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方法文章

一种用于尿道下移植的新型羊模型外科手术技术

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DOI:

10.3791/67282

2025年6月20日

本文内容

摘要

本文介绍了一种用于测试尿道下移植材料的新动物模型。在该模型中,通过母羊的阴道切口植入网状带,并对动物进行为期三个月的观察。该模型至关重要,因为它为移植物的实验研究奠定了基础。

摘要

女性尿道下聚丙烯网带最初进入临床实践时,尚未经过适当的动物模型测试,即用于治疗压力性尿失禁。本研究旨在建立并评估一种适用于评估尿道下网带移植物的动物模型。考虑到母羊与女性在解剖结构上的相似性,同时承认姿势上不可避免的差异,并参考既往研究,本报告逐步描述了一种模拟女性压力性尿失禁治疗中支撑材料植入手术的动物模型操作过程。共对7只母羊进行了手术,平均体重为27.7 ± 5.1 kg。动物取截石位,于阴道前壁做一纵行切口。在5只动物中,使用穿引器将聚氨酯植入物置于尿道下方,并用可吸收缝线固定。关闭切口后,放置阴道碘伏纱条,24小时后取出。另外2只动物采用经阴道植入聚丙烯网片,手术步骤相似,但未使用固定缝线。术后所有动物均可自由排尿,且排便正常。在为期三个月的随访期间,未观察到任何动物出现阴道侵蚀或移植物感染的迹象。该大型动物模型能够准确再现女性临床手术技术,因而为评估用于治疗压力性尿失禁的新材料提供了一个有价值的实验平台。

引言

一项美国的流行病学研究显示,压力性尿失禁(SUI)影响了26%的女性;此外,另有16%的女性同时患有压力性和急迫性尿失禁1。无张力阴道吊带术作为一种手术治疗方式,因其较传统金标准术式——阴道悬吊术具有相当的成功率且术后恢复更快,且并发症更少,逐渐发展成为SUI的治疗选择2,3。然而,尿道下聚丙烯(PP)网片吊带在引入临床前并未经过合适的动物模型测试,从而导致了不良反应的发生4,5。近年来,已有大量关于聚丙烯材料使用后出现严重并发症的报道,这些并发症无法归因于手术技术问题,可能与机体对材料本身的组织反应有关,包括网片经阴道侵蚀、慢性疼痛和感染等6。最常见的手术相关并发症包括膀胱穿孔、尿潴留和出血6,7

已有近100种产品被开发用于泌尿生殖系统外科植入应用8。关于使用网片植入治疗盆腔器官脱垂,已发现存在若干主要问题6,7。绵羊自发性盆底脱垂的发生率较高,基于这一特点,已有研究提出并验证了用于女性盆腔器官脱垂的绵羊模型,该模型可表现出移植物侵蚀现象9,10,11。近期的基础科学研究进一步支持了以下观点:聚丙烯材料引起的组织反应可能在该材料相关不良并发症的发生中起重要作用12。已有通用动物研究探讨了小动物腹壁在植入后对聚丙烯(PP)网片的组织反应13,14。由于这些模型无法再现人类手术中网片植入的解剖环境,因此评估了一种具有与人类手术相似解剖结构的绵羊模型。该模型已被证实可用于评估盆腔器官脱垂手术中的新型植入材料,通过将移植物置于直肠与阴道之间进行研究9,10,11

最近,有同期研究复制了人类压力性尿失禁(SUI)手术中使用的经阴道耻骨后技术,报道了一种自上而下的吊带置入方法,并在三只母羊中进行了应用15。本研究团队近期的一篇报告强调了该动物模型的多功能性,证实其既适用于使用TVT装置进行逆行(自下而上)置入,也适用于采用自上而下方法置入聚丙烯材料以及一种新型聚氨酯材料16。本视频增强型文章详细描述了该绵羊模型的制备过程及其在使用TVT装置自下而上置入聚丙烯材料和新型材料中的应用。TVT置入技术同此前报道一致3。聚氨酯材料被安装于穿刺针导入器上,从阴道前壁切口向上经由耻骨后间隙穿出,模拟TVT自下而上的置入路径。

