方法文章

利用微流控电喷雾技术制备含不同金属离子的交联海藻酸钠微球

DOI:

10.3791/66871

2024年6月7日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

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本方案描述了利用微流控装置制备由不同金属离子交联的海藻酸钠微球,用于药物载体设计。同时研究了这些微球的抗菌性能和缓释药物特性。

摘要

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微球是微米级颗粒,可通过物理包埋或在聚合物表面及内部吸附的方式负载药物,并实现药物的缓慢释放。在生物医学领域,由于水凝胶微球能够减少给药频率、降低副作用并提高患者的依从性,其作为药物载体的应用已得到广泛研究。海藻酸钠(ALG)是一种天然线性多糖,具有三种主链糖苷键结构。该聚合物的每个单元上均含有两个辅助羟基,具备醇羟基的化学特性。合成的ALG单元可与金属离子发生化学交联反应,形成聚合物堆叠的交联网络结构,最终生成水凝胶。利用ALG的离子交联特性,可通过简单工艺制备水凝胶微球。本研究采用微流控电沉积策略制备了基于ALG的水凝胶微球(ALGMS)。由于对微流控电喷雾流的精确控制,所制备的水凝胶微球尺寸均匀、分散性良好。通过结合微流控技术与高电场的微流控电喷雾方法,制备了由不同金属离子交联的ALGMS,并对其抗菌性能、缓释药物能力及生物相容性进行了研究。该技术在先进药物研发与生产中具有良好的应用前景。

引言

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药物递送系统是生物组织工程领域的一个研究热点,旨在提高药物递送的效率和疗效,同时减少不良反应和副作用1。在众多递送系统中,水凝胶微球因其良好的生物相容性、可调控的机械性能以及功能可塑性,成为最常用的药物负载与递送载体之一2。水凝胶微球可用于药物的缓释和控释,对药物具有良好的保护作用,能够避免或最小化药物在其他组织中的非特异性效应,并实现向特定组织结构的靶向递送3。因此,水凝胶微球已成为一种新型高效的药物递送系统,相关研究正逐步兴起4

水凝胶微球通常由可生物降解的材料合成,包括多糖、蛋白质和天然聚合物5。其中,海藻酸钠(ALG)是一种从海洋褐藻中提取的生物相容性好、可生物降解的多糖6。其分子链上含有游离的羟基和羧基,可与大多数二价或多价阳离子交联,形成具有三维网络结构的不溶于水的水凝胶5。ALG形成的水凝胶微球在中性和碱性溶液中可转变为带负电荷的聚电解质。负电荷之间的排斥作用导致微球溶胀,从而释放出包封的活性成分或药物。这些特性使得ALG微球被视为有前景的药物载体,广泛应用于药物负载与可控释放7

制备水凝胶微球的方法有多种。传统的海藻酸盐微球(ALGMS)制备方法通常包括溶胶-凝胶法或乳液-溶胶法。这些方法通过沉淀、共沉淀以及凝胶化反应等步骤,获得目标微球8。近年来,随着微流控技术的不断发展,微流控电喷雾法逐渐成为一种高效且精确的微球制备方法9。该方法利用微流控技术将聚合物溶液通过微细喷嘴进行电喷雾,在后续的固化或交联过程中形成微米级液滴和微球10。与传统方法相比,微流控电喷雾可通过调节溶液流速、电压和喷嘴尺寸等参数,精确控制微球的粒径和形貌11。同时,该方法可实现微球的高速连续制备,提高制备效率,并保持温和的反应条件。此外,ALGMS还可被设计为具有多种功能,例如负载控释药物或催化剂,从而便于其在多个领域的应用。

本文介绍了一种利用微流控电喷雾法制备海藻酸盐(ALG)微球的实验方案。该过程包括将ALG溶液通过微流控装置并施加电喷雾,生成的液滴被收集于含有不同金属离子(Ca2+、Cu2+、Zn2+和Fe3+)的溶液中,以引发交联反应。该反应可提高微球的稳定性和黏附性,并赋予其不同的功能特性。该方法操作简便,所合成的微球在形态上表现出良好的粒径均一性。此外,我们还研究了其抗菌性能、缓释药物能力以及生物相容性。本方案将有助于后续的药物开发与生产。

方案

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实验所用血液取自体重为20-25 g、约7周龄的SPF级雌性BALB/c小鼠。所有动物护理和实验程序均经浙江树人学院动物实验伦理委员会批准。

