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方法文章

大鼠眼内注射技术:低不良反应风险

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DOI:

10.3791/66662

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2024年5月31日

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* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本方案描述了一种通过中央角膜切口和长隧道进入前房的大鼠前房注射技术。该注射方法可最大限度地降低意外组织损伤的风险,从而提高操作的精确性和可重复性。

摘要

前房注射是眼科领域的一种标准给药方式。由于啮齿类动物眼部结构尺寸有限,包括房水体积小、晶状体曲率及晶状体厚度等因素,将其应用于科研中的前房注射操作具有挑战性。前房注射过程中可能造成的眼部损伤会引发不良反应并增加实验变异性。本方案介绍了一种在大鼠中实施前房注射的操作流程,可实现高精度和可重复性。

Sprague-Dawley大鼠被用作实验模型。由于大鼠晶状体位置突入前房,若采用与人类相同的方式从周边部注射,则操作不利。因此,使用31号0.8 mm尖刀在角膜中央区域制作切口,形成可自封闭的隧道通向前房。在角膜中央区域制作切口 接近平角的角度可形成较长的隧道,从而最大限度减少房水丢失和前房变浅。将34G纳米针插入隧道内进行注射,可实现低摩擦阻力穿透,并避免接触晶状体。注入台盼蓝可 可视化 通过裂隙灯显微镜观察前房内染料的存在,并排除渗漏。通过注射Hoechst染料显示角膜内皮层的生物可利用性,染料注射后可对角膜内皮细胞核进行染色。

综上所述,本方案建立了一种在大鼠眼前房内进行精确注射的操作流程。该方法可用于在实验性大鼠模型中向眼前房递送多种药物和化合物,从而提高眼科研究的效率与可重复性。

引言

局部给药至眼表的化合物生物利用度通常极为有限 <5%1滴眼液给药的化合物主要通过引流、刺激性泪液分泌、泪液更新以及结膜吸收等方式被清除。此外,角膜-结膜屏障极大地限制了化合物透过眼表的渗透。1,2,3角膜由三层主要结构组成:最外层的上皮层、中间的基质层和最内层的内皮层。表层角膜上皮细胞之间通过紧密连接相互连接,形成较高的细胞旁通路电阻,构成物质通透的主要屏障。多层上皮结构进一步限制了亲水性及大分子物质通过角膜上皮细胞间隙的渗透。紧接上皮层之后的基质层由胶原纤维构成,并含有水性孔隙。与角膜上皮不同,基质层允许亲水性药物通过;然而,其对脂溶性化合物则具有显著的低通透性。1,2,3角膜上皮层和基质层共同构成了限制药物吸收的主要组织屏障。角膜内皮层通常不被视为限制药物转运的因素。

除角膜给药途径外,结膜途径也是一种选择。结膜是一种多层上皮组织,覆盖于眼睑内侧表面及巩膜前部。与角膜上皮相比,结膜的紧密连接较少,因而对亲水性药物具有更高的通透性。然而,结膜具有血管化特征,导致大部分给药分子被系统性吸收,从而再次显著限制了药物在前房中的生物利用度1,2。一种有效绕过眼部外层通透性屏障的方法是将药物直接递送至目标区域。例如,玻璃体内注射常用于向玻璃体腔内递送药物4。同理,前房内注射则用于将药物递送至前房5。在前房中建立有效的药物浓度对于多种临床情况至关重要,例如通过前房内注射抗生素治疗感染,以及白内障手术后的抗炎治疗。尽管前房内注射可提高药物的生物利用度,但仍存在重要的安全性问题需要考虑。例如,前房内药物注射可能引起眼内压升高、毒性前段综合征以及毒性内皮细胞破坏综合征5,6。因此,在临床前研究中必须仔细评估前房内注射药物的疗效与安全性,以最大化治疗效果,并将患者潜在的不良反应降至最低。

在临床前研究中,实验动物模型对于探索新疗法至关重要。小啮齿类动物(如小鼠和大鼠)是此类研究中最常用的实验动物。这些动物在解剖学和生理学方面与人类具有诸多相似之处,可提供重要的研究信息。此外,由于其体型小、易于饲养、妊娠周期短且繁殖能力强,使用这些动物具有显著的经济优势7。

