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方法文章

利用人工寄主从寄生蜂Trichogramma dendrolimi中提取毒液

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DOI:

10.3791/66032

2023年10月6日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文介绍了一种利用聚乙烯薄膜和氨基酸溶液制备的人工寄主提取Trichogramma dendrolimi毒液的实验方案。

摘要

寄生蜂是一类多样化的膜翅目昆虫,作为害虫生物防治的宝贵资源具有重要意义。为了确保成功寄生,寄生蜂会向宿主体内注入毒液,以抑制宿主的免疫反应,并调控其发育、代谢甚至行为。据估计,寄生蜂的物种数量超过60万种,其多样性远超其他有毒动物,如蛇类、芋螺和蜘蛛。寄生蜂毒液是一种尚未充分开发的生物活性分子来源,在害虫防治和医学领域具有潜在应用价值。然而,由于无法采用直接刺激或电刺激方式取毒,且因其体型微小导致解剖困难,寄生蜂毒液的采集极具挑战性。Trichogramma 是一类体型微小(约0.5 mm)的卵寄生蜂,广泛应用于农业和林业中鳞翅目害虫的生物防治。本文报道了一种利用人工宿主提取 T. dendrolimi 毒液的方法。该人工宿主由聚乙烯薄膜和氨基酸溶液制成,并接种 Trichogramma 寄生蜂以完成寄生过程。随后收集并浓缩毒液。该方法能够大量提取 Trichogramma 毒液,同时避免了传统毒囊解剖过程中常见的组织污染问题。这一创新方法为研究 Trichogramma 毒液提供了便利,推动了相关新研究及潜在应用的发展。

引言

寄生蜂是一类具有寄生性的膜翅目昆虫,在生物防治中具有重要的资源价值1。寄生蜂种类繁多,估计物种数量超过60万种2。其多样性远超其他有毒节肢动物,如蛇类、芋螺、蜘蛛、蝎子和蜜蜂。毒液是寄生蜂实现寄生的重要因子之一。为了成功寄生,寄生蜂会将毒液注入宿主体内,调控宿主的行为、免疫、发育和代谢过程3。此外,寄生蜂毒液在分子结构、作用靶点和生物学功能方面表现出显著的多样性,反映了其与宿主之间复杂的协同进化关系。因此,寄生蜂毒液是一种宝贵但尚未被充分重视的活性分子资源,可用于杀虫剂开发或医学用途4。与蛇类、芋螺、蜘蛛、蝎子和蜜蜂的毒液不同,寄生蜂毒液无法通过直接刺激或电刺激的方式采集5。目前提取寄生蜂毒液的主要方法是解剖毒液囊。然而,寄生蜂个体通常较小,对其解剖操作需要较高的技术水平。因此,若能建立一种高效且便捷的寄生蜂毒液采集方法,将极大促进寄生蜂毒液的研究。

Trichogramma(膜翅目:赤眼蜂科)是一类微小的(体长约0.5 mm)寄生蜂6。这类寄生蜂是应用最广泛的生物防治制剂之一,尤其用于防治农业和林业中多种鳞翅目害虫的卵。例如,在中国广泛应用的赤眼蜂种类之一——T. dendrolimi,已被大量用于防控多种农林害虫,如Dendrolimus superansOstrinia furnacalisChilo suppressalis。先前的研究表明,Trichogramma寄生蜂可将其卵注入人工寄主中7。人工寄主可由石蜡8、琼脂9、Parafilm膜10或塑料薄膜11等材料制成。在人工寄主中,能够有效诱导Trichogramma产卵的溶液成分可十分简单,例如氨基酸或无机盐12。基于T. dendrolimi能够寄生人工寄主的特性,本研究提出一种利用人工寄主提取寄生蜂毒液的新方法。该方法旨在克服当前提取技术中产量低、纯度低以及易受污染等缺陷。通过该方法,可大量提取高纯度的T. dendrolimi毒液,满足科学研究以及杀虫或医学用途生物活性分子筛选的需求。