1. 溶液配制

  1. 称取海藻酸钠(ALG),加入超纯水中,在50 °C水浴中搅拌溶解,配制成2%的ALG溶液。
  2. 分别用超纯水配制质量分数为5%(或摩尔浓度为0.3 M)的CaCl2、FeCl3、ZnSO4和CuSO4溶液。将每种溶液分别倒入收集皿中。

2. 微流控电喷雾装置

  1. 取一根玻璃毛细管,将其置于本生灯火焰上加热软化,然后拉伸至不同直径(50 µm–500 µm)。使用玻璃切割器切下细端,并用高质量碳化硅砂纸轻轻打磨尖端开口。清洗后,将毛细管较粗的一端连接至一段长导管,导管另一端连接分配针头和一个5 mL注射器(补充图1)。
    注意:玻璃管切割处的锐边难以插入软管;因此,应将切口在火焰边缘加热使其边缘圆滑。
  2. 将注射器固定在微流控注射泵上,并将毛细管一端固定于夹持器中。将高压电源的红色高压输出夹连接至注射器的分配针头,并将银色夹子置于收集液中。此装置构成一个简单的微流控电喷雾装置(图1A)。
    注意:应使毛细管垂直于实验台放置。

3. ALG 微球的制备

  1. 将含有不同金属离子的独立收集皿直接置于毛细管下方。打开微流控注射泵,选择快速前进以用海藻酸钠(ALG)预润管路,然后设定合适的流速(2 mL/h)。
  2. 打开高压电源开关,旋转旋钮调节至合适的电压(5–7 kV)。
  3. 向每个90 mm的培养皿中加入20 mL溶液,用于收集海藻酸钠微球,从而形成与不同金属离子交联的ALGMS(图1B)。
  4. 在电场和重力作用下,海藻酸钠在不同离子收集溶液中数秒内形成微球。用无菌移液器吸取微球,转移至各自的1.5 mL离心管中,得到Zn2+、Ca2+、Cu2+和Fe3+交联的海藻酸钠水凝胶微球(图1C)。标记Zn-ALGMS、Ca-ALGMS、Cu-ALGMS和Fe-ALGMS离心管。
    注意:通过调节电压、针尖直径、流速和溶液浓度等参数,可获得不同直径的微球。
  5. 取少量制备好的微球,尽可能均匀地分散于PBS中,置于显微镜下观察成像。
  6. 在同一组微球中随机选取10个观察视野,将待测图像导入ImageJ软件,将图像转换为适当的灰度模式,利用阈值分割技术准确定义目标颗粒的区域,并启动颗粒分析功能,使ImageJ能够识别并测量目标颗粒。获取微球数据后,将数据导入Origin软件进行分析和粒径分布绘图。

4. 抗微生物性能测试

  1. 使用液体LB(Luria-Bertani)培养基,制备初始细菌浊度为0.2 mcF的金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureusS. aureus)和大肠杆菌(Escherichia coliE. coli)各5 mL的菌悬液。
  2. 将每种细菌溶液各10 mL分别加入4个独立的15 mL无菌离心管中。然后,向每个离心管中分别加入0.5 mL的Zn-ALGMS、Ca-ALGMS、Cu-ALGMS和Fe-ALGMS ALG,置于37 °C、200 rpm的恒温摇床中振荡培养12小时。对照组加入等量生理盐水。
  3. 用无菌水将每种细菌溶液稀释105倍。取200 µL菌液,用无菌玻璃涂布棒均匀涂布于LB固体培养基表面。
  4. 迅速而均匀地将菌液涂布于平板表面,避免在同一区域来回涂布。随后将平板置于37 °C培养箱中培养12小时,观察各组菌落生长情况。
    注意:所有无菌操作均应在酒精灯附近进行。微生物培养容器、接种工具及培养基均需灭菌处理。

5. 药物释放测试

  1. 为评估不同微球的药物释放能力,采用牛血清白蛋白(BSA)作为负载的模型药物。将每种微球(Ca-ALGMS、Cu-ALGMS、Zn-ALGMS 和 Fe-ALGMS)各 500 µL 加入 1 mg/mL 的 BSA 悬液中,孵育 24 小时。
  2. 进行药物释放实验时,将每种饱和样品加入 5.0 M 磷酸盐缓冲液(PBS;pH 7.4)中,在 37 °C 下以 80 rpm 持续振荡 15 分钟。
  3. 在 1、3、6、12、24、36 和 48 小时时间点,取 100 µL 溶液,并更换等体积的新鲜缓冲液。
  4. 按照试剂盒说明书,使用 BCA 试剂盒在特定时间点测定上清液中的蛋白质浓度。通过酶标仪定量检测释放的药物,获得相应的吸光度值,并根据标准曲线将测定值转换为实际药物浓度。使用以下公式计算药物释放率:
    药物释放百分比 = (特定时间点释放的药物浓度 / 初始药物浓度)× 100%
  5. 在规定时间间隔,从每个孔中移除等体积的 PBS,并补充等体积的新鲜培养基。

