方法文章

酵母全细胞中线粒体呼吸的定量分析

1.8K 次观看

⸱

DOI：

10.3791/67186

⸱

2024年11月8日

 ,  ,  , 
1School of Chemistry, Universidad Autónoma de Querétaro, 2Department of Biochemical Engineering, Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico de Morelia, 3Department of Biochemical Engineering, Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico Superior de Ciudad Hidalgo

本文内容

摘要

酵母完整细胞中的线粒体呼吸是细胞生物能量学的一个重要指标。本文介绍了一种可适用于多种酵母物种的表型定量实验方案。

摘要

代谢主要由细胞能量供应状况和环境条件协调调控。了解细胞如何适应不同营养和环境条件下的能量代谢的检测方法，可为阐明分子机制提供重要信息。氧化磷酸化是大多数细胞中ATP的主要来源，而线粒体呼吸活性是氧化磷酸化的一个关键组分，可维持线粒体膜电位以进行ATP合成。线粒体呼吸通常在分离的线粒体中进行研究，但此类体系缺乏完整的细胞环境。本文介绍一种在酵母完整细胞中定量线粒体呼吸的方法。该方法适用于任何酵母物种，尽管目前主要应用于Saccharomyces cerevisiae细胞。首先，在特定条件下培养酵母。然后将细胞洗涤并以1:1（w/v）的比例重悬于去离子水中。接着将细胞置于氧电极室中，在持续搅拌条件下，使用克拉克电极定量氧气消耗量。根据对电子传递链或ATP合成的影响，依次向反应室中加入若干特定分子。首先加入AT酶抑制剂寡霉素，以测定与ATP合成相偶联的呼吸作用。随后使用解偶联剂，以测定最大呼吸能力。最后加入电子传递链抑制剂混合物，以排除与线粒体呼吸无关的氧气消耗。通过线性回归分析数据，获得代表氧气消耗速率的斜率。该方法的优势在于特异性针对酵母线粒体呼吸，并保留了细胞环境。需要特别指出的是，用于线粒体呼吸定量的抑制剂在不同酵母物种之间可能存在差异。

引言

线粒体在细胞生物能量学中起着基础性作用，因为它是大多数细胞中三磷酸腺苷（ATP）的主要来源，多种代谢通路在此汇聚并依赖于线粒体通路的活性1。氧化磷酸化是合成ATP所必需的过程，该过程通过电子传递链传递电子以还原氧气，并利用电子流动产生的线粒体膜电位驱动F1F0-ATP酶活性来合成ATP2。因此，线粒体呼吸是氧化磷酸化的一部分3。

线粒体呼吸链由四个复合物组成，而在某些情况下（例如缺乏复合物I的酵母，如Saccharomyces cerevisiae），则由三个复合物和三种脱氢酶蛋白组成4。呼吸复合物定位于线粒体内膜；一些酵母具有经典的电子传递链，包括复合物I（NADH脱氢酶）或三种NADH脱氢酶、泛醌（Co Q）、复合物II（琥珀酸-泛醌氧化还原酶）、复合物III（泛醌-细胞色素氧化还原酶）、细胞色素c（Cyt c）以及复合物IV（细胞色素c氧化酶）5,6。电子在这些复合物之间的传递促使质子从线粒体基质泵至膜间隙，从而形成线粒体膜电位7。位于膜间隙的质子随后通过F1F0-ATP酶逆向泵回线粒体基质，每转运四个质子可合成一个ATP分子8。

线粒体呼吸作用的测量可为线粒体完整性、细胞生物能量学及线粒体呼吸能力提供有价值的见解9。线粒体呼吸功能可通过多种技术在体外（in vitro）或原位（in situ）进行分析。然而，使用完整细胞进行线粒体呼吸分析具有一系列优势，因为它涵盖了整个细胞的代谢过程，且在使用完整细胞时能够同时考虑细胞与其环境的相互作用以及细胞内代谢10。此外，使用完整细胞可方便地评估多种实验条件，并检测在分离的线粒体中难以观察到的微小变化10,11。在完整细胞中定量线粒体呼吸的另一优势在于，线粒体增殖和定位的影响得以保留12。

