-158 (2020).
  5. Liang, Y., Zhang, H., Song, X., Yang, Q. Metastatic heterogeneity of breast cancer: Molecular mechanism and potential therapeutic targets. Semin Cancer Biol. 60, 14-27 (2020).
  6. Sasaki, R., Osaki, M., Okada, F. MicroRNA-based diagnosis and treatment of metastatic human osteosarcoma. Cancers (Basel). 11 (4), 553(2019).
  7. Spaeth, E., Klopp, A., Dembinski, J., Andreeff, M., Marini, F. Inflammation and tumor microenvironments: defining the migratory itinerary of mesenchymal stem cells. Gene Ther. 15 (10), 730-738 (2008).
  8. Zhang, M., Li, H., Ma, H., Qin, J. A simple microfluidic strategy for cell migration assay in an in vitro wound-healing model. Wound Repair Regen. 21 (6), 897-903 (2013).
  9. Yue, P. Y., Leung, E. P., Mak, N., Wong, R. N. A simplified method for quantifying cell migration/wound healing in 96-well plates. J Biomol Screen. 15 (4), 427-433 (2010).
  10. Roch, T., et al. Immunological evaluation of polystyrene and poly (ether imide) cell culture inserts with different roughness. Clin Hemorheol Microcirc. 52 (2-4), 375-389 (2012).
  11. Jonkman, J. E., et al. An introduction to the wound healing assay using live-cell microscopy. Cell Adh Migr. 8 (5), 440-451 (2014).
  12. Freshney, R. I. Culture of animal cells: a manual of basic technique and specialized applications. , John Wiley & Sons, Inc. (2015).
  13. Kato, T., et al. Reuse of cell culture inserts for in vitro human primary airway epithelial cell studies. Am J Respir Cell. 64 (6), 760-764 (2021).
  14. Veludo-de-Oliveira, T. M., Ikeda, A. A., Campomar, M. C. Discussing laddering application by the means-end chain theory. Qualit Rep. 11 (4), 626-642 (2006).
  15. Yang, T., Yang, F., Men, J. Recommendation content matters! Exploring the impact of the recommendation content on consumer decisions from the means-end chain perspective. Int J Info Manage. 68, 102589(2023).
  16. Sadeghlou, S., Emami, A. Residential preferences and satisfaction: a qualitative study using means-end chain theory. J Housing Built Env. 38, 1711-1734 (2023).
  17. Pieters, R., Baumgartner, H., Allen, D. A means-end chain approach to consumer goal structures. Int J Res Market. 12 (3), 227-244 (1995).
  18. Valette-Florence, P., Rapacchi, B. J. J. Improvements in means-end chain analysis: using graph theory and correspondence analysis. J Advert Res. 31, 30-45 (1991).
  19. Nunkoo, R., Ramkissoon, H. Applying the means-end chain theory and the laddering technique to the study of host attitudes to tourism. J Sustain Tourism. 17 (3), 337-355 (2009).
  20. Development of an automatic mold polishing system. Tsai, M. J., Chang, J. L., Haung, J. F. IEEE Int Conf Robot Auto, 3, 3517-3522 (2005).
  21. Altan, T., et al. Advanced techniques for die and mold manufacturing. CIRP Annals. 42 (2), 707-716 (1993).
  22. Kalt, E., Monfared, R., Jackson, M. Towards an automated polishing system: Capturing manual polishing operations. Int J Res Eng Tech. 5 (7), 182-192 (2016).
  23. Becerra, L. CMF design: the fundamental principles of colour, material and finish design. , Frame Publishers, UK. (2016).
  24. Pan, C., et al. Next-generation immuno-oncology agents: current momentum shifts in cancer immunotherapy. J Hematol Oncol. 13 (1), 29(2020).
  25. Kim, S., Nah, K. The development direction of emotional materials by increasing sensorial experiences-Focusing on the case study of CMF design. Arch Des Res. 27 (2), 121-135 (2014).
  26. Eiseman, L. The complete color harmony, pantone edition: expert color information for professional results. , Rockport Publishers. (2017).
  27. Eiseman, L., Recker, K. Pantone: The twentieth century in color:(coffee table books, design books, best books about color). , Chronicle Books. (2011).