6. 溶血试验

  1. 将制备好的Ca-ALGMS、Cu-ALGMS、Zn-ALGMS和Fe-ALGMS置于PBS中,于37 °C孵育24小时,制备孵育溶液。
  2. 通过眼球取血法采集健康 BALB/c 小鼠的全血,收集至含有柠檬酸钠的抗凝管中。充分涡旋混匀后,于 1509 x g 离心 g 15分钟,以获得红细胞。
  3. 用 PBS 洗涤红细胞 2 至 3 次,并用 PBS 配制 10% 的红细胞悬液。
  4. 不同ALGMS的制备:取实验组各500 µL微球,加入1 mL超纯水(ddH₂O)2O)作为阳性对照组,1 mL PBS 溶液作为阴性对照组,每组分别与 20 µL 血细胞溶液混合。
  5. 在37 °C下孵育样品4小时,然后以1509 x g离心 g,15 分钟。将上清液保留备用,并在溶血后拍摄各组红细胞的照片。
  6. 以阳性对照组溶血率为100%,阴性对照组溶血率为0%,测定各组上清液的吸光度值,并按以下公式计算溶血率:
    溶血率 (%) =(各组上清液的吸光度值 -
    (蒸馏水单独的吸光度值)/(阳性对照组吸光度值-蒸馏水单独的吸光度值)× 100

7. 细胞生物相容性测试

  1. 用 PBS 将不同的 ALGMS 清洗 2 次,置于 5 mL 培养皿中静置 15 分钟,弃去上清液。
  2. 将不同的 ALGMS 分别加入含有 10% FBS 的完全培养基(DMEM)中,每份 0.2 mL,于 37 °C 培养 24 小时,过滤溶液以获得浸提液。
  3. 在 24 孔板中将 NIH3T3 细胞培养至约 70% 的细胞密度,用微球浸提液处理 NIH3T3 细胞,再继续用完全培养基培养 24 小时。
  4. 移除细胞培养基,并用 PBS 洗涤细胞。
  5. 使用 Calcein-AM/PI 检测法评估细胞活力。取 2.5 µL Calcein-AM 溶液(4 mM)和 12.5 µL PI 溶液(2 mM),加入 5 mL 的 1× PBS 中,充分混匀,配制成含 2 µM Calcein-AM 和 5 µM PI 的工作液。
  6. 将工作液以每孔 500 µL 加入已接种细胞的培养板中,于 37 °C 避光孵育 15 分钟,随后在倒置荧光显微镜下观察并拍照。每组设置三个重复。
  7. 根据以下公式计算细胞活力:
    细胞活力(%)= 活细胞数 /(活细胞数 + 死细胞数)

结果

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不同金属离子交联的ALGMS的表征
Ca-ALGMS、Cu-ALGMS、Zn-ALGMS和Fe-ALGMS的光学形貌如图2所示,表现出良好的球形度、光滑的表面、均匀的粒径分布(补充图2)以及优异的单分散性。我们进一步采用扫描电子显微镜(SEM)和能谱分析(EDS)进行微观表征。如图3所示,微球整体呈球形,具有明确的圆整度。Zn-ALGMS的表面分布不均,显得更粗糙,并伴有大量褶皱。我们通过能谱分析测定凝胶中参与交联反应的金属离子含量分布。值得注意的是,通过调节收集距离、凝胶浓度和电场电压等参数,可调控微球的尺寸12。在本方案中,通过调整微流控装置的参数和液体浓度,可根据具体需求轻松获得不同尺寸的微球颗粒。

抗菌性能的评估
我们采用平板法评估了不同微球的抗菌能力,如图4所示。不同微球对E. coliS. aureus均表现出抗菌活性,其中Cu-ALGMS和Zn-ALGMS显示出最强的抗菌性能。这种增强的效果可归因于金属(特别是铜(Cu)和锌(Zn))本身的抗菌活性13。Sukhodub等人证明,Fe3+、Zn2+、Ca2+和Cu2+与壳聚糖具有协同抗菌作用,而不含壳聚糖的样品则未表现出此类活性,从而验证了所形成复合物的协同抗菌效应14。本研究结果与此一致,Cu-ALGMS和Zn-ALGMS在治疗细菌感染性疾病方面优于其他水凝胶微球。