关于完整哺乳动物细胞中线粒体呼吸作用的研究已有详尽描述12，但其他真核生物（如酵母）的相关研究则相对较少。本文提出一种基于哺乳动物实验方案改进而来的、用于定量检测酵母线粒体呼吸作用的技术。该技术借鉴了哺乳动物线粒体呼吸定量研究中的相关概念。例如，本技术同样分为多个阶段，类似于哺乳动物实验方案：1）基础呼吸（底物依赖性呼吸），2）ATP偶联呼吸（通过抑制ATP合酶实现），3）最大呼吸能力（使用解偶联剂，使质子能够穿过线粒体内膜），4）线粒体呼吸抑制（利用呼吸链抑制剂混合物，排除非线粒体呼吸来源的耗氧量）11,13。因此，本文旨在提供一种用于定量检测酵母线粒体呼吸作用的实验方案。

方案

1. 培养基与接种物制备

  1. 通过在95 mL蒸馏水中加入1 g酵母提取物、2 g酪蛋白胨和2 g葡萄糖，配制100 mL酵母提取物-胨-葡萄糖培养基（YPD）。将3 mL培养基分装至10 mL玻璃试管中，在121 °C、1.5 psi条件下灭菌15分钟。
    注意：该培养基可在4 - 8 °C保存最多1个月。
  2. 用250 µL保存于-20 °C的甘油菌种接种一支含有3 mL YPD培养基的10 mL玻璃试管。在30 °C、200 rpm持续振荡条件下过夜培养。
    注意：某些酵母菌种的培养温度可能有所不同（例如，Kluyveromyces marxianus 的最适生长温度为37 °C）。
  3. 将无菌2% YPD琼脂培养基（将10 g酵母提取物、20 g酪蛋白胨、20 g葡萄糖和20 g细菌学琼脂加入950 mL蒸馏水中）倒入一个培养皿（60 × 15 mm2）中，并用无菌接种环将来自10 mL玻璃试管中培养的酵母菌液在培养皿表面划线接种。在30 °C培养至出现单菌落。
  4. 从培养皿中挑取两到三个酵母单菌落，接种于一支含有3 mL YPD培养基（含2%葡萄糖）的无菌10 mL玻璃试管中，制备预接种培养物。在30 °C、持续振荡条件下过夜培养。

2. 生长条件与实验设计

  1. 在500 mL锥形瓶中加入100 mL无菌合成完全培养基（SC培养基；含0.18 g不含氨基酸的酵母氮源基础培养基、0.5 g硫酸铵、0.2 g磷酸氢二钾、1 g酵母合成缺陷补充剂，以及根据实验设计添加的葡萄糖，溶于98.02 mL蒸馏水中），并以初始OD值接种酵母菌液600 约 0.1，即过夜预接种物约 3 mL（OD600 ~ 3). 设置待测的环境条件或添加用于线粒体呼吸检测的化学处理因素（例如，加入 100 µM 白藜芦醇）。为化学处理因素设置单独的溶剂对照组。每组至少进行三个生物学重复实验。
    注意：建议使用最小培养基以消除检测中的营养干扰，此处推荐的最小培养基用于 S. cerevisiae 并且可能因其他酵母物种而异。最后，培养基中添加的葡萄糖浓度至关重要，需避免引起葡萄糖阻遏或克雷布特效应（Crabtree effect），这些效应会抑制线粒体呼吸；低于0.5%（w/v）的葡萄糖浓度可获得良好的线粒体呼吸响应，同时伴随较高的生长速率 S. cerevisiae在Crabtree阴性酵母中，高浓度葡萄糖不影响线粒体呼吸（例如， K. marxianus).
  2. 称取一个空的50 mL锥形管的重量，并用其收集处于对数中期（OD600 ~ 0.5）通过4000 × g离心 g 5 分钟。
    注意：建议在对数中期进行线粒体呼吸测定，因为此生长期的能量代谢最为活跃。
  3. 弃去上清液，用25 mL去离子水重悬沉淀，洗涤3次。称量含有沉淀细胞的锥形管重量（湿重），减去锥形管自身重量，得到细胞湿重。
  4. 将沉淀重悬于2 mL去离子水中。
  5. 通过将湿重除以2来计算细胞浓度，得到细胞的毫克数/毫升（mg cells/mL）。该数值对于确定检测中所需加入的细胞体积（以达到50 mg细胞量）至关重要。