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方案

1. 昆虫饲养

  1. 喂养 Corcyra cephalonica 在26 ± 1°C温度和40% ± 10%相对湿度条件下,以玉米粉为培养基质。
  2. 品种 T. dendrolimi 使用吉林昆虫饲养室室内饲养的卵来源的品系 Corcyra cephalonica 作为宿主. 用10%蔗糖水喂养成年黄蜂 黑腹果蝇 在温度26 ± 1 °C、相对湿度70% ± 10%、光周期(L): 暗周期(D)为14小时:10小时的条件下培养试管。

2. 聚乙烯塑料薄膜卵卡的制备

  1. 取一块长度为 16 cm、宽度为 12 cm、厚度为 20 µm 的聚乙烯塑料薄膜。使用玻璃研磨棒按照标准 96 孔 PCR 板布局压出 30 个直径为 2–3 mm、高度约为 3 mm 的半球形凸起。
    注意:使用玻璃研磨棒压出 30 个半球形凸起时需注意施加的压力,压力过大可能刺穿塑料薄膜,导致提取无毒的研磨棒被污染。
  2. 将压制成型的聚乙烯塑料薄膜两面暴露于紫外(UV)光下照射 1 小时,进行消毒。
  3. 在半球形表面加入少量 10% 聚乙烯醇。

3. Trichogramma dendrolimi 寄生作用

  1. 使用 CO2 麻醉后,将 T. dendrolimi 雌性成蜂放入收集盒中,蜂数约为 3000 头。
  2. 将薄膜卵卡的凸面朝向收集盒,并用橡皮筋固定边缘。
  3. 在每个半圆形突起处添加 4 µL 氨基酸溶液(6 g/L 亮氨酸、4 g/L 苯丙氨酸、4.25 g/L 组氨酸),然后覆盖一张长 16 cm、宽 12 cm 的平展聚乙烯塑料薄膜。用橡皮筋将两层塑料膜紧密覆盖在收集盒上。
  4. T. dendrolimi 成蜂自由寄生 4–8 小时,并通过湿润的棉球提供 10% 蔗糖水。

4. 收集T. dendrolimi 毒液

  1. 从人工卵卡的内突起处获取寄生氨基酸溶液,并转移至1.5 mL离心管盖中。
  2. 用直径为25 mm、孔径为10 µm的尼龙网覆盖管盖,将尼龙网与离心管紧密固定。将离心管直立放置,使用小型离心机进行短时离心(1360 × g,10 s),收集滤过液(约100 µL的T. dendrolimi毒液)。
  3. 使用双辛可宁酸(BCA)检测试剂盒(材料表)测定收集的T. dendrolimi毒液浓度。
  4. 将毒液于-80 °C保存,用于后续分析。

5. SDS-PAGE 分析

  1. 将 30 µL 的 T. dendrolimi 毒液加入 10 µL 的 4x 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)上样缓冲液(材料表)中,在 95 °C 下加热 10 分钟。
  2. 以 130 V 电压进行 SDS-PAGE 凝胶电泳,持续 120 分钟。
  3. 使用蛋白质染色装置(材料表)对 SDS-PAGE 凝胶进行染色和脱色。

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结果

采用蛋白检测试剂盒测定代表性毒液样品的蛋白浓度,结果如表1所示。结果显示,通过该方法收集的毒液蛋白浓度范围为0.35 µg/µL至0.46 µg/µL,而氨基酸溶液的阴性对照组蛋白浓度仅为0.03 µg/µL至0.05 µg/µL。该方法收集的毒液蛋白浓度显著高于阴性对照组,表明该方法能够有效收集寄生蜂毒液。此外,寄生时间与蛋白浓度之间无明显相关性,因为不同批次的寄生蜂可能具有不同的活力。

此外,通过 SDS-PAGE 分析了 T. dendrolimi 的毒液,结果显示其毒液蛋白的分子量范围从低于 10 kDa 到超过 130 kDa(图 1)。然而,当对氨基酸阴性对照进行 SDS-PAGE 分析时,发现其中不含任何蛋白质(补充图 1),这进一步证明通过该方法收集的蛋白确实是寄生蜂的毒液蛋白。

