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方法文章

利用 CRISPR-Cas9 对埃及伊蚊 Aedes aegypti 进行基因组编辑

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DOI:

10.3791/67732

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2025年3月21日

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* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文介绍了一种利用CRISPR-Cas9技术通过胚胎显微注射对蚊子A. aegypti进行基因组编辑的详细实验方案。

摘要

成簇规律间隔短回文重复序列(CRISPR)-Cas9 技术的出现彻底改变了基因工程领域,为包括非模式生物在内的多种物种实现精确基因组编辑打开了大门。在埃及伊蚊(Aedes aegypti)中,已利用该技术成功实现了基因功能缺失突变和 DNA 插入。本文详细描述了一种利用 CRISPR-Cas9 技术在埃及伊蚊(A. aegypti)中通过胚胎显微注射进行基因组编辑的实验方案,重点聚焦于基因敲除和基因敲入品系的建立。在本方案中,石英玻璃针头被注入包含向导 RNA、重组 Cas9 蛋白以及一段编码荧光标记基因的 DNA 片段的质粒(如需实现基因敲入)的混合物。将处于囊胚前阶段的胚胎排列在载玻片上双面胶带的一条带上,随后将盖玻片固定于载玻片上。借助显微注射仪,将针头轻柔地插入胚胎后端,并注入少量 CRISPR 混合物。胚胎孵化后,幼虫在荧光显微镜下进行检测,蛹期个体按性别分选并置于不同饲养笼中。成虫羽化后,将其与野生型个体进行正反交配,饲血后用于产卵。待所产卵孵化后,收集到的荧光阳性幼虫即为 DNA 片段稳定整合至基因组中的个体。这些幼虫继续培养至成虫阶段,再次与野生型个体杂交,并通过分子生物学技术进一步验证 DNA 片段是否精确插入蚊子基因组的预期位点。通过所提供的杂交策略和分子筛选流程,还可获得纯合品系。

引言

随着CRISPR-Cas分子剪刀技术的建立,精确的基因组编辑已变得不仅可行,而且更为简便1。这些技术利用了原核生物免疫系统用于抵御噬菌体感染的一种机制2。在这些系统中,成簇规律间隔的短回文重复序列(CRISPR)与Cas9核酸酶通常依赖于20个碱基对长度的RNA,即向导RNA(gRNA),其序列与靶向DNA同源,并紧随一个NGG型原间隔序列邻近基序(PAM)序列3。gRNA与Cas9结合后,可将核酸酶精确引导至基因组中的特定靶位点,从而引发DNA双链断裂3。

DNA双链断裂会诱导修复机制来修补双螺旋结构4。尽管所有DNA修复通常都应精确进行,但也存在一些准确性较低的DNA修复机制,可能留下序列疤痕,进而导致功能缺失突变4。在这些易错的DNA修复机制中,非同源末端连接(Non-Homologous End-Joining, NHEJ)可引起移码突变,包括小片段缺失、插入以及核苷酸改变(SNPs),从而导致功能缺失突变。而同源定向修复(Homology Directed Repair, HDR)机制则依赖同源染色体作为模板,复制未受损等位基因的精确序列,实现对靶向DNA序列的完美修复

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方案

本方案所用仪器和试剂的详细信息列于材料表中。所有动物实验均按照美国国立卫生研究院(National Institutes of Health)推荐的《实验动物护理与使用指南》进行操作。实验程序已获得加州大学圣地亚哥分校(UCSD)机构动物护理与使用委员会(IACUC,动物使用协议编号 #S17187)和加州大学圣地亚哥分校生物使用授权(BUA #R2401)的批准。

1. gRNA 与供体质粒设计

  1. 构建基因敲除突变体时,设计两个间隔约 20–100 bp 的 gRNA(图 1A)。
    1. 使用在线工具(如 CHOPCHOP( https://chopchop.cbu.uib.no/)17、Benchling(benchling.com)或 CRISPOR(http://crispor.gi.ucsc.edu/)18)设计长度为 20 bp 的 CRISPR-Cas9 gRNA,注意排除 PAM 序列(NGG)(图 1A)。根据在线工具的建议,选择特异性最高且脱靶风险最低的 gRNA 用于实验。
    2. 确保在两个 gRN....