3. 耗氧量测定（极谱法）

  1. 使用连接至 YSI5300A 监测仪和计算机以采集数据的克拉克型氧电极。
    1. 在极谱仪样品室中加入5 mL用三乙醇胺调节至pH 6的吗啉乙磺酸缓冲液（MES-TEA缓冲液；10 mM）和50 mg细胞（湿重）。轻轻放入电极，注意避免产生气泡。
    2. 打开 YSI5300A 监测仪、用于数据采集的计算机以及搅拌室。通过选择设置 YSI5300A 监测仪 通道1设置旋钮 在空气中。将通道1调节至 100% 使用通道1的校准旋钮，将信号在100%条件下稳定5分钟。
    3. 在计算机中开始记录数据，并使用秒表测量时间。
      注意：YSI5300A 监测仪没有配备数据采集计算机或程序；用户可自行 externally 实现。
    4. 使用氧电极室中的侧通道依次加入可氧化底物、寡霉素、解偶联剂以及呼吸链抑制剂混合物。
  2. 使用色谱注射器将可氧化底物（葡萄糖、甘油、L-乳酸或根据实验设计选择的其他碳源）加入至终浓度为 10 mM。始终保持 chamber 处于封闭状态并持续搅拌。记录 2–3 分钟内的氧气百分比消耗量，以确定基础呼吸速率。
    注意：葡萄糖、甘油和L-乳酸用于分析呼吸链不同位点的电子传递链：葡萄糖代谢可还原NAD+ 生成NADH，用于分析整个呼吸链；甘油将电子传递给泛醌，用于评估从泛醌开始的呼吸链；最后，L-乳酸将其电子传递给细胞色素 c 并用于确定细胞色素的作用效果 c14. 这些底物可能因酵母菌种的酶活性能力不同而有所差异。
  3. 使用色谱注射器向测氧室中加入寡霉素，使其终浓度为 0.01 mM，以评估ATP偶联呼吸，并记录2-3分钟内的氧气消耗百分比。
  4. 向氧电极室中加入解偶联剂3-氯苯腙羰基氰化物（CCCP），使用色谱注射器使其终浓度为0.015 mM，以测定最大呼吸能力，并记录2–3分钟内的氧气消耗百分比。
  5. 使用色谱注射器加入电子传递链抑制剂：先加入2-噻吩甲酰三氟丙酮（TTFA），终浓度为1 mM，测量2-3分钟；然后加入抗霉素A（AA），终浓度为1 mg/mL，再测量2-3分钟。
    注意：不同酵母物种的电子传递链抑制剂可能有所不同；在该步骤中应考虑这一因素。
  6. 分别筛选每种碳源（即葡萄糖、甘油或L-乳酸）。对每种碳源重复步骤3.3至3.5。每次使用后，用70%乙醇清洗腔室3次，再用去离子水清洗3次。

4. 数据处理

  1. 利用耗氧量曲线（绘制空气百分比随时间变化的曲线）计算可氧化底物（基础呼吸）、寡霉素（ATP偶联呼吸）、CCCP（最大呼吸）、抗霉素A（AA）和TTFA（非线粒体呼吸；图1）的斜率。使用以下所述的线性回归方法，分别计算每种添加化合物的斜率。
    1. 在统计分析软件中创建一个新的项目文件。在“创建”部分选择XY。在“数据表”部分选择将数据输入或导入新表格。
    2. 在“选项”部分的X子部分中选择数值。在Y子部分中点击在并列的子列中输入3个重复值。
      注：表格格式包含一个X列和多个Y列，每个Y列包含3个子列，命名为A: Y1和A: Y2。
    3. 在X列中输入时间数据（例如，0、2、4、6、8秒或0、1、2、3分钟）。在Y列中填写空气百分比数值。
    4. 进行线性回归拟合。点击菜单栏中的分析。在“分析”选项中，选择“XY分析”下的简单线性回归，然后点击确定。
    5. 从屏幕左侧“数据表”中的“结果”部分获取斜率值。
  2. 将斜率值记录在数据表中，并从可氧化底物、寡霉素和CCCP所得的斜率中减去呼吸抑制剂混合物（AA和TTFA）所得的斜率，以排除非线粒体呼吸来源的耗氧量。
  3. 将所得数值乘以237 µM的O2。该数值代表在25 °C条件下，空气（20.9% O2）平衡的缓冲线粒体介质中O2的溶解度；该值会随温度、海拔和所用缓冲液的不同而变化。
  4. 转换为每分钟单位；所得数值为单位时间内的O2 µM值，根据时间绘制方式的不同，最终获得O2 µM/min。
  5. 除以50，即所用细胞的毫克数；细胞用量可根据实验设计而变化。最终，耗氧量表示为O2 µM/mg细胞 × min。

