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方法文章

评估年轻生育力保存患者卵巢储备功能的Z评分

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DOI：

10.3791/66504

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2024年10月25日

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Obstetrics and Gynecology, Department of Clinical Science, Intervention and Technology, Karolinska Institutet, 2Department of Gynecology and Reproductive Medicine, Karolinska University Hospital, 3Applied Tumor Genomics Research Program, Faculty of Medicine, University of Helsinki, 4Department of Medical and Clinical Genetics, Medicum, Faculty of Medicine, University of Helsinki, 5Children's Hospital, Pediatric Research Centre, University of Helsinki and Helsinki University Hospital, 6NORDFERTIL Research Lab Stockholm, Department of Women's, and Children's Health, Karolinska Institutet, and Karolinska University Hospital, 7Department of Obstetrics and Gynecology, Helsinki University Hospital, University of Helsinki, 8Department of Cell and Molecular Biology, Uppsala University, 9Department of Women's and Children's Health, Uppsala University

本文内容

摘要

本方案描述了一种用于评估25岁以下需要通过卵巢组织冷冻保存来实现生育力保存的患者卵巢储备功能的方法。该方法包括：（1）对皮质样本进行卵巢储备功能的组织学评估，（2）与参考数据集进行比较，以及（3）计算Z评分。

摘要

女性出生时具有一个不可再生的卵泡储备池，称为卵巢储备。该储备由卵巢中的原始卵泡组成，可能受到多种因素的影响，如遗传性和内分泌疾病、医疗干预措施以及内分泌干扰物。当必须进行具有生殖腺毒性的治疗时，建议实施生育力保存。对于女性而言，首选的生育力保存方法是卵母细胞和胚胎冷冻保存。然而，对于非常年幼且性未成熟的患者，卵巢组织冷冻保存是唯一可行的选择。了解冷冻保存的组织样本中卵泡密度，对于年轻患者的生育力咨询至关重要。本方案展示了使用Z评分评估25岁及以下接受生育力保存的女性和女孩卵巢组织质量的方法，即通过皮质卵泡密度的Z评分作为评估工具。患者样本中的卵泡密度将与Hassan等人建立的年龄标准化参考标准进行比较，以评估其与正常值的可能偏离程度。卵泡密度通过组织学定量测定。具体操作中，取一小块卵巢皮质组织（约2 mm × 2 mm × 2 mm），用Bouin液或甲醛溶液固定，经石蜡包埋后切成4 µm厚的切片，采用苏木精-伊红染色，并使用切片扫描仪进行数字化。皮质中存在的卵泡发育阶段从原始卵泡至初级卵泡不等。在组织学切片上，皮质区域定义为距表面上皮1 mm范围内的区域。卵泡密度采用Schmidt等人提出的修正公式进行计算，并结合参考均值和标准差确定Z评分。Z评分反映实测值相对于参考均值的偏离程度，用于判断卵巢储备是否降低（ 降低定义为Z评分<-1.7）。通过该方法，卵泡密度可作为需要生育力保存的年轻患者卵巢储备状况的一项重要评估指标。

引言

卵巢是一个动态的、具有内分泌活性的器官，由外层皮质和内层髓质组成。卵巢内不均匀分布着卵泡，卵泡包含生殖细胞卵母细胞，其周围被基质颗粒细胞所包围1。所有卵泡在胎儿发育期间即已形成，在妊娠约20周时数量达到峰值，随后呈指数级下降。出生时，皮质中残留100万至200万个原始卵泡，仅有数十万个可存活至青春期2。这一非生长状态的卵泡库，也称为卵巢储备，是影响女性生育力的诸多因素之一。卵巢储备位于皮质内，随着卵泡的生长和成熟逐渐移向髓质。部分研究者认为卵巢储备仅由原始卵泡构成，而另一些研究者则认为其包括所有单层卵泡（即原始卵泡、过渡卵泡和初级卵泡）3,4,5,6。在女性一生中，仅有300至400个卵泡能够成熟并最终排卵。当卵泡数量下降至约一千个时，即进入绝经期，通常发生在50岁左右2,7。目前关于成年女性卵巢中是否存在卵原干细胞（OSCs）仍存在持续争议，这类细胞据称在异种移植后可形成卵母细胞。一些研究提示可分离出表达原始生殖细胞基因谱系并能分化为卵母细胞的细胞8,9，而另一些研究则表明所谓的OSCs实为血管周围的血管壁细胞10,11,12。