尽管小型啮齿类动物在眼病模型中被广泛使用,但其独特的眼部尺寸和解剖结构在实验操作中带来了显著挑战。例如,在人类中相对简单的前房注射操作,在小鼠和大鼠中却具有较高的技术难度。这些困难主要源于房水体积小、晶状体相对较大且缺乏弹性,以及晶状体在啮齿类动物眼内的位置和曲率造成的阻碍(图1)8。这些因素增加了在啮齿类动物中进行前房注射时造成损伤的风险,可能导致不良反应,并引入实验变异性,从而影响研究结论的可靠性。在我们的研究中,已成功建立了一种在大鼠中安全实施前房注射的操作方法。该技术通过在角膜上构建一条长而平坦、可自行闭合的隧道通向前房。该方法不仅确保了操作的精确性,还提高了实验的可重复性,有效解决了小型啮齿类动物注射技术中的相关问题。

眼睛解剖结构比较示意图:大鼠与人类;晶状体、虹膜、角膜标注,用于教学。
图1:大鼠与人类眼球前段解剖结构特征的示意图。 请点击此处查看该图的放大版本。

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方案

本方案中的实验已获得国家动物科学许可委员会批准,并符合ARVO关于在眼科和视觉研究中使用动物的声明。本研究使用8至10周龄的雌性Sprague-Dawley大鼠,动物处于12小时光照/12小时黑暗的循环环境中。实验动物购自商业来源(见材料表)。

1. 动物准备

  1. 配制氯胺酮(80 mg/kg 体重,0.8 mL)和赛拉嗪(4 mg/kg 体重,0.2 mL)的麻醉混合液,并通过单次腹腔注射对大鼠进行麻醉。
  2. 通过单次腹腔注射给予镇痛剂丁丙诺啡(0.03 mg/kg)。
  3. 将0.4%奥布卡因局部眼用麻醉剂滴于双眼。

2. 创建自密封角膜隧道

  1. 使用眼科手术镊夹住角膜缘旁垂直中线处的上方巩膜,以固定眼球。
  2. 在手术显微镜下,将无菌的0.8 mm、31 G刀头的柳叶刀置于中央角膜区的垂直中线上(瞳孔中心上方),刀片保持平放,角度尽可能接近水平(图2)。
  3. 在此位置刺穿角膜,制作切口并形成一个长隧道(2–3 mm),直至进入前房中央区域。避免接触晶状体(图2)。
    注意:成功的隧道切口不会引起房水渗漏,也不会导致前房变浅。
  4. 对注射眼局部使用0.3%氧氟沙星和0.1%地塞米松。
  5. 按以下步骤进行裂隙灯显微镜检查。
    1. 观察注射眼与未注射眼的前房深度是否一致。
      注意:前房深度应相似。
    2. 观察注射眼与未注射眼的晶状体情况。
      注意:晶状体应透明。混浊可能提示手术过程中晶状体受损。

显示角膜切口的眼科手术示意图;标签指示晶状体、前房和刀片位置。
图 2:刀片及切口角度与位置的示意图。 请点击此处查看此图的放大版本。

3. 选项1:前房内注射台盼蓝以评估注射是否成功进入前房

  1. 用无菌的10 µL玻璃Hamilton注射器(带34 G钝针头)吸取5 µL台盼蓝。
    注意:在模型校准或建立阶段,注射台盼蓝可用于评估注射是否成功。在正式实验中,注射器内可装载所选化合物的溶液。
  2. 将装有液体的注射器针头经第2节中创建的隧道插入前房。
  3. 注射后保持针头位置不动2-3秒,直至所有液体完全弥散。
  4. 缓慢轻柔地拔出针头,以避免角膜隧道处发生渗漏。
  5. 在裂隙显微镜下进行检查,评估前房深度以排除变浅情况,并确认前房内存在台盼蓝。
  6. 分别在24小时、48小时和72小时后重复裂隙灯检查。