结果

该线粒体呼吸技术可用于除...之外的其他酵母菌种 S. cerevisiae，例如 Scheffersomyces stipitis15 和 K. marxianus16然而，为了具有代表性，我们仅展示来自 S. cerevisiae众所周知 S. cerevisiae 在低葡萄糖浓度（低于 0.8 mM）下表现出主要的呼吸代谢17,18因此，为了证实呼吸表型 S. cerevisiae 它 在两种葡萄糖浓度下培养，以刺激（0.5% 葡萄糖）或限制（5% 葡萄糖）线粒体呼吸18,19. 与预期一致，基础呼吸（可氧化底物）、ATP偶联呼吸（寡霉素）和最大呼吸能力（CCCP）的检测结果验证了该特征性能量代谢的特性 S. cerevisiae (图2). 我们观察到，在含0.5%葡萄糖培养基中培养的细胞，其氧消耗值（基础呼吸、ATP偶联呼吸及最大呼吸能力）高于在含5%葡萄糖培养基中培养的细胞所获得的数值（图2).

此外，实验使用了三种底物：葡萄糖、甘油和L-乳酸。采用多种底物的目的是评估线粒体呼吸链的不同部分。在这些条件下，由于未添加任何干扰呼吸链的处理，线粒体呼吸未表现出显著的底物依赖性变化（图2）。

我们采用槲皮素来评估该技术的能力，这是一种对线粒体呼吸具有负面影响的化合物20。实验结果表明，在添加了0.5%葡萄糖的培养基中培养的细胞，其线粒体呼吸显著受到槲皮素的抑制（图3）。另一方面，在添加了5%葡萄糖的培养基中培养的细胞则未表现出槲皮素引起的显著抑制作用（图4）。

figure-results-1
图1： 代表性氧气消耗曲线。在SC培养基（0.5%葡萄糖）中培养的S. cerevisiae细胞中获得的氧气消耗曲线。不同颜色代表在添加底物、解偶联剂和抑制剂时获得的不同斜率。绿色：所用底物为葡萄糖，对应基础呼吸的斜率。蓝色：寡霉素（ATP合酶抑制剂），用于测定ATP偶联呼吸的斜率。黄色：CCCP（解偶联剂），用于评估最大呼吸的斜率。灰色和红色：分别为复合体II和复合体III的抑制剂；用于测定非线粒体依赖性氧气消耗的斜率。缩写：CCCP = 羰基氰化-3-氯苯腙；TTFA = 2-噻吩甲酰三氟丙酮；AA = 抗霉素A。 请点击此处查看此图的放大版本。

figure-results-2
图2: 氧气消耗测定实验 在含0.5%和5%葡萄糖培养的S. cerevisiae细胞中 葡萄糖 通过测量基础呼吸、最大呼吸能力和ATP偶联呼吸状态下的氧气消耗量来评估线粒体呼吸功能 S. cerevisiae 在添加了0.5%和5%葡萄糖的SC培养基中培养的细胞。使用三种底物以评估其对电子传递链的特异性影响：葡萄糖（NADH脱氢酶）、甘油（泛醌池）和L-乳酸（细胞色素c）。A) 以葡萄糖、甘油和L-乳酸为底物，在5%和0.5%葡萄糖条件下的基础呼吸；B) 在5%和0.5%葡萄糖条件下，以葡萄糖、甘油和L-乳酸为底物测定最大呼吸速率；C) 分别以葡萄糖、甘油和L-乳酸为底物，在5%和0.5%葡萄糖条件下测定ATP偶联呼吸。结果以均值表示 ± 三次独立实验的标准偏差，每次实验设两个技术重复。采用单因素方差分析（One-way ANOVA），随后进行Tukey检验（p ≤ 0.05；不同字母表示差异显著，相同字母表示无显著差异）进行统计分析。 请点击此处以查看此图的放大版本。