早发性卵巢功能不全（POI）是指在40岁之前出现月经周期停止并伴有促卵泡激素（FSH）水平升高的情况13. POI 的病因是多因素的，可能为特发性；然而，它通常继发于某些医学状况14例如，某些先天性遗传病由于出生时卵巢储备已降低，与原发性卵巢功能不全（POI）相关，如特纳综合征15. POI 也可能作为性腺毒性治疗的副作用出现，这在年幼患者中尤为严重，因为它可能导致无法正常发育青春期，并显著损害卵巢储备功能。根据 POI 的风险程度和患者的年龄，目前有多种生育力保存方案可供选择，例如成熟卵母细胞的冷冻保存、胚胎冷冻保存（在受精后） 体外 受精和卵巢组织冷冻保存（OTC）。对于青春期前患者，由于其性未成熟，OTC是唯一可行的选择16,17在美国，通过卵巢组织冷冻进行生育力保存最近已被视为一种可接受的临床常规。18然而，OTC 在许多欧洲国家仍被视为实验性技术，尤其在自体移植时需要获得伦理批准。19,20因此，非处方药方案的纳入标准必须仔细考虑，并应针对每位患者进行风险-获益分析。并非所有接受性腺毒性治疗的儿童都符合生育力保存的条件。在瑞典，根据北欧儿科血液学与肿瘤学学会的生育力保存指南，仅建议高风险或极高风险的患者进行生育力保存。21该群体包括：（1）需要进行干细胞移植或接受放疗且卵巢位于照射范围内的青春期前和青春期后儿童；（2）接受高累积剂量烷化剂化疗的青春期后儿童。对于月经初潮前的女孩，不孕风险极高的纳入标准包括接受过以下任一治疗者：辐射剂量 >10 Gy 的卵巢照射，或异基因或自体造血干细胞治疗（HSCT）。排除标准包括术前因其他抗凝制剂需要额外输注血液制品的患者，或中性粒细胞计数异常者 <1. 对于月经初潮后的女性，不孕风险高或极高的纳入标准包括接受过以下任一治疗者：辐射剂量 >10 Gy 卵巢照射，或异基因 HSCT，环磷酰胺 >9 g/m²，异环磷酰胺 >60 g/m²、丙卡巴肼或亚硝基脲类化合物（BCNU/CCNU） >360 mg/m²。排除标准包括经主管医师评估具有出血风险增加、感染风险增加、手术并发症风险增加或疼痛问题风险增加的患者。

对于卵巢组织冷冻保存（OTC），卵巢组织可在经腹手术（剖腹或腹腔镜）中通过单侧卵巢切除术或活检获取。从获取的卵巢组织中去除髓质后，将剩余的皮质部分切成较小的片段，通过程序化慢速冷冻或玻璃化冷冻技术进行冷冻保存，以备将来用于生育力恢复22。样本随后储存在液氮中，直至患者完成治疗并希望生育。根据癌症类型及是否存在卵巢组织移植的禁忌证，可将组织解冻后进行自体移植，以恢复内分泌功能和卵巢功能。OTC已被证实有效，在成年期采集并冷冻保存的卵巢组织移植后，妊娠率可达50%，已有超过200例活产报道23,24,25。而在儿童期采集的卵巢组织自体移植后报道的活产案例较少，且尚无在明确处于青春期前阶段的卵巢组织自体移植后成功活产的报道26,27,28,29,30。组织质量是成功恢复生育力的前提条件31。因此，研究所采集组织样本的质量至关重要。

目前，评估卵巢组织质量的一种方法是通过组织学切片和人工计数卵泡。然而，由于卵泡数量随年龄增长而自然下降，且卵泡在卵巢中呈异质性分布，因此判断卵泡密度是否正常较为困难。此外，与参考值进行比较也存在挑战，因为现有参考值尚未针对活检样本大小和年龄进行标准化。其他评估方法，如抗穆勒氏管激素（AMH）血清水平检测，或使用钙黄绿素或中性红对消化后的组织进行染色，要么尚未被充分确立，要么各自存在局限性。Wallace 和 Kelsey 之前通过收集无已知卵巢病理患者的完整卵巢卵泡数量数据，建立了卵巢储备功能随年龄变化的正常模型2。此外，由于活检样本并不能代表整个卵巢，Schmidt 等人开发了一种基于皮质活检估算卵泡总数的方法32。通过采用该方法的改进版本以及正常卵巢储备模型，已建立了一个适用于0-25岁女性的卵泡密度参考数据集33。

