需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

使用钢板固定技术稳定墨西哥钝口螈(Ambystoma mexicanum)股骨截骨术

1.4K 次观看

⸱

DOI:

10.3791/66648

⸱

2024年4月12日

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

本文内容

摘要

本文介绍了一种在成年墨西哥钝口螈中使用内固定钢板进行股骨截骨术的实验方案。该手术方法可用于开展关于水生两栖动物肢体再生与骨折愈合的比较研究。

摘要

墨西哥钝口螈(Ambystoma mexicanum)因其能够再生缺失或受损的器官(包括四肢、脑、心脏、尾部等)而成为再生医学领域极具前景的模式生物。对墨西哥钝口螈的研究揭示了控制祖细胞激活及损伤后组织修复的细胞与分子通路。这些知识可用于促进不具备再生能力的损伤(如骨不连)的愈合。本方案描述了使用内置钢板固定系统对股骨截骨术进行稳定的手术方法。该操作已针对水生动物(墨西哥钝口螈,Ambystoma mexicanum)进行了优化。实验选用吻端至尾尖长度≥20 cm、股骨完全骨化且大小与小鼠相近的个体,并特别关注钢板的定位与固定以及术后护理。该外科技术可实现标准化且稳定的骨骼固定,有助于与墨西哥钝口螈肢体再生进行直接比较,并可用于两栖类与哺乳类之间骨愈合研究的类比分析。

引言

墨西哥钝口螈(Ambystoma mexicanum)是研究器官再生的重要模型,其可再生的器官包括尾、脊髓、脑、心脏、鳃和四肢1,2,3,4,5。对墨西哥钝口螈肢体再生的深入研究揭示了细胞去分化机制以及在截肢部位形成干细胞池——即芽基(blastema)的过程。由于芽基细胞能够重建所有缺失的肢体部分,包括具有特定模式的骨骼结构6,7,墨西哥钝口螈成为研究骨愈合的理想模式生物。近年来,多项研究更加关注墨西哥钝口螈的骨生物学,描述了其骨骼形态、细胞组成及骨化动态。

在哺乳动物中发现,长骨的骨愈合过程发生 通过 软骨内成骨,包括多个阶段:血肿形成、 granulation tissue(肉芽组织)形成、软性骨痂形成、骨痂骨化形成硬性骨痂和编织骨,以及骨重建8最近一项研究表明,在墨西哥钝口螈的骨愈合过程中也可观察到类似的阶段。9.

迄今为止,墨西哥钝口螈的骨折研究均在非稳定系统中进行,即仅使用虹膜剪简单切断骨骼。在前肢或后肢的中段(中轴骨)制造大段骨折,其中对一根骨骼进行截骨,而另一根骨骼则作为支撑10,11。相比之下,在哺乳动物(包括大鼠和小鼠)中,通常采用可靠的固定系统(如髓内针和骨对位钢板)来研究骨折,以控制骨折的大小并确保骨骼的正确对位。

因此,该方法旨在确保在截骨前对墨西哥钝口螈股骨进行稳定且均匀的固定。为了使墨西哥钝口螈的研究更易于与哺乳动物(包括小鼠和人类)进行比较,曾考虑采用髓内针12、外固定板13,14,和内固定骨对接板15,16,17 固定方式。其中,内固定骨对接板被证明可实现良好的骨固定,并可通过使用特定直径的Gigly锯进行一次或两次切割,形成特定尺寸的骨缺损间隙。由于墨西哥钝口螈是Ambystoma mexicanum的水生幼体,使用外固定装置可能因开放性伤口与水接触而引发术后并发症。此外,墨西哥钝口螈即使在发育后期(20岁18)也不会形成次级骨化中心,因此在小鼠中常用的标准化髓内钉可能无法避免穿透骨骺。基于上述原因,决定对大型墨西哥钝口螈采用内固定钢板方法。在大型个体中,其股骨大小和骨化程度与成年小鼠相似,因此可实施骨干中段截骨并使用钛板进行固定1。

骨折间隙的大小在很大程度上决定了愈合的动力学过程和最终结果。例如,在小鼠中,0.25 mm的稳定骨折由于间隙小且固定 rigid,主要通过膜内 成骨方式愈合;而0.7 mm的骨折则通过软骨内成骨方式愈合,并在骨折周围形成软骨性骨痂;较大的缺损(如3.5 mm的临界尺寸缺损)则无法完全愈合,因此常被用于模拟骨骨折不愈合模型16。本研究建立了在截骨前对蝾螈股骨进行钢板固定的实验方案,以0.7 mm骨折间隙为例,最终目标是将蝾螈的骨愈合过程与小鼠进行比较9。