figure-results-3
图3: 槲皮素在低葡萄糖浓度下限制线粒体呼吸 S. cerevisiae 培养的细胞 在基础呼吸、最大呼吸能力和ATP偶联呼吸条件下进行耗氧量测定 S. cerevisiae 在含0.5%葡萄糖的SC培养基中培养的细胞，补充槲皮素100 μM）。采用乙醇溶解槲皮素溶液。结果以均值表示 ± 三次独立实验的均值±标准差，每次实验设两个技术重复。采用配对 t 检验进行统计分析（*，** p ≤ 0.05）。 请点击此处以查看此图的放大版本。

figure-results-4
图4：槲皮素不影响线粒体呼吸 在高葡萄糖浓度中 S. cerevisiae. 在基础呼吸、最大呼吸能力和ATP偶联呼吸条件下测量耗氧量 S. cerevisiae 在含5%葡萄糖的SC培养基中培养的细胞，补充槲皮素100 µM）。乙醇用于溶解槲皮素溶液。结果表示为均值 ± 三次独立实验的均值±标准差，每次实验设两个技术重复。采用配对样本t检验进行统计分析（p ≤ 0.05；ns：无显著差异）。 请点击此处以查看该图的放大版本。

讨论

线粒体呼吸磷酸化在多个依赖线粒体膜电位并通过氧化磷酸化维持ATP水平的通路中发挥着基础性作用。了解环境和营养条件如何影响酵母的线粒体呼吸，可作为阐明其分子机制的工具。

为了从该方法获得可靠的结果，必须考虑以下关键步骤。在呼吸生长条件下，振荡速度必须高于>200 rpm，这是获得足够生物量以检测线粒体呼吸的关键；低于200 rpm的振荡条件会导致生长不良和生物量积累不足，延长达到对数中期生长阶段所需时间，并可能影响耗氧速率，因为细胞处于较低氧含量的环境中生存。培养基中的葡萄糖浓度应根据酵母表型（Crabtree阳性或阴性）设定；对于Crabtree阳性酵母尤其关键，因为高浓度葡萄糖会抑制线粒体呼吸，可能导致数据分析出现偏差。例如，在S. cerevisiae中，高浓度葡萄糖会引起分解代谢阻遏，从而抑制线粒体呼吸21,22。基于这一证据，与在低葡萄糖浓度（0.5%）下培养的酵母细胞相比，在高葡萄糖浓度（5%）下培养的细胞其基础呼吸、ATP偶联呼吸和最大呼吸值均较低。应根据酵母对抑制剂的敏感性谨慎选择呼吸链抑制剂；这是排除线粒体呼吸以外其他细胞耗氧来源的关键。

底物、线粒体解偶联剂和抑制剂可用于测定完整细胞中线粒体呼吸的不同参数。然而，这些试剂的使用存在一些局限性。例如，必须考虑线粒体抑制剂和解偶联剂在完整细胞中可能作用于线粒体以外的非特异性靶点，以避免对氧消耗数据的解读产生偏差。此外，使用替代性碳源来筛选呼吸链中作用位点时，应进行更详细的验证，因为甘油或L-乳酸代谢的副产物可能被氧化，从而还原NAD+或FAD+，分别通过NADH脱氢酶和复合物II向呼吸链提供电子并激活其活性。最后，S. cerevisiae及其他酵母含有PDR转运蛋白（如Yor1p，即酵母寡霉素抗性蛋白），这可能促使寡霉素从细胞中外排23。因此，需要利用PDR缺陷型细胞（例如AD1-8菌株，其缺失主要的PDR转运蛋白及PDR1/PDR3转录因子）进行进一步实验，以验证寡霉素在S. cerevisiae中用于线粒体呼吸定量的可靠性。

利用完整细胞进行线粒体呼吸作用的定量分析可保持细胞原有的生理环境，从而更有效地研究营养物质或环境因素对酵母生物能量学的影响。此外，与分离线粒体的方法相比，使用完整酵母细胞进行线粒体呼吸定量在经济上更为节约，且在技术操作上更为简便。同时，与分离线粒体的实验类似，通过使用不同的碳源可以揭示某些分子在呼吸链中的作用位点。作为概念验证，本技术证实了白藜芦醇的补充作用会影响NADH脱氢酶水平上的呼吸链，因为白藜芦醇对基础呼吸的抑制作用仅在葡萄糖作为碳源时出现，而在甘油或L-乳酸作为碳源时则未观察到24。体外研究使用溶解的复合物I表明，白藜芦醇与NAD+竞争，从而影响复合物I的活性25。这一结果与本研究所展示的技术在完整细胞中观察到的表型一致。此外，该技术也可可靠地用于探究化学物质对酵母线粒体呼吸的负面影响。例如，槲皮素是一种近几十年来被广泛研究的多酚类化合物。已有研究发现，其主要证据之一是能够在完整细胞中限制线粒体呼吸，这一现象已通过呼吸链复合物活性得到验证26,27。重要的是，多项研究已在不同的模型系统中报道了槲皮素对线粒体呼吸的抑制作用28。