药物释放特性的评估
以牛血清白蛋白(BSA)作为模型药物,评估不同金属基海藻酸盐水凝胶微球的药物释放情况,结果显示其释放曲线存在差异(补充图3)。离子型材料相较于其他材料表现出更优的缓释能力。Fe2+的药物释放速率相对较快,而Ca2+和Zn2+的药物释放速率则相对较慢。这些结果凸显了不同离子对药物释放影响的差异性。我们推测,Fe2+可能以某种方式与药物发生相互作用或结合,从而更易于释放;而Ca2+和Zn2+则可能与药物结合更为紧密,或存在其他限制释放速率的因素。水凝胶微球的这种持续药物释放行为可能与金属离子和海藻酸盐多糖之间的交联强度有关。此外,不同金属对BSA吸附能力的差异也可能导致了药物缓释性能的差异。

生物相容性评估
良好的生物相容性是药物递送载体在临床应用中的先决条件。因此,我们采用微球进行了血液相容性评价 体外 溶血试验。我们使用纯水作为阳性对照,PBS溶液作为阴性对照。实验结果如图所示 补充图4,结果显示悬浮液中的红细胞在接触不同微球后仍保持完整,表明微球引起的溶血程度极低。细胞生物相容性结果表明,微球对细胞活性无明显影响补充图5这些结果表明,微球具有良好的血细胞相容性。

用于光学分析、液滴生成和试管中阳离子检测的微流控装置。
图 1:海藻酸盐水凝胶微球的制备。A)微流控电喷雾技术的安装示意图。 (B)微流控电喷雾过程的实时图像。 (C)制备完成的 Ca2+、Cu2+、Zn2+ 和 Fe3+ 海藻酸盐水凝胶微球。 请点击此处查看该图的放大版本。

Zn、Ca、Cu、Fe的AL-GMS显微图像;颗粒分布;研究分析。
图2:海藻酸盐水凝胶微球的显微图像。 在磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4)中(A)Ca-ALGMS、(B)Cu-ALGMS、(C)Zn-ALGMS 和(D)Fe-ALGMS 的显微图像。请点击此处查看此图的放大版本。

微球的SEM-EDS分析:表面形貌及Zn、Ca、Cu、Fe元素分布图
图3:扫描电子显微镜与能量色散X射线光谱分析。 图像展示了(A)Ca-ALGMS、(B)Cu-ALGMS、(C)Zn-ALGMS 和(D)Fe-ALGMS 的表征结果,其中 i 和 ii 为扫描电镜数据,iii–v 为光谱数据。图像 iii–v 显示了EDS元素分布图,EDS通过选择样品表面某一区域进行扫描,以获取整个区域的元素分布信息。该图谱扫描模式常用于材料的成分分析、相区分析以及粒径分布研究,其中每种元素以不同颜色表示,如图所示。请点击此处查看该图的高清版本。

抗菌实验;大肠杆菌、金黄色葡萄球菌生长;Zn-Ca-Cu-Fe-ALGMS;菌落计数;柱状图分析。
图 4. 微球的抗菌性能。(A) 各组微球的抗菌性能通过细菌涂布法进行检测。(B, C) 各组细菌涂布平板计数结果的定量分析。对照组样品为未添加任何材料时在LB培养基上生长的菌落。其他组别的相对菌落数以对照组的克隆数为100%作为基准进行计算。误差线:标准差,n = 3。 请点击此处查看该图的放大版本。

补充图1:通过一根长橡胶管将玻璃管连接至注射器。 请点击此处下载该文件。

补充图2:颗粒大小。 (A) Zn-ALGMS,(B) Ca-ALGMS,(C) Cu-ALGMS,(D-ALGMS。所有样品均使用5%的摩尔浓度。 请点击此处下载此文件。

补充图3:药物释放。 Ca-ALGMS、Cu-ALGMS、Zn-ALGMS 和 Fe-ALGMS 在 PBS(pH 7.4)中的药物释放曲线。误差线:标准偏差,n = 3 请点击此处下载该文件。

补充图4:Ca-ALGMS、Cu-ALGMS、Zn-ALGMS和Fe-ALGMS的溶血实验。PC(阳性对照):ddH2O;NC(阴性对照):PBS。误差线:标准差,n = 3。请点击此处下载该文件。