为验证该模型,评估了在尿道与阴道之间建立手术平面的可行性,并特别注意避免对任一结构造成损伤。同时评估了与穿针引导带通过相关的潜在盆腔和腹腔内并发症。此外,本研究还考察了一种新型静电纺丝聚氨酯移植物,该移植物此前未用于尿道下植入,术后三个月将其组织反应和生物相容性与传统的聚丙烯网片进行比较。

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方案

该医院的机构审查委员会(IRB)和动物护理与使用委员会已审核并批准了本方案(伦理批准编号:2230017)。该批准遵循国际公认的仁道实验技术原则。所有操作及术后护理均在经实验动物护理评估与认证协会(AAALAC)认证的设施中进行。

确保由合格的兽医始终进行医疗管理和麻醉操作。

1. 动物准备与麻醉

  1. 在术前室,为绵羊肌肉注射一次硫酸阿托品,剂量为 0.02–0.05 mg/kg,用于麻醉诱导。
  2. 皮下注射镇痛药卡洛芬,剂量为 2–5 mg/kg。
  3. 使用毛发修剪器剃除下腹部及大腿内侧皮肤的毛发。
  4. 根据需要静脉注射异丙酚 2–4 mg/kg,并肌肉注射一次氯胺酮 10–12 mg/kg,以诱导麻醉。
  5. 在直接视野下使用喉镜插入直径为 7 mm 的气管插管,并将插管连接至机械呼吸机。采用氧气与异氟烷吸入麻醉,诱导阶段异氟烷浓度为 5%,术中维持阶段为 2–3%。检查气管插管位置是否正确,听诊胸腹部在吸气时的呼吸音,并观察胸壁运动情况。
  6. 将脉搏血氧仪探头置于舌下表面,并用胶带固定。
  7. 观察下颌张力是否松弛,以监测麻醉深度。完全松弛表示麻醉较深,下颌痉挛则提示动物正在苏醒。持续监测麻醉机上的脉搏速率及血氧饱和度相对于基线的变化。
    注意:脉搏速率升高 10% 或血氧饱和度下降,提示动物正从深麻醉状态恢复,需调整麻醉药物剂量。每 15 分钟通过捏耳检查深部反射。一旦出现从深麻醉中恢复的迹象,应增加麻醉剂量。

2. 皮肤准备与铺巾

  1. 所有手术操作均应在无菌条件下进行。
  2. 将动物仰卧位放置。使用7.5%聚维酮碘溶液清洁下腹壁、会阴及阴道区域皮肤,随后用无菌吸水毛巾擦干皮肤。
  3. 在麻醉诱导时,静脉给予头孢唑林钠25 mg/kg。接着,用无菌手术巾覆盖动物身体,仅暴露会阴区域。
  4. 插入12-French导尿管(Foley导尿管)以引流膀胱。(图1A)。

3. 静电纺丝聚氨酯网片植入

  1. 沿纵向切开阴道前壁(图1B)。使用梅岑鲍姆剪刀向侧方分离,游离阴道壁与尿道之间的间隙16
    1. 通过阴道前壁切口将剪刀闭合插入,导向一侧骨盆侧壁,打开剪刀叶片,然后将其退出。
    2. 重复此操作数次,直至所创建的间隙可容示指进入耻骨后间隙(图1C、D)。在对侧重复相同解剖操作16
  2. 在五只健康的成年经产母羊中使用静电纺丝聚氨酯植入物。(材料表)。
    1. 将单股聚丙烯缝线穿入36 mm圆锥形圆头针中,并穿过植入物两端的侧边缝合孔。
    2. 使用穿刺针引导器将缝线经耻骨后组织向上引出(图1E16
    3. 在腹前壁确认引导器尖端位置,通过腹前壁5 mm横向切口将其穿出,并将缝线引出。
  3. 通过植入物的两个侧孔再置入两根可吸收缝线以固定其位置(图1F16。利用聚丙烯缝线将植入物向上牵拉,将其置于尿道下方并打结固定(图1G16。将聚丙烯缝线的腹壁端打结固定在一起,并用3-0可吸收缝线缝合覆盖其末端的皮肤。
  4. 用2-0可吸收缝线缝合阴道前壁(图1H16。采用间断缝合及外科打结技术。
  5. 拔除导尿管。放置聚维酮碘阴道填塞物,24小时后取出。

