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方法文章

使用 体内 高效质粒构建组装

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DOI:

10.3791/67870

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2025年2月7日

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本文内容

摘要

体内组装是一种不依赖连接酶的克隆方法,该方法依赖细菌内在的DNA修复酶通过同源重组将DNA片段组装在一起。该方案既节省时间又降低成本,所需试剂很少,且克隆效率可高达99%。

摘要

体内 组装(IVA)是一种分子克隆方法,利用细菌中存在的内在酶促进DNA片段间的分子间重组,从而构建质粒。该方法通过将具有15-50 bp同源区域的DNA片段转入常用的实验室 大肠杆菌 菌株及细菌利用不依赖RecA的修复途径将DNA片段组装成质粒。该方法比许多依赖于 体外 转化前质粒的组装 E. coli 菌株。这是因为 体外 方法需要购买专用酶并进行一系列酶促反应,这些反应需要孵育步骤。然而,与之不同的是 体外 方法上,IVA 尚未通过实验被证实能够组装线性质粒。在此,我们分享本实验室所采用的 IVA 方案,用于快速组装质粒,以及在具有不同复制起点和抗生素抗性标记的质粒之间亚克隆 DNA 片段。

引言

分子克隆包含一系列实验室技术,用于构建含有特定重组DNA的质粒1这些普遍使用的技术常常成为实验流程中的瓶颈2许多分子克隆技术依赖于DNA片段的组装 体外 在转化至宿主菌株之前,通过一系列酶促反应(例如, 大肠杆菌 DH5α)用于扩增3,4,5,6,7。当 体外 质粒组装方法依赖于酶,而购买或纯化酶既昂贵又耗时。

体内组装(in vivo assembly, IVA)是一种依赖于在合适宿主中进行DNA片段间分子重组的分子克隆方法8,9,10,11,12....

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方案

1. 设计带有同源末端的引物或DNA片段

  1. 使用文字处理软件或专业的DNA分析软件对目标质粒进行人工组装。
    注意:通常建议对来自不同来源的DNA片段采用不同颜色进行标注,并突出显示将在后续组装步骤中使用的同源区域。此外,对同源DNA进行颜色编码也有助于确保定向组装。
  2. 设计可结合至各DNA片段的引物,并在引物中包含15–50 bp的同源DNA序列(图1)2,15。
    1. 为提高IVA效率,应确保同源DNA片段的熔解温度在47–52 °C之间2。
      注意:熔解温度可通过在线软件18或以下公式计算:熔解温度 = 64.9 + 41 × (nG + nC - 16.4)/(nA + nT + nG + nC),其中n表示序列中G、C、A或T的数目6,19。
    2. 避免使用具有高度重复序列(如CATCATCATCATCATCAT)的引物,因其可能编码HIS标签并引发不稳定性20

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结果

在本研究中,作为 IVA 应用的一个示例,我们遵循所提供的 IVA 操作流程,将 mCherry 开放阅读框重新克隆至质粒 pSU19 的多克隆位点,从而构建出与 pSU19mCherry 完全相同的质粒(图3)17。根据方案步骤 1.1 和 1.2 设计适用于 IVA 的引物。随后,使用质粒提取试剂盒分别提取 pSU19 和 pSU18mCherry,作为 PCR 扩增质粒骨架和插入 DNA 的模板(方案步骤 2.1)。通过 PCR 扩增 pSU19 质粒骨架(引物对:pSU19_F:TAGGGTACCGAGCTCGAATTC 和 pSU19_R:CCCGGGGATCCTCTAGAGTC),并从 pSU18mCherry 中扩增 mCherry 开放阅读框(引物对 mCherry_F:ctctagaggatccccgggATGGTATCAAAAGGAGAGGAAG 和 mCherry_R:gaattcgagctcggtaccctaTTATCATTACTTGTACAGTTC;mCherry 引物中的小写字母序列表示与用于扩增 pS.......