本文描述了基于小卵巢评估卵泡密度正常性的策略 通过（1）组织学方法直接定量卵泡，以及（2）将结果与年龄标准化的参考值进行比较来分析样本 通过 Z分数。Z分数用于描述卵巢活检样本中卵泡密度与同年龄、同尺寸标准化参照组均值之间的关系。这一指标对于医生在生育力保存后为患者提供自体移植及其他后续治疗的咨询时具有重要价值。

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方案

所有实验程序均获得瑞典伦理审查局（Sveafertil 患者，Dnr: 2019-03802）和赫尔辛基大学医院伦理委员会（HCH 患者，Dnr 340/13/03/03/2015）的批准。研究护士向受试者提供书面和口头研究信息，并根据《赫尔辛基宣言》的要求获取知情同意。对于18岁以下的患者，由其法定监护人签署知情同意书。所有样本均进行假名化处理，并依照《欧盟通用数据保护条例》（GDPR）进行处理。本研究中所用试剂与设备的详细信息列于 材料表.

1. 卵巢组织的采集与处理

注意：当根据当地指南（例如北欧、欧洲或国际特定指南）判断患者存在高或极高不孕风险时，应识别所有符合生育力保存条件的患者。在欧洲，仅可将未成年患者纳入生育力保存研究项目进行招募。应依据本国生育力保存指南评估不孕风险。

  1. 在全身麻醉下进行手术操作。麻醉诱导时给予静脉注射丙泊酚（2 mg/kg）、舒芬太尼（0.5 μg/kg）和罗库溴铵（0.6 mg/kg）。
    1. 插管并以潮气量 6–8 mL/kg 和 6–8 cm H₂O 的呼气末正压对患者进行通气2O. 输送1%至2%的七氟烷 通过 通过气管插管维持吸入麻醉。
    2. 手术过程中使用罗库溴铵（0.15 mg/kg）维持神经肌肉阻滞，以提供充分的肌肉松弛，并允许在较低的腹腔内充气压力下进行腹腔镜检查。
    3. 使用双频指数监测指导麻醉深度，以促进苏醒加快并减少麻醉药物剂量。使用舒更葡糖钠（2–4 mg/kg）拮抗残余肌松作用。
  2. 采用三通道技术，在脐部置入一个10 mm套管针进入腹腔，用于引入带摄像头的光学镜头；在左右髂区（分别位于两侧髂前上棘上方2 cm、内侧2 cm处）直视下置入两个5 mm套管针，用于手术器械操作及组织取出。直视下检查盆腔器官，包括双侧卵巢，确认其正常形态。
    1. 找到最容易接触的卵巢并予以抓持。切除约三分之一的卵巢组织（或根据伦理许可中规定的要求），必要时使用电凝止血。
      注意：仅在无禁忌证的情况下进行活检，例如不存在术中或术后大出血风险或感染风险增加等情况。应明确说明并遵循所在国家的纳入与排除标准。如果不孕风险极高和/或仅切除部分卵巢的风险被认为过高（例如由于出血），可切除整个卵巢。在采集样本前应避免使用电灼术，因其可能损伤组织。
  3. 在手术室中，将组织置于含有5 mL含CaCl₂的1×Dulbecco磷酸盐缓冲液（PBS）的离心管中2，MgCl2，1 g/L D-葡萄糖，36 mg/L 丙酮酸，或预热至 37 °C 如果样本在实验室中立即处理（30分钟内）或保存于 4 °C 在较长的运输过程中（长达24小时）。
    注意：器官运输溶液包括多种市售的器官运输/灌注溶液，以及简单的缓冲液，如 PBS 和 MEM34.
  4. 从卵巢表面切取一小块卵巢组织（2 mm × 2 mm × 2 mm），该组织包含皮质部分，即卵巢的外层区域，卵巢卵泡位于此处。35.
    警告：处理卵巢等人体组织时，应采用生物安全二级（Biosafety Level 2）的实践与操作规程。
    注意：一个专业的生殖医学机构会将剩余的卵巢组织进行临床冷冻保存，以备将来用于患者的生育力恢复。
  5. 将组织置于 350 µL 室温下用 Bouin 溶液固定 2 小时，或在 350 µL 4% 甲醛的 4 °C 过夜，确保组织完全浸没。孵育后，用70%乙醇洗涤组织三次。
    1. 对于Bouin液，冲洗至黄色消失。将组织包埋于石蜡中36至少连续切取30片厚度为 4 µm 并将它们置于玻璃载片上。
      注意：处理Bouin's溶液和甲醛时，必须在化学通风橱内进行，并使用适当的个人防护装备。
      注意：甲醛可能导致组织出现与收缩相关的假象，因此保存组织学结构时首选布因氏液。然而，布因氏液具有额外风险，导致一些机构更倾向于使用甲醛。37.