4. 聚丙烯带植入

  1. 在第二组动物中使用聚丙烯经阴道吊带植入物,该组包括两只健康、成年、经产的母羊(材料表)。
  2. 纵向切开阴道前壁。通过耻骨后侧方分离,建立阴道壁与尿道之间的间隙。
  3. 将吊带及其保护鞘连接至产品专用的导入器上。通过耻骨后组织将导入器向头侧推进(图2A)。在前腹壁处识别导入器尖端,并通过一个5 mm的横向前腹壁切口将其引出。释放聚丙烯吊带。
  4. 将吊带向头侧牵拉,使其置于尿道下方(图2B)。剪断吊带中央标记处,以移除保护鞘。从腹侧末端抽出保护鞘并丢弃。无需使用缝线固定吊带,因其具有自固定特性。修剪吊带的腹侧末端,并以皮肤缝合覆盖。
  5. 使用可吸收的2-0缝线缝合前阴道壁。采用间断缝合及外科打结技术。

5. 术后方案

  1. 术后观察动物是否有疼痛和并发症,并允许其自由饮水和进食 随意摄取.
  2. 术后8小时开始给予镇痛药:根据需要,每8-12小时皮下注射卡洛芬2-5 mg/kg,持续三天。
  3. 完全恢复后,将绵羊合群饲养并允许其自由活动。每天观察动物状况,若出现疼痛或痛苦迹象应及时处理,必要时实施安乐死。

6. 终点

  1. 在全身麻醉下对动物进行为期三个月的随访,并采集组织用于组织病理学分析。
  2. 在全身麻醉下使用自持式拉钩检查阴道,观察是否存在侵蚀或明显的解剖结构畸形。
  3. 识别并切除移植物及其周围组织,置于10%福尔马林中保存,以备组织病理学检查。
  4. 在全身麻醉状态下,给予足量的静脉麻醉剂实施安乐死,或按照机构批准的动物实验方案中规定的安乐死方法进行操作。

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结果

7只母羊接受了手术,平均体重为27.7 ± 5.1 kg(表1)。图1-2展示了手术过程。手术未引起任何直接相关的并发症或病态。所有动物均耐受良好,术后数日内饮食行为、排便及排尿均正常。取出填塞物后无阴道出血。所有动物均存活至实验终点。随访期间,未观察到任何与人类手术中尿道下网片植入相关的典型并发症症状或体征。未发现膀胱损伤、血尿、尿路梗阻、排尿异常、肠梗阻、临床伤口感染、伤口裂开或疝气的证据。在安乐死时,在全身麻醉下使用自持式阴道壁牵开器对阴道进行检查,结果显示阴道切口愈合良好。未见组织侵蚀或可触及的网片。图3显示了新鲜获取的阴道、尿道及移植物标本,肉眼未见明显病理改变。

...
移植物类型聚丙烯

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讨论

本研究的关键步骤是解剖阴道与尿道之间的间隙,建立耻骨后通道,将带有套管针的移植物经此间隙向头侧引导,并将移植物置于尿道下位置。该动物模型能够有效模拟女性尿道下网片植入手术,因此成为外科实验的独特工具2,16。尽管既往已有实验评估聚丙烯(PP)网片作为治疗压力性尿失禁(SUI)的合成移植物的可行性,但这些实验均采用腹壁作为植入部位,并使用大鼠和兔等小型动物13,14。此类动物实验旨在评估组织对聚丙烯网片的反应。然而,这些实验的结果可能不适用于植入于阴道与尿道之间的网片。

本研究采用母羊作为大型动物模型。母羊的解剖结构与人类女性解剖结构相似,且具有宽敞的阴道10。先前一项关于盆腔器官脱垂移植物应用的研究将移植物置于阴道与直肠之间11。然而,该结果无法外推至尿道...