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结果

gRNA介导的HDR同源重组基因靶向设计与验证
为确保准确靶向目标基因,我们建议选择若干gRNA,并将5'和3'同源臂定位在HDR介导的同源重组切割位点附近(图1A)。例如,我们设计了两个gRNA,分别靶向目的基因起始密码子的两侧,并使用QF2-Hsp70-OpIE2-ECFP-SV40片段作为标记,通过HDR机制利用1 kb的同源臂将其插入目标基因中(图1B)。双链断裂将导致gRNA切割位点之间的短DNA片段被删除(图1A)。

通过检测gRNAs对目标基因的切割效率及其切割能力来验证 体外 Cas9 切割实验。来自靶基因的 PCR 片段被装载了 gRNA 的 Cas9 切割成两个片段(

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讨论

CRISPR-Cas 技术通过促进染色体上特定位点的靶向改变,彻底改变了基因组编辑的格局1。尽管转座元件在首批转基因蚊子的构建中发挥了关键作用,但其插入位点具有一定的随机性,且由于基因组位置效应(即插入位点)的影响,所携带构建体(启动子 + 基因)的表达模式可能与目标基因的实际表达谱不一致,通常会导致异位表达21。在 CRISPR-Cas9 分子剪刀技术出现之前,已有技术通过特定蛋白结构域与 FokI 限制性内切酶融合,利用这些结构域的 DNA 结合特性,在特定位点诱导 DNA 双链断裂,例如 TALEN22 和锌指核酸酶(Zinc Finger)23。尽管后者已成功应用于蚊子的遗传改造24,25,但由于设计此类结构域成本高昂,且存在脱靶切割的风险,这类技术已逐渐被淘汰。自此以后,CRISPR-Cas9 技术已成为首选的分子剪刀工具.......

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披露

O.S.A. 是 Agragene, Inc. 和 Synvect, Inc. 的创始人,持有股权利益。此安排的条款已根据加州大学圣地亚哥分校的利益冲突政策进行审查并获得批准。其余作者声明不存在竞争利益。

致谢

作者感谢Judy Ishikawa和Ava Stevenson在蚊虫饲养方面提供的帮助。本研究由美国国立卫生研究院(NIH)资助项目(R01AI151004、RO1AI148300、RO1AI175152)支持,上述项目授予O.S.A.;此外,N.H.R. 获得K22AI166268资助。图示使用 BioRender绘制。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10x Cas9 反应缓冲液PNA Bio CB01
Benchling 软件BenchlingN/Awww.benchling.com
Cas9 稀释缓冲液PNA Bio CB03
Cas9 蛋白PNA Bio CP01-50
DH5α E. coli 感受态细胞New England BiolabsC2987
双面胶带Scotch Permanent3136
果蝇培养管Genesee Scientific 32-109
滤纸 GE Healthcare Life Science 1450-042
鱼食 TetraB00025Z6YI金鱼薄片饲料 
果蝇培养瓶Genesee Scientific AS273
荧光显微镜Leica Microsystems  M165 FC
基因片段Integrated DNA TechnologiesN/A
gRNASynthegoN/A
卤代烃油 700 Sigma-AldrichH8898
显微注射显微镜Leica Microsystems DM2000
JM109  E. coli 感受态细胞 Zymo ResearchT3005
显微注射仪EppendorfFemtoJet 4x 
填充 Femtotips 用 Microloader 吸头 EppendorfE5242956003
显微操作器 EppendorfTransferMan 4r 
微量移液器拉制仪 Sutter Instrument P-2000
显微镜盖玻片 Fisherbrand 12-542-B
显微镜载玻片 Eisco12-550-A3
小鼠血液(用于喂食的活体小鼠)加州大学IACUC,动物使用方案 #S17187用于蚊虫血液喂养;详细信息符合动物伦理协议
NEB Q5 高保真 DNA 聚合酶 New England BiolabsM0491S
PCR 纯化试剂盒Qiagen28004
质粒小提试剂盒 Zymo ResearchD4036
石英丝 Sutter InstrumentsQF100-70-10
体外转录纯化试剂盒Fisher ScientificAM1908
超纯水 Life Technologies10977-023

参考文献

  1. Anzalone, A. V., Koblan, L. W., Liu, D. R. Genome editing with CRISPR-Cas nucleases, base editors, transposases and prime editors. Nat Biotechnol. 38 (7), 824-844 (2020).
  2. Garneau, J. E., et al. The CRISPR/Cas bacterial immune system cleaves bacteriophage and plasmid DNA. Nature. 468 (7320), 67-71 (201....

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重印与许可

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