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讨论

本文介绍了一种利用人工寄主提取T. dendrolimi毒液的方法。毒液采集实验的关键要点如下。(1)在制备过程中,必须使用适当浓度的CO2T. dendrolimi进行快速麻醉。若CO2浓度过低,则不足以迅速麻醉Trichogramma;反之,若浓度过高,可能导致Trichogramma死亡,从而降低其对人工寄主的寄生能力。(2)必须确保氨基酸溶液的无菌性,因为溶液污染可能对寄生效率产生不利影响。(3)人工卵卡的寄生操作应在黑暗条件下进行,以促进寄生行为。(4)建议直接进行后续实验,或立即将样品冷冻,以保持毒液活性并防止降解。

建议通过观察产下的卵来判断寄生情况。若在显微镜下未观察到产卵,则可能未成功提取毒液。该技术的局限性在于需要大量寄生蜂。单次毒液提取约需3,000只寄生蜂,增加了工作量。

先前提取寄生蜂毒液的方法是解剖毒液囊。然而,寄生蜂体型微小;例如,Trichogramma 的体长...

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披露

作者声明无任何披露事项,且无竞争性经济利益。

致谢

我们感谢海南省自然科学基金(资助号:323QN262)、国家自然科学基金委员会(资助号:31701843 和 32172483)、江苏省农业科技创新基金(资助号:CX(22)3012 和 CX(21)3008)的经费支持。 "双床医生" 江苏省基础研究计划(项目编号:202030472)以及南京农业大学启动基金(项目编号:804018)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10 μm 尼龙网MilliporeNY1002500用于过滤卵
10% 聚乙烯醇AladdinP139533用于吸引  T. dendrolimi  产卵
10% 蔗糖水国药集团化学试剂 10021463饲喂 Trichogramma dendrolimi
4x LDS 上样缓冲液Ace HardwareB23010301SDS-PAGE
收集盒Deli8555用于 T. dendrolimi 寄生
Future PAGE  4–12% (12 孔)Ace HardwareJ70236502XSDS-PAGE
GenScript eStain L1 蛋白染色仪GenScriptL00753SDS-PAGE
玻璃研磨棒  Applygentb6268半圆形突起结构 
L-亮氨酸SolarbioL0011人工寄主组分
L-组氨酸AladdinA2219458人工寄主组分
L-苯丙氨酸SolarbioP0010人工寄主组分
微型离心机ScilogexD1008离心
MOPS-SDS 电泳缓冲液Ace HardwareB23021SDS-PAGE
Omni-Easy 即用型 BCA 蛋白检测试剂盒上海雅酶生物医药科技 ZJ102用于测定毒液蛋白浓度
96 孔 PCR 板布局Thermo FisherAB1400L半圆形突起结构 
聚乙烯塑料薄膜苏州奥庞贸易  001c5427人工卵卡
预染色蛋白 Marker (10–180 kDa)伊菲克生物技术YWB007SDS-PAGE
橡胶圈广州千睿生物科技009固定塑料薄膜与收集盒
硅胶垫片,96 孔,圆孔型生工生物F504416-0001半圆形突起结构 

参考文献

  1. Pennacchio, F., Strand, M. R. Evolution of developmental strategies in parasitic hymenoptera. Annual Review of Entomology. 51, 233-258 (2006).
  2. Yan, Z. C., Ye, X. H., Wang, B. B., Fang, Q., Ye, G. Y. Research advances on composition, function and evolution of venom proteins in parasitoid wasps. Chinese Journal of Biological Control. 33 (1), 1-10 (2017).
  3. Asgari, S., Rivers, D. B. Venom proteins from endoparasitoid wasps and their role in host-parasite interactions. Annual Review of Entomology. 56, 313-335 (2011).
  4. Moreau, S. J. M., Guillot, S. Advances and prospects on biosynthesis, structures, and functions of venom proteins from parasitic wasps. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (11), 1209-1223 (2005).
  5. Yan, Z. C., et al. A venom serpin splicing isoform of the endoparasitoid wasp Pteromalus puparum suppresses host prophenoloxidase cascade by forming complexes with host hemolymph proteinases. Journal Biological Chemistry. 292 (3), 1038-1051 (2017).
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  15. Moreau, S. J. M., Asgari, S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological function. Toxins. 7 (7), 2385-2412 (2015).

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