2. 苏木精和伊红（H&E）染色

  1. 称取5 g伊红Y粉末至一个100 mL的灭菌玻璃瓶中。加入800 mL 95%乙醇和200 mL去离子水，配制成0.5%伊红储备液。取200 mL 0.5%伊红储备液，加入160 mL 100%乙醇、1 mL乙酸和40 mL去离子水，稀释得到0.25%伊红工作液。
    注意：粉末可能无法完全溶解。使用前应过滤溶液以减少沉淀。
  2. 将载玻片放入染色架中。按以下顺序将装有载玻片的染色架浸入相应容器：二甲苯中15 min，100%乙醇中5 min，70%乙醇中浸洗10次，50%乙醇中浸洗10次，最后在去离子水中浸洗10次。
    1. 将装有载玻片的染色架浸入苏木精溶液中染色3 min，然后转移至盛有蒸馏水的容器中清洗30 s，以去除多余的苏木精染料。
    2. 将装有载玻片的染色架放入分化液（将1 mL 37% HCl加入100 mL 70%乙醇中配制）中1 min，随后转移至盛有蒸馏水的容器中清洗30 s。
      注意：确保组织切片完全浸没于液体中。必要时可向容器中补充试剂。当大量染色时，每使用5次后更换二甲苯。通过稀释70%乙醇制备50%乙醇（例如，将35 mL 70%乙醇与15 mL DPBS混合，得到50 mL 50%乙醇）。
      警告：操作二甲苯时应在通风橱内进行，并佩戴适当的个人防护装备。
  3. 将装有载玻片的染色架浸入Scott氏流水（又称蓝化液）中30–60 s，然后转移至盛有蒸馏水的容器中清洗30 s。再将染色架浸入伊红工作液中染色1 min。
    1. 依次将载玻片进行脱水处理：在100%乙醇中30 s，第二个100%乙醇容器中30 s，然后在二甲苯中浸洗两次。从二甲苯溶液中取出染色架后，将其置于玻璃容器中晾干，以防止二甲苯滴入通风橱内。
    2. 在每张载玻片上滴加2滴封片剂，小心加盖盖玻片以避免产生气泡，并让封片剂自然干燥。
      警告：操作二甲苯时应在通风橱内进行，并佩戴适当的个人防护装备。
  4. 如有可能，使用切片扫描仪对切片进行数字化。若无此条件，可在倒置显微镜下以20–40倍放大倍数直接计数卵泡。务必拍摄整个活检组织的图像，以便在图像分析软件中进行面积测量。