补充图5:不同离子交联微球的细胞毒性。 对Zn-ALGMS、Ca-ALGMS、Cu-ALGMS和Fe-ALGMS的生物相容性进行了评估。采用Calcein-AM/PI染色法进行检测,本结果中随机选取了5个视野。使用ImageJ分析红细胞与死细胞的比例,以获得相对细胞活力。1. PC,阳性对照;2. NC,阴性对照;3. Zn-ALGMS;4. Ca-ALGMS;5. Cu-ALGMS;6. Fe-ALGMS;误差线:标准差,n = 3。请点击此处下载该文件。

讨论

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在本实验方案中,我们介绍了一种基于微流控电喷雾技术制备海藻酸盐微球(ALGMS)的方法。该方法操作简便,可制备出大量形态均匀、圆整度高且直径可控的微球。该技术为研究人员提供了便利,有助于推动水凝胶微球的研究与应用。此外,通过与不同金属离子交联,提高了ALGMS的稳定性和生物活性。在抗菌实验中,Cu-ALGMS和Zn-ALGMS均表现出显著的抑菌效果。

水凝胶微球是一类具有优异可塑性的柔性微结构,通过特定的材料选择和结构设计可实现有效的药物递送。海藻酸盐是一种在温和条件下即可发生凝胶化的天然多糖,具有良好的生物相容性、可生物降解性且无毒。微米级海藻酸钠微球已广泛应用于生物化学与生物医学领域,包括药物研究、药物递送及组织工程。在药物递送应用中,海藻酸钠微球的一个关键优势在于其能够实现药物的持续释放,从而在较长时间内维持活性药物成分的高浓度14。我们的持续释药实验表明,具有不同离子交联方式的海藻酸钠微球(ALGMS)均具备持续释药能力,可用于药物递送应用。

水凝胶微球的常见制备方法包括批量乳化法、机械粉碎法、光刻法、微流控乳化法和电喷法8,15。批量乳化法和机械破碎法的优点在于制备方法简单且产出效率高,但难以控制单个水凝胶微球的形态。光刻法通过将光聚焦于掩模版或模具上引发交联固化,从而形成水凝胶微球,但该方法的生产效率易受掩模版、光源和模具的影响。此外,微流控乳化法能够更好地控制水凝胶微球的成型过程,并可制备出具有特定形状的微球,但其生产效率较低16。与上述方法相比,微流控电喷法可制备出粒径均匀、形态规则且粒径可调的水凝胶微球17。本方案中的关键步骤是微球的制备,微球的尺寸和形态可能因玻璃管的平整度、电压值以及流速的不同而发生变化18。然而,采用微流控电喷技术制备微球仍存在一些局限性,例如微通道易堵塞、产量有限、材料兼容性受限、工艺放大困难,以及过程控制与监测难度较大,这在一定程度上限制了其广泛应用19

综上所述,微流控电喷雾技术是一种成熟的微球制备方法,具有一 步合成的优势。通过优化流道尺寸参数并控制材料浓度和流速,可轻松获得各种形貌和尺寸的微球。值得注意的是,该过程仅涉及水相,无需额外添加表面活性剂,因此环境友好且操作简便,避免了复杂的洗涤步骤。该方法为利用类似于海藻酸盐凝胶化过程的水凝胶材料制备微球提供了一种策略。

披露

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无任何利益冲突需要披露。

致谢

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本工作由浙江树人大学科研项目(2023R053 和 2023KJ237)资助。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
120目筛网Solarbio,中国YA0946
酒精灯Solarbio,中国YA2320
BALB/c小鼠吴康生物科技,中国
双辛可宁酸检测试剂迈伦生物,中国MA0082
牛血清白蛋白乐邦,中国9048-46-8
CaCl2 粉末阿拉丁,中国10043-52-4
Calcein-AM/PI百奥锐,中国BL130A
离心管康宁,美国430290
CuSO4 粉末金鑫越化工,中国7758-99-8
DMEM吉百利,中国C11995500BT
FeCl3 粉末阿拉丁,中国7705-08-0
胎牛血清哈卡塔,中国HN-FBS
玻璃试管赛多利斯,德国CC0028
光学显微镜Evidentscientific,日本BX53(LED)
微流控注射泵龙泵,英国LSP01-3A
NIH3T3海吉科,中国TCM-C752
培养皿赛默飞,美国150464
磷酸盐缓冲液赛默飞,美国3002
扫描电子显微镜赛默飞,美国Axia ChemiSEM
海藻酸钠粉末 北化百灵,中国Y13095
ZnSO4粉末金鑫越化工,中国7733-02-0

参考文献

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