  28. Deng, P., Jin, W., Liu, Z., Gao, M., Zhou, J. Novel multifunctional adenine-modified chitosan dressings for promoting wound healing. Carbohydr Polym. 260, 117767(2021).
  29. Ares, G., Giménez, A., Gámbaro, A. Understanding consumers' perception of conventional and functional yogurts using word association and hard laddering. Food Quality Prefer. 19 (7), 636-643 (2008).
  30. Lee, W. J. A study on word cloud techniques for analysis of unstructured text data. J Converg Culture Tech. 6 (4), 715-720 (2020).
  31. Word Cloud Explorer: Text Analytics Based on Word Clouds. Heimerl, F., Lohmann, S., Lange, S., Ertl, T. 47th Hawaii international conference on system sciences, , IEEE. (2014).
  32. Kulevicz, R. A., et al. Influence of sustainability reports on social and environmental issues: bibliometric analysis and the word cloud approach. Env Rev. 28 (4), 380-386 (2020).
  33. Rubbo, S. D., Gardner, J. F. A review of sterilization and disinfection. Lloyd-Luke. , (1965).
  34. Kelsey, J. C. Sterilization by ethylene oxide. J Clin Pathol. 14 (1), 59-61 (1961).
  35. Shintani, H. Ethylene oxide gas sterilization of medical devices. Biocontrol Sci. 22 (1), 1-16 (2017).
  36. Rutala, W. A., Gergen, M. F., Weber, D. J. Comparative evaluation of the sporicidal activity of new low-temperature sterilization technologies: ethylene oxide, 2 plasma sterilization systems, and liquid peracetic acid. Am J Infect Control. 26 (4), 393-398 (1998).
  37. Dion, M., Parker, W. Steam sterilization principles. Pharm Eng. 33 (6), 1-8 (2013).
  38. Környei, Z., et al. Cell sorting in a Petri dish controlled by computer vision. Sci Rep. 3, 1088(2013).
  39. Hsu, J. T., et al. Chronic wound assessment and infection detection method. BMC Med Inform Decis Mak. 19 (1), 99(2019).
  40. Katoh, M. Test-retest reliability of isometric ankle plantar flexion strength measurement performed by a hand-held dynamometer considering fixation: examination of healthy young participants. J Phys Ther Sci. 34 (6), 463-466 (2022).
  41. Li, X., Zhao, J., Ma, G., Huang, S. Experimental study on the traditional timber mortise-tenon joints. Adv Str Eng. 18 (12), 2089-2102 (2016).
  42. Cottle, R. W. The principal pivoting method revisited. Mathematical Prog. 48, 369-385 (1990).
  43. Cross, N. Engineering design methods: strategies for product design. , John Wiley & Sons. (2021).
  44. Otto, K., Wood, K. Product design: techniques in reverse engineering and new product development. , Pearson. (2001).
  45. Tariq, M., et al. Gefitinib inhibits M2-like polarization of tumor-associated macrophages in Lewis lung cancer by targeting the STAT6 signaling pathway. Acta Pharmacol Sin. 38 (11), 1501-1511 (2017).
  46. Rahimi, S., et al. CRISPR/Cas9-mediated knockout of Lcn2 effectively enhanced CDDP-induced apoptosis and reduced cell migration capacity of PC3 cells. Life Sci. 231, 116586(2019).
  47. Cormier, N., Yeo, A., Fiorentino, E., Paxson, J. Optimization of the wound scratch assay to detect changes in murine mesenchymal stromal cell migration after damage by soluble cigarette smoke extract. J Vis Exp. (106), e53414(2015).
  48. Pinto, B. I., Cruz, N. D., Lujan, O. R., Propper, C. R., Kellar, R. S. In vitro scratch assay to demonstrate effects of arsenic on skin cell migration. J Vis Exp. (144), e58838(2019).
  49. Rodriguez, L. G., Wu, X., Guan, J. L. Wound healing assay. Methods Mol Biol. 294, 23-29 (2005).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

探索更多文章

细胞刮棒无细胞间隙细胞迁移细胞活力细胞增殖可重复检测基于移液头的方法EdU检测