3. 卵泡计数

  1. 如果载玻片已数字化，使用适当的软件打开文件（例如，开源软件） QuPath38若未进行数字化，可直接使用倒置显微镜及其配套软件进行分析。
    1. 将文件拖放到 QuPath 的主窗口中。设置图像类型为 明场 H&E （参见 图1A）。使用比例尺定义表面上皮（覆盖表面的单层立方细胞）下方1 mm处。点击 椭圆 工具并标注卵泡（参见 图1B).
    2. 在该1 mm区域内，计数从原始卵泡到初级卵泡阶段的卵泡数量。确定每个卵泡的发育阶段（原始卵泡——由一层扁平的颗粒细胞包围卵母细胞；过渡阶段——扁平和立方状颗粒细胞混合存在；初级卵泡——由一层完整的立方状颗粒细胞包围卵母细胞）。
    3. 输入 样本编号，年龄，卵泡数量 每张载玻片 切片厚度，以及 nth 计入名为的表格中的部分 卵泡（mm）3 在卵泡Z评分计算器Excel文件中（参见 补充文件 1 和 图2A).
      注意：由于卵泡的直径（最小的卵泡 >35 µm），同一卵泡可能在连续切片中出现。当切片间距小于卵泡直径时，计数需格外谨慎。建议每隔10个切片计数一次卵泡th 切片（例如第10、20、30号切片）。在组织处理过程中，表面上皮可能脱落，因此在切片中可能仅部分存在。仅计数可见细胞质的卵泡。为质量控制，应由两人独立进行卵泡计数，并评估两者计数结果的一致性。通过计算同一标本中两位观察者卵泡计数之间的简单相关系数，评估观察者间的一致性。
  2. 通过目测法确定每个计数区域中最大的10%的卵泡。通过点击测量这些卵母细胞的平均直径 线 工具，通过卵母细胞膜绘制两条垂直线，并进行选择 测量，然后 显示注释测量结果 （参见 图1C).
    1. 在该列下记录测量值 长度 µm （参见 图1D）。将所有卵母细胞的平均直径输入到 平均卵母细胞直径（µm) Follicle Z-score 计算器 Excel 文件中每张幻灯片的字段（卵泡（mm）3, 见 补充文件 1 和 图2A).
  3. 将图像置于 QuPath 界面屏幕中央，然后点击 ImageJ 图标。选择 将快照发送至 ImageJ （参见 图3A）。在 ImageJ 中，使用工具从边界处标记出 1 mm 距离 刷子 工具。单击 图像，然后 类型，然后选择 8位 （参见 图3B).
    1. 点击 线 工具，在屏幕左下方的比例尺上画一条线（参见 图3C）。点击 分析，然后 设定比例尺，输入比例尺标示的长度 在 已知距离场，然后点击 好的 （参见 图3C）。点击 图像，然后 调节亮度/对比度，然后选择 自动 （参见 图3D).
    2. 点击 图像，然后 调整，阈值，然后选择 自动 （参见 图3E）。点击 棒状物 工具，选择 面积，然后按压 Ctrl + M （参见 图3F）。将面积值输入至卵泡Z评分计算器Excel文件（卵泡（mm）3, 见 补充文件 1 和 图2A).

4. 卵泡密度、皮质体积和Z评分的计算

  1. 使用提供的卵泡Z评分计算器Excel文件，自动执行下述计算。结果将显示在Excel计算器的“Z评分（每立方毫米卵泡数）”工作表中（参见 补充文件 1），前提是将第3节中注明的详细信息录入“mm³中的卵泡”工作表中。
  2. 为计算这些切片中的卵泡密度，使用 Schmidt 等人提出的修正公式。32首先，应用校正因子 α 以校正同一卵泡被重复计数的情况。修正后的公式如下：
    α计算公式，静力平衡方程，数学教育概念
    递归序列的方程，用于说明数学 progression 及变量间的关系。
    注意：在此公式中， t 是切片厚度， d 为卵母细胞的直径，且 q 是卵泡直径除以切片厚度的商。
  3. 推算卵泡总数（n 卵泡) 用以下公式，根据切片中的卵泡计数计算皮质中的卵泡数33:
    含求和符号的卵泡计数公式、方程分析、教学用途
    注意：此公式同时涵盖了所有未计算的部分。其中 γ 表示未计算的切片数量（例如，若每 10 个切片中有一个被计算，则 γ = 10）th 节段被计数），α 是在 4.1 中计算得到的校正因子， N 为计数的切片数量，且 n i 为计数切片中卵泡的总数。
    1. 外推整个皮层容积（V) 使用以下公式从计数区域计算33:
      用于计算方程中变量的数学公式，V = γ * Σ(Ai * ti)，其中 i 从 1 到 N。
      注意：此处， Ai 是该截面的面积，以及 ti 是组织厚度。请参阅步骤 4.2 以了解 γ 和 N.
    2. 使用以下公式33 计算卵泡密度：
      毛囊密度公式，FD = n_follicles/V，用于研究分析。
  4. 确定是否存在减少的（<-1.7 Z值）卵巢储备功能，通过使用以下公式计算Z值33:
    Z分数方程示意图，统计分析，展示z=(x-M)/SD计算公式
    注意：Z 值将在 Excel 计算器的“Z 值（每立方毫米卵泡数）”工作表中自动计算（参见 补充文件 1）依据第3节（卵泡计数）中提供的信息（图2B）。在此公式中， Z 表示 Z 分数， x 是计算得到的毛囊密度（毛囊数/cm）3) 研究样本的（步骤 4.4）， M 是相应年龄组的平均毛囊密度，以及 SD 为相应年龄组的标准差。Hassan 等人已建立0-25岁女性的参考值。33各年龄组卵泡密度的均值及标准差可参见卵泡Z评分计算器Excel文件（补充文件 1）并用于Z分数的计算。