4. 选项2:通过Hoechst眼内注射评估注射物质对内皮细胞层的生物利用度

  1. 将5 µL Hoechst加入无菌的10 µL玻璃Hamilton注射器中,并安装34 G钝头针。
    注意:注射Hoechst用于评估注入物质的生物可利用性,通过观察其在内皮细胞层中的摄取情况,在模型校准或建立阶段具有参考价值。在实验条件下,注射器中可装载所选化合物的溶液。
  2. 将装有试剂的注射器针头穿过第2节中创建的隧道,插入前房。
  3. 注射后保持针头位置不动2–3秒,直至所有液体完全排出。
  4. 缓慢轻柔地拔出针头,以避免角膜隧道切口处发生渗漏。
  5. 注射后约15–20分钟,通过腹腔注射500 mg/kg戊巴比妥钠处死大鼠。
  6. 摘除双眼并分离角膜。将未注射侧角膜作为对照样本保存。
  7. 根据制造商说明书,使用0.5%茜素红S对两侧角膜进行染色,以识别内皮细胞。
  8. 在光学显微镜下观察茜素红S染色的内皮细胞成像,并在荧光显微镜下观察Hoechst染色情况,以未注射侧角膜作为对照进行比较。

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结果

根据上述方案,向Sprague Dawley大鼠前房内注射5 µL台盼蓝。注射后立即进行裂隙灯检查,结果显示前房被台盼蓝染色,表明注射物质已到达前房(图3)。此外,前房深度保持正常,提示注射未导致房水外漏或前房变浅。

显微镜下的眼部解剖结构;眼球结构,毛细血管细节,细胞研究。
图3:前房内注射后完整的眼前房结构。将台盼蓝注入大鼠眼前房。裂隙显微镜检查显示台盼蓝存在于前房内,无渗漏或前房变浅现象。比例尺 = 1 mm。

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讨论

临床前研究模型应提供一个受控且可重复的环境,以确保研究结果的可靠性和适用性。在眼科研究中,眼内注射模型常用于多种研究领域,包括建立疾病模型、测试新疗法以及评估组织反应和潜在不良反应。

前房注射是实验眼科学中常用的技术,可通过绕过角膜外组织屏障,将化合物直接递送至房水中5。这种通过前房注射实现的靶向给药方式,可确保药物以最佳浓度到达预定作用部位,如晶状体、小梁网或角膜内皮细胞,从而最大化治疗效果。

在小型啮齿类动物中进行前房注射存在多项技术挑战,可能影响实验的可重复性与成功率。首先,啮齿类动物眼球尺寸较小,难以在不损伤眼内结构的前提下实现有效进入和操作。在此方面,大鼠因其眼球较大,相较于小鼠具有一定优势。其次,晶状体位于空间受限的前房内,可能阻碍通往注射部位的路径。与其他哺乳动物(包括人类)相比,大鼠的晶状体较为突出或显著,这与其相对于眼球的较大尺寸有关(图1)。此外,大鼠晶状体缺乏人类晶状体所具有的弹性。因此,必须谨慎操...

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披露

Marcovich A. L. 在 Steba Biotech、Yeda Weizmann、EyeYon Medical 和 Mor Isum 拥有专利,并担任 EyeYon Medical 和 Johnson & Johnson 的顾问。其他所有作者均无利益冲突。

致谢

本研究由以色列科学基金会资助,资助编号为2670/23和1304/20。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
茜素红 Alpha Aesar042040.5
丁丙诺啡 Richter pharma102047
地塞米松 0.1% Fisher Pharmaceutical393102-0413
Hamilton 玻璃注射器 10 μL Hamilton Co.721711
Hoechst MerckB2261
氯胺酮Bremer pharma GMBH (medimarket)17889
0.3% 氧氟沙星滴眼液AllerganE92170
盐酸奥布卡因 0.4% Fisher PharmaceuticalN/A
戊巴比妥钠 200 mg/mLCTSN/A
裂隙显微镜 Haag-streit bernb-90019115
Sprague-Dawley 大鼠EnvigoN/A
Stiletto 刀片 31G 0.8 mm Tecfen medical (skymed)QKN2808
手术显微镜ZeissOPMI-6 CFC
台盼蓝Sartorius03-102-1B
赛拉嗪Eurovet Animal Health 615648

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