截骨术后,骨折部位经历了软骨内成骨过程,尽管其速度比小鼠慢,这可能与墨西哥钝口螈的水生生活方式及较慢的细胞分裂速率有关。本文所展示的方法采用0.7 mm间隙截骨并结合刚性接骨板固定;然而,其他间隙尺寸、半柔性固定装置以及不同材料的接骨板也具有应用潜力。总体而言,本文所述方法可用于标准化的骨固定,有助于比较墨西哥钝口螈肢体再生与骨愈合的研究,或在不同条件下研究墨西哥钝口螈骨愈合过程,以确保骨折固定的标准化。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

以下操作已获得维也纳市行政主管部门批准(文件编号:MA 58-65248-2021-26)。使用5至8岁、吻端至尾尖长度≥20 cm的墨西哥钝口螈(axolotls)Ambystoma mexicanum用于骨折手术和截肢手术的墨西哥钝口螈包括雄性和雌性个体。实验所用个体均于分子病理学研究所设施内繁育。通过使用适当的镇痛剂和抗生素来控制疼痛及感染风险,以确保手术成功。本研究中所用试剂与设备列于下文 材料表.

1. 动物准备

  1. 将动物置于0.03%苯佐卡因溶液中浸泡约15–20分钟,直至完全镇静,用镊子触碰肢体时无反射性运动。
  2. 将动物腹侧朝下放置在浸有0.03%苯佐卡因溶液的湿纸巾上,并用含苯佐卡因的湿纸巾覆盖其身体。水生动物(如墨西哥钝口螈)的皮肤易干燥,因此必须覆盖体表以防止脱水,并确保皮肤呼吸正常进行。
  3. 使用环形镊子将待手术的后肢拉直。请勿使用乙醇等消毒剂,因为墨西哥钝口螈的皮肤对化学物质敏感,容易受到刺激。建议使用含50 U/mL青霉素和20 µg/mL链霉素的0.7倍磷酸盐缓冲液(A-PBS)清洗肢体,并在锯骨过程中用于骨组织的冲洗。
    注意:墨西哥钝口螈手术通常无需过度担心感染问题。但由于这些动物生活在水中,且缝线位于皮肤表面,我们建议使用抗生素以预防手术部位可能的污染。

2. 手术

注意:所有手术器械均需灭菌。常用的灭菌方法包括干热灭菌、高压蒸汽灭菌,以及用70%乙醇清洗后彻底去除残留酒精,这些方法均适用于本操作。若对多个动物进行手术,可在使用间隙通过高温珠灭菌器或70%乙醇对器械进行灭菌。

  1. 在后肢大腿上部的股骨上方,用手术刀做一个横向纵向切口(1.5–2 cm),切口应跨越整个大腿。操作前需先触诊骨组织以定位,再切开皮肤。
  2. 小心地将肌肉和神经从手术部位移开,避免切割。使用弯头镊子以提高操作效率。
  3. 用弯钳轻轻置于股骨下方,以暴露手术部位。
  4. 将一块刚性7.75 mm四孔固定板沿股骨干放置,避免接触关节,并用镊子将其固定在对齐的位置。
  5. 使用四枚2 mm的钛合金螺钉将骨骼固定在接骨板上。
    注意:本方案中使用的螺钉结构复杂,由4个部分组成:主体部分(将拧入骨内)、螺钉头部(可使用方形扳手拆卸螺钉和接骨板)、较细的颈部(在螺钉拧紧入骨后作为断裂点)以及螺钉手柄(用于连接螺丝刀和锯导引装置)。
  6. 螺钉安装顺序至关重要。首先安装内侧螺钉,然后安装两个外侧螺钉,以确保接骨板与骨轴对齐。使用手动钻在骨上钻出第一个孔,以便螺钉顺利插入,随后进行1st 螺钉置入。在骨周径的中点进行钻孔,以避免一侧骨质过薄,导致自发性骨折。钻孔时使用0.7× PBS + 1% 青霉素/链霉素进行灌注。切勿折断1st (可选:1st 和 2nd) 螺丝。
  7. 将锯导引装置放置于1上st (可选:1st 和 2nd )螺钉并将其与骨骼和接骨板对齐。
    注意:本方案中使用的接骨板、螺钉、锯导引装置和锯片均由同一制造商提供,且经过优化设计以确保相互匹配。锯导引装置有多种规格,可适配不同型号的接骨板和锯片尺寸。
  8. 使用锯导装置钻孔并插入其余螺钉。确保接骨板与骨骼对齐。折断螺钉的手柄。
  9. 在股骨下方放置一片经70%乙醇擦拭后高压灭菌或干热灭菌(140 °C,4小时)的塑料薄膜(6–7 mm × 4–5 cm),以防止截骨过程中软组织受损。
    注意:可用于此目的的材料包括一段塑料膜,可取自用于热力灭菌的包装袋。
  10. 将Gigly线锯置于骨骼与保护膜之间。
  11. 使用0.66 mm的Gigly线锯在股骨上进行切割,形成一条0.7 mm的切口。切割过程中持续用0.7× PBS + 1%青霉素/链霉素冲洗,以最大限度减少组织损伤和摩擦。
  12. 移除锯子和锯导板,并使用螺丝刀将螺丝的手柄从螺丝上折下。
  13. 移除保护膜,并用0.7倍PBS + 1%青霉素/链霉素冲洗手术部位。
  14. 用无菌骨蜡覆盖骨板和螺钉的顶部,以保护皮肤和肌肉免受螺钉边缘的刺激。
  15. 将肌肉和皮肤放置在骨蜡上。
  16. 使用7.0合成聚丙烯/聚乙烯缝线,采用单纯间断缝合法关闭切口。使用合成缝线可最大限度减少水源性细菌和真菌的污染。