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结果

在成功完成切片、染色和载玻片扫描后，对卵巢卵泡进行定量分析。根据卵泡的不同发育阶段和健康状况进行区分并进一步分析。图4A展示了成年个体经Bouin液固定的卵巢的HE染色横截面，包含皮质和髓质组织的示例。图4B显示了儿童卵巢的代表性图像，并示出表面上皮的实例。卵巢储备（即非生长卵泡池）以及小型生长卵泡位于皮质中。通过使用虚拟显微镜对卵泡进行放大和分类，以确保仅纳入卵巢储备卵泡。图5展示了在Bouin液固定（图5A）和甲醛固定（图5B）的卵巢皮质组织中发现并计数的卵泡各发育阶段：（1）原始卵泡（直径约40 µm），（2）过渡期卵泡，以及（3）初级卵泡。图中编号为4–6的卵泡为应排除在计数之外的示例，因其无法准确判定其成熟阶段。图6展示了代表性卵巢皮质组织图像，其中卵泡缺失或数量极少（

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讨论

女性出生时具有有限的卵母细胞池，且无法再生。卵巢储备是决定女性生殖潜能的关键因素。本文介绍了一种通过组织学方法定量分析卵泡密度，并将其与参考标准进行比较的方法，即采用年轻患者及25岁以下女性卵巢皮质卵泡密度的Z评分进行评估。

在此方案中，从处于高或极高不孕风险且接受卵巢组织冷冻的女性和女孩中获取卵巢组织 用于生育力保存，或来自接受性别重置手术的患者。通过一小块卵巢组织来评估冷冻保存的材料。由于卵巢储备随年龄变化，将卵泡密度转换为Z分数可实现与从出生至性成熟期间按年龄标准化的参考值进行比较（Hassan等）。33使用Z分数可提供一种年龄标准化且与队列无关的方法，用于评估卵巢储备样本的正常性。首先建立基于年龄的参考组均值，随后用于计算个体样本的Z分数。该方法使得对正常性的评估不受研究人群内年龄分布的影响。卵巢储备的年龄标准化评估，使得来自不同研究人群中具有相似遗传背景或化疗暴露史的患者数据得以整合，从而促进大规模的荟萃分析。

该方法存在局限性。来自无已知卵巢病变患者的卵巢组...

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致谢

我们感谢协助我们进行受试者招募和组织采集的医疗专业人员，以及所有捐赠卵巢组织的患者。同时感谢儿童癌症基金（PR2020-0096）和卡罗林斯卡学院博士生资助项目KID，本研究得益于这些基金的资助。我们还要感谢形态学表型分析平台在制备组织学切片过程中的支持。感谢Nicola Byers对本文稿的语言编辑工作。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1x 沃氏磷酸盐缓冲液Thermo Fisher14190144
含 CaCl2、MgCl2、1 g/L D-葡萄糖、36 mg/L 丙酮酸盐的 1x 磷酸盐缓冲液 Thermo Fisher14287-080
37% 盐酸Sigma-Aldrich1.09057.1000
70% 乙醇Histolabs01370.01L
95% 乙醇Fisher scientific10572143
无水乙醇Histolabs01399.01L
波因液Sigma-AldrichHT10132-1L
伊红 Y 酸性品红Sigma-AldrichE4009-5G 
甲醛Thermo Fisher28908
德拉菲尔德苏木精染液Sigma-Aldrich03971-250ML
ImageJ
Microsoft Excel
切片机 
Pertex 封片液 Histolabs00840-05
丙泊酚Baxter Holding B.V.N01AX10提供 ATC 编码代替货号
QuPathhttps://qupath.github.io/
罗库溴铵 B. Braun Melsungen AG M03AC09提供 ATC 编码代替货号
Scott 人工自来水浓缩液Sigma-AldrichS5134-6x100ml
七氟烷Baxter Medical AB N01AB08提供 ATC 编码代替货号
切片扫描仪 
舒芬太尼Hameln Pharma gmbhN01AH03提供 ATC 编码代替货号
舒更葡糖钠Baxter Holding B.V.V03AB35提供 ATC 编码代替货号
SuperFrost plus 白片 Histolabs 06400 
SuperFrost Plus 白片载玻片Histolabs 06400 
二甲苯Saveen Werner131769.1611

参考文献

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