详细描述酵母代谢（包括生物能量学）非常重要，因为这些微生物可能作为动物（包括人类）病原体，同时也被用作细胞工厂或应用于生物技术领域。

披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由墨西哥国立理工学院（资助号：20026.24-PD）授予 LAMP。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
2-噻吩甲酰三氟丙酮（TTFA）MerckT27006复合体 II 抑制剂
3-氯苯腙羰基氰（CCCP）MerckC2759线粒体呼吸解偶联剂  
无水乙醇Merck107017用于溶解槲皮素 
琼脂MerckA1296YPD 琼脂制备
硫酸铵颗粒（(NH4)2SO4）J.T. Baker0792-05SC 肉汤制备
抗霉素 A（AA）MerckA8674复合体 III 抑制剂
aYSI5300A--------监测仪 
离心机HermleZ 206 A用于细胞离心
克拉克型氧--------电极 
计算机--------用于数据采集 
磷酸氢二钾（K2HPO4）J.T. Baker3252-05SC 肉汤制备
葡萄糖MerckG7021YPD 肉汤制备
甘油MerckG5516底物培养基补充物 
乳酸MerckL1250底物培养基补充物 
来自Streptomyces diastatochromogenes的寡霉素MerckO4876抑制线粒体ATP合酶
轨道摇床Thermo FisherSHKE6000接种物孵育用玻璃管和烧瓶 
酪蛋白蛋白胨，酶解产物Merck82303YPD 肉汤制备
槲皮素 Merck337951用于降低线粒体呼吸
尿嘧啶 MerckU0750SC 肉汤制备
酵母提取物MerckY1625YPD 肉汤制备
不含氨基酸和硫酸铵的酵母氮源基础MerckY1251SC 肉汤制备
不含尿嘧啶的酵母合成缺陷型培养基补充剂MerckY1501SC 肉汤制备