3. 术后管理

  1. 为使动物复苏,将其放入含有新鲜人工池水的容器中,并补充50 U/mL青霉素、20 µg/mL链霉素以及镇痛剂布托啡诺(0.5 mg/L水)。
  2. 观察动物是否开始活动鳃部、产生步态动作并开始游动——通常在手术后1小时内出现。
  3. 手术后将动物在含50 U/mL青霉素和20 µg/mL链霉素的人工池水中饲养3天,然后再移回饲养缸。为确保镇痛效果,需添加布托啡诺(0.5 mg/L水)。
  4. 确保缝线保持原位,并观察伤口是否正常愈合。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

此处描述的手术过程(图1)持续20至30分钟,需要一名外科医生和一名助手。可选择使用双目解剖显微镜或放大镜系统。

骨骨折固定示意图;该过程包括钻孔、拧螺钉、置入 Cage 及测试阶段。
图1手术操作示意图与实验装置示意图。 (A通过解剖皮肤并牵开手术区域的肌肉来暴露股骨。B将一块钛板与股骨对齐。C) 1st 使用手动钻头钻出内孔。 (D) 将一颗...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

目前描述的股骨钢板固定与截骨方法可应用于水生动物,例如Ambystoma mexicanum(墨西哥钝口螈)。该手术方法最近被用于比较墨西哥钝口螈骨折愈合与肢体再生过程与小鼠骨折愈合的差异9。与小鼠类似,可使用自断裂螺钉将四孔固定钢板连接至骨骼,并可用Gigly锯制造尺寸均一的骨折15。钢板固定有助于维持骨折间隙大小,并确保骨碎片的正确对位。镇痛方法也通过采用丁丙诺啡浸泡法进行了优化,因其侵入性较小(相较于丁丙诺啡注射),且据报告不会影响骨愈合过程(与卡洛芬不同)。然而,由于目前对两栖类动物总体及术后疼痛管理的认识仍十分有限,建议采用预先镇痛处理作为该手术方案的进一步优化措施。在此方面,可参考其他两栖动物物种中已使用的相关操作规程19。为了更客观地评估动物术后健康状况,建议制定并应用特定评分表,以明确干预措施和人道终点的判定标准。

与小鼠实验方法16不同,在截骨前需使用塑料薄...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

作者声明无竞争利益。

致谢

作者感谢Sabine Stumpp提供的出色技术支持,以及Lidia Grösser在手术中的协助。本研究由奥地利科学基金(Hertha Firnberg奖学金项目编号T-1219)、欧洲研究委员会(ERC高级资助项目742046 RegGeneMems)和德国研究基金会(DFG CRC 1444)资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
0.66 mm Gigly 金刚石线锯 RISystemRIS.590.120
7.0 Optilene 缝合线 布劳恩C3090538
苯佐卡因 Sigma-AldrichE1501稀释至0.03%  使用之前
布托啡诺(Butomidor 10 mg/mL)Richter Pharma AG-稀释至 0.5 mg/L  使用之前
0.30 mm 钻头RISystemRIS.590.200
Dumont #5 镊子 - 标准型/不锈钢Fine Science Tools11251-20
手钻RISystemRIS.390.130最好至少准备3个样本
微型CT数据分析师Bruker,美国马萨诸塞州比勒里卡SkyScan NRecon 软件
微型CT样本扫描仪Bruker,美国马萨诸塞州比勒里卡SkyScan 1172 
Moria MC31b 眼科镊 - 光滑,弯曲,10 cmFine Science Tools11373-12FST2 件
MouseFix 钻孔器&Saw 指南 1.75 mm,刚性RISystemRIS.301.102
MouseFix 四孔刚性板RISystemRIS.401.110
MouseFix 螺钉,L = 2.00 mmRISystemRIS.401.100每根骨需要4个
窄型镊子VWRFSCI11002-12
青霉素/链霉素Gibco15140-122
环形钳Fine Science Tools11103-09
15号手术刀B Braun,赛默飞世尔科技5518032
方头扳手 0.50 mmRISystemRIS.590.111
无菌骨蜡,2.5 gEthicon, Johnson &安普和约翰逊W810
学生用精细剪刀 - 直头/11.5厘米Fine Science Tools91460-11