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披露

作者声明本出版物不存在利益冲突。

致谢

作者感谢研究助理 Sahar Salem 女士在手术操作中的宝贵参与。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Advantage Fit Blue 系统(聚丙烯带)Boston Scientific Corporation 300 Boston Scientific Way Marlborough, MA 01752M0068502120 针头直径:2.7 mm,网片厚度:0.66 mm,孔径:1182 μm,纤维尺寸(直径):0.15 mm
COVIDIEN Nellcor MAXACovidien Medtronic, Operational Headquarters 710 Medtronic Parkway, Minneapolis, MN 55432-5640 USA脉搏血氧仪
COVIDIEN Shiley Hi-Lo 口/鼻气管导管Covidien Medtronic, Operational Headquarters 710 Medtronic Parkway, Minneapolis, MN 55432-5640 USA内径 7 mm 的气管插管
Drager FabiusDraeger Arabia Co.Ltd. P.O.Box 365642. Riyadh 11393 沙特阿拉伯王国麻醉机及监护仪,Siemens SC 7000 监护仪,挥发性麻醉药蒸发器,氧气、空气和氧化亚氮流量计
静电纺丝聚氨酯筋膜模拟植入物英国谢菲尔德大学,谢菲尔德,英国NA带状移植物材料
聚丙烯缝线 Johnson & Johnson Medical N.V.,比利时V8015带圆针的 2.0 缝线
无菌操作包阿拉伯医疗器械制造公司,邮政信箱 355033,利雅得 11383,沙特阿拉伯CPT-01000-022聚维酮碘托盘,包含 7.5% 聚维酮碘 120 ml、10% 聚维酮碘 120 ml、涂抹海绵和无菌毛巾

参考文献

  1. Lee, U. J., et al. Prevalence of urinary incontinence among a nationally representative sample of women, 2005-2016:Findings from the Urologic Diseases in America Project. J. Urol. 205 (6), 1718-1724 (2021).
  2. Ulmsten, U., Henriksson, L., Johnson, P., Varhos, G. An ambulatory surgical procedure under local anesthesia for treatment of female urinary incontinence. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 7 (2), 81-85 (1996).
  3. Ward, K., Hilton, P. Prospective multicentre randomised trial of tension-free vaginal tape and colposuspension as primary treatment for stress incontinence. BMJ. 325 (7355), 67(2002).
  4. Glazener, C. M. What is the role of mid-urethral slings in the management of stress incontinence in women. Cochrane Database Syst. Rev. 2015 (7), (2015).
  5. Rezapour, M., Novara, G., Meier, P. A., Holste, J., Landgrebe, S., Artibani, W. A 3-month preclinical trial to assess the performance of a new TVT-like mesh (TVTx) in a sheep model. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (2), 183-187 (2007).
  6. Keltie, K., et al. Complications following vaginal mesh procedures for stress urinary incontinence:an 8 year study of 92,246 women. Sci. Rep. 7 (1), 12015(2017).
  7. Pelvic organ prolapse (POP) surgical mesh:Considerations and recommendations. , U.S. Food and Drug Administration. https://www.fda.gov/medical-devices/urogynecologic-surgical-mesh-implants/pelvic-organ-prolapse-pop-surgical-mesh-considerations-and-recommendations (2024).
  8. Washington, J. L. Commercial products for pelvic repair. Female Pelvic Med. Reconstr. Surg. 17 (5), 218-225 (2011).
  9. de Tayrac, R., Alves, A., Thérin, M. Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).
  10. Couri, B. M., Lenis, A. T., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. Animal models of female pelvic organ prolapse:lessons learned. Expert Rev. Obstet. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).
  11. Urbankova, I., et al. Transvaginal mesh insertion in the ovine model. J. Vis. Exp. (125), (2017).
  12. Farr, N. T. H., et al. Evidence of time dependent degradation of polypropylene surgical mesh explanted from the abdomen and vagina of sheep. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 160, 10672(2024).
  13. Roman, S., et al. Evaluating alternative materials for the treatment of stress urinary incontinence and pelvic organ prolapse:a comparison of the in vivo response to meshes implanted in rabbits. J. Urol. 196 (1), 261-269 (2016).
  14. Przydacz, M., Adli, O. E. Y., Mahfouz, W., Loutochin, O., Bégin, L. R., Corcos, J. Structural differences and architectural features of two different polypropylene slings (TVT-O and I-STOP) have no impact on biocompatibility and tissue reactions. Cent. Eur. J. Urol. 70 (2), 154-162 (2017).
  15. Isali, I., et al. Comparison of morphological and histological characteristics of human and sheep:sheep as a potential model for testing midurethral slings in vivo. Urol. Int. 107 (4), 422-428 (2023).
  16. Chapple, C. R., et al. Development of a clinically relevant preclinical animal model to mimic suburethral implantation of support materials for stress urinary incontinence. Neurourol. Urodyn. 44 (2), 489-495 (2025).

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