参考文献

  1. Jang, D. H., Seeger, S. C., Grady, M. E., Shofer, F. S., Eckmann, D. M. Mitochondrial dynamics and respiration within cells with increased open pore cytoskeletal meshes. Biol Open. 6 (12), 1831-1839 (2017).
  2. Duvezin-Caubet, S., Caron, M., Giraud, M. F., Velours, J., di Rago, J. P. The two rotor components of yeast mitochondrial ATP synthase are mechanically coupled by subunit delta. Proc Natl Acad Sci. 100 (23), 13235-13240 (2003).
  3. Vakifahmetoglu-Norberg, H., Ouchida, A. T., Norberg, E. The role of mitochondria in metabolism and cell death. Biochem Biophys Res Comm. 482 (3), 426-431 (2017).
  4. Matus-Ortega, M. G., et al. New complexes containing the internal alternative NADH dehydrogenase (Ndi1) in mitochondria of Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 32 (10), 629-641 (2015).
  5. Avéret, N., Jobin, M. L., Devin, A., Rigoulet, M. Proton pumping complex I increases growth yield in Candida utilis. Biochim Biophys. 1847 (10), 1320-1326 (2015).
  6. Schägger, H. Respiratory chain supercomplexes. IUBMB Life. 52 (3-5), 119-128 (2001).
  7. Lasserre, J. P., et al. Yeast as a system for modeling mitochondrial disease mechanisms and discovering therapies. Dis Model Mech. 8 (6), 509-526 (2015).
  8. Turina, P., Samoray, D., Gräber, P. H+/ATP ratio of proton transport-coupled ATP synthesis and hydrolysis catalysed by CF0F1-liposomes. EMBO J. 22 (3), 418-426 (2003).
  9. Zhang, J., et al. Measuring energy metabolism in cultured cells, including human pluripotent stem cells and differentiated cells. Nat Prot. 7 (6), 1068-1085 (2012).
  10. Kuznetsov, A. V., Javadov, S., Margreiter, R., Hagenbuchner, J., Ausserlechner, M. J. Analysis of mitochondrial function, structure, and intracellular organization in situ in cardiomyocytes and skeletal muscles. Int J Mol Sci. 23 (4), 2252(2022).
  11. Divakaruni, A. S., Jastroch, M. A practical guide for the analysis, standardization and interpretation of oxygen consumption measurements. Nat Metab. 4 (8), 978-994 (2022).
  12. Brand, M. D., Nicholls, D. G. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochem J. 435 (2), 297-312 (2011).
  13. Mookerjee, S. A., Gerencser, A. A., Nicholls, D. G., Brand, M. D. Quantifying intracellular rates of glycolytic and oxidative ATP production and consumption using extracellular flux measurements. J Biol Chem. 292 (17), 7189-7207 (2017).
  14. Rosenfeld, E., Beauvoit, B. Role of the non-respiratory pathways in the utilization of molecular oxygen by Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 20 (13), 1115-1144 (2003).
  15. Granados-Arvizu, J. A., Canizal-García, M., Madrigal-Pérez, L. A., González-Hernández, J. C., Regalado-González, C. Inhibition of alternative respiration system of Scheffersomyces stipitis and effect on glucose or xylose fermentation. FEMS Yeast Res. 21 (2), foab005(2021).
  16. Carrillo-Garmendia, A., et al. Snf1p/Hxk2p/Mig1p pathway regulates hexose transporters transcript levels, affecting the exponential growth and mitochondrial respiration of Saccharomyces cerevisiae. Fungal Genet Biol. 161, 103701(2022).
  17. Maslanka, R., Zadrag-Tecza, R. Reproductive potential of yeast cells depends on overall action of interconnected changes in central carbon metabolism, cellular biosynthetic capacity, and proteostasis. Int J Mol Sci. 21 (19), 7313(2020).
  18. Olivares-Marin, I. K., et al. Interactions between carbon and nitrogen sources depend on RIM15 and determine fermentative or respiratory growth in Saccharomyces cerevisiae. Appl Microbiol Biotechnol. 102 (10), 4535-4548 (2018).
  19. Malecki, M., Kamrad, S., Ralser, M., Bähler, J. Mitochondrial respiration is required to provide amino acids during fermentative proliferation of fission yeast. EMBO Rep. 21 (11), e50845(2020).
  20. Carrillo-Garmendia, A., et al. Cytotoxicity of quercetin is related to mitochondrial respiration impairment in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 39 (11-12), 617-628 (2022).
  21. Hagman, A., Sall, T., Piskur, J. Analysis of the yeast short-term Crabtree effect and its origin. FEBS J. 281 (21), 4805-4814 (2014).
  22. Gancedo, J. M. Yeast carbon catabolite repression. Microbiol Mol Biol Rev. 62 (2), 334-361 (1998).
  23. Katzmann, D. J., et al. Expression of an ATP-binding cassette transporter-encoding gene (YOR1) is required for oligomycin resistance in Saccharomyces cerevisiae. Mol Cell Biol. 15 (12), 6875-6883 (1995).
  24. Madrigal-Perez, L. A., Nava, G. M., Gonzalez-Hernandez, J. C., Ramos-Gomez, M. Resveratrol increases glycolytic flux in Saccharomyces cerevisiae via a SNF1-dependet mechanism. J Bioenerr Biomemb. 47 (4), 331-336 (2015).
  25. Gueguen, N., et al. Resveratrol directly binds to mitochondrial complex I and increases oxidative stress in brain mitochondria of aged mice. PloS One. 10 (12), e0144290(2015).
  26. Lagoa, R., Graziani, I., Lopez-Sanchez, C., Garcia-Martinez, V., Gutierrez-Merino, C. Complex I and cytochrome c are molecular targets of flavonoids that inhibit hydrogen peroxide production by mitochondria. Biochim Biophys Acta. 1807 (12), 1562-1572 (2011).
  27. de Oliveira, M. R., et al. Quercetin and the mitochondria: A mechanistic view. Biotechnol Adv. 34 (5), 532-549 (2016).
  28. Carrillo-Garmendia, A., Madrigal-Perez, L. A., Regalado-Gonzalez, C. The multifaceted role of quercetin derived from its mitochondrial mechanism. Mol Cell Biochem. , (2023).

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

ATP

相关文章