参考文献

  1. Amamoto, R., et al. Adult axolotls can regenerate original neuronal diversity in response to brain injury. Elife. 5, 13998(2016).
  2. Butler, E. G., Ward, M. B. Reconstitution of the spinal cord following ablation in urodele larvae. J Exp Zool. 160 (1), 47-65 (1965).
  3. Echeverri, K., Tanaka, E. M. Ectoderm to mesoderm lineage switching during axolotl tail regeneration. Science. 298 (5600), 1993-1996 (2002).
  4. Vargas-Gonzalez, A., Prado-Zayago, E., Leon-Olea, M., Guarner-Lans, V., Cano-Martinez, A. Myocardial regeneration in Ambystoma mexicanum after surgical injury. Arch Cardiol Mex. 75 (3), S321-S329 (2005).
  5. Vieira, W. A., Wells, K. M., McCusker, C. D. Advancements to the axolotl model for regeneration and aging. Gerontology. 66 (3), 212-222 (2020).
  6. Song, F., Li, B., Stocum, D. L. Amphibians as research models for regenerative medicine. Organogenesis. 6 (3), 141-150 (2010).
  7. McCusker, C., Bryant, S. V., Gardiner, D. M. The axolotl limb blastema: Cellular and molecular mechanisms driving blastema formation and limb regeneration in tetrapods. Regeneration (Oxf). 2 (2), 54-71 (2015).
  8. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions). Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  9. Polikarpova, A., et al. The specialist in regeneration-the Axolotl-a suitable model to study bone healing. NPJ Regen Med. 7 (1), 35(2022).
  10. Chen, X., et al. The axolotl fibula as a model for the induction of regeneration across large segment defects in long bones of the extremities. PLoS One. 10 (6), e0130819(2015).
  11. Cosden-Decker, R. S., Bickett, M. M., Lattermann, C., MacLeod, J. N. Structural and functional analysis of intra-articular interzone tissue in axolotl salamanders. Osteoarthritis Cartilage. 20 (11), 1347-1356 (2012).
  12. Williams, J. N., Li, Y., Valiya Kambrath, A., Sankar, U. The generation of closed femoral fractures in mice: A model to study bone healing. J Vis Exp. (138), e58122(2018).
  13. Cheung, K. M., et al. An externally fixed femoral fracture model for mice. J Orthop Res. 21 (4), 685-690 (2003).
  14. Jiang, S., Knapstein, P., Donat, A., Tsitsilonis, S., Keller, J. An optimized protocol for a standardized, femoral osteotomy model to study fracture healing in mice. STAR Protoc. 2 (3), 100798(2021).
  15. Matthys, R., Perren, S. M. Internal fixator for use in the mouse. Injury. 40, Suppl 4 S103-S109 (2009).
  16. Manassero, M., et al. Establishment of a segmental femoral critical-size defect model in mice stabilized by plate osteosynthesis. J Vis Exp. (116), e52940(2016).
  17. Gunderson, Z. J., Campbell, Z. R., McKinley, T. O., Natoli, R. M., Kacena, M. A. A comprehensive review of mouse diaphyseal femur fracture models. Injury. 51 (7), 1439-1447 (2020).
  18. Riquelme-Guzman, C., et al. Postembryonic development and aging of the appendicular skeleton in Ambystoma mexicanum. Dev Dyn. 251 (6), 1015-1034 (2022).
  19. Gentz, E. J., et al. Medicine and surgery of amphibians. ILAR J. 48 (3), 255-259 (2007).
  20. Lang, A., et al. Collagen I-based scaffolds negatively impact fracture healing in a mouse-osteotomy-model although used routinely in research and clinical application. Acta Biomater. 86, 171-184 (2019).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

探索更多文章

墨西哥钝口螈再生骨愈合内固定软骨内成骨显微CT分析肢体再生骨不连