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讨论

成功进行IVA克隆最关键的步骤是DNA片段和引物的设计。当同源片段设计长度至少为15 bp,且熔解温度约为47–52 °C时,IVA效率显著提高。已有详细研究报道了IVA片段设计的优化方案16提高克隆效率的另一个重要步骤是在PCR扩增过程中尽可能使用少量的模板DNA。为进一步减少模板DNA的残留,我们对循环结束后的PCR产物进行处理,使用 DpnI 用于切割甲基化模板 DNA。这可以显著减少筛选阳性克隆所需的工作量。根据我们的经验,在 DpnI处理中,每个转化只需筛选1-2个菌落;无需 Dpn在I处理中,我们需要对每次转化筛选5-10个菌落。

尽管我们及其他研究者已报道IVA克隆可产生大量菌落形成单位16,17,但转化平板上仍可能无菌落生长。根据我们的经验,增加转入感受态细胞的DNA量(尤其是使用较大质粒骨架时)和/或增加所用感受态细胞的体积,均可提高转化效率。如果.......

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披露

作者声明无任何利益冲突。

致谢

HGB 由加拿大自然科学与工程研究理事会(NSERC)的加拿大研究生奖学金-硕士项目和萨斯喀彻温大学院长博士生奖资助。本研究工作得到了 NSERC 发现基金(RGPIN-2021-03066)、萨斯喀彻温大学启动资金(授予 JLT)以及加拿大创新基金会 John R. Evans 领导者基金(项目编号 42269,授予 JLT)的支持。作者感谢 Eric Toombs 先生提供通过紫外光谱法进行 DNA 定量的实验照片。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1 kb Plus DNA 标准品FroggaBioDM015-R500DNA 分子量标记物
AccuReady M 单通道 0.5-10 µLBulldog BioBPP020用于液体转移的移液器
AccuReady M 单通道移液器套装Bulldog BioBPK100用于液体转移的移液器
琼脂BioShop CanadaAGR003.1培养基凝固剂
琼脂糖BiobasicD0012用于制备 DNA 电泳用琼脂糖凝胶
Biometra TOne Analytikjena846-2-070-301PCR 仪
玻璃培养管盖Fisher Scientific14-957-91可重复使用的玻璃培养管盖
DNA 引物Integrated DNA TechnologiesN/A在 PCR 反应中结合并扩增模板 DNA
DpnI New England BiolabsR0176SPCR 扩增后切割甲基化的模板 DNA
EcoRINew England BiolabsR3101L限制性内切酶,附带相应缓冲液
Eppendorf 微量离心管 1.5 mLSarstedt72.690.300微量离心管,1.5 mL,锥底,聚丙烯材质,带平盖,模制刻度及磨砂书写区
溴化乙锭Fisher ScientificAAL0748203DNA 可视化/嵌入剂,有毒
EZ-10 旋转柱质粒 DNA 小量提取试剂盒BiobasicBS614从过夜培养的细菌中分离质粒 DNA
GelDoc Go-Gel 成像系统Bio-Rad12009077DNA 凝胶成像系统
玻璃培养管Fisher Scientific14-925E玻璃培养管
myGel Mini 电泳系统Sigma-AldrichZ742288用于凝胶电泳的系统
NanoDrop OneThermo FisherND-ONE-W测定 DNA 浓度
DNA 测序用 PCR 产物纯化试剂盒BiobasicBT5100纯化 PCR 产物 
培养皿Sarstedt82.1473.011培养皿 92 × 16 mm,聚苯乙烯材质,透明,带通风槽
移液器吸头,1000 µLSarstedt70.305适用于 100–1000 µL 的移液器吸头
移液器吸头,2.5 µLSarstedt70.3010.265适用于最大 2.5 µL 的移液器吸头
移液器吸头,20 µLSarstedt70.3020.200适用于最大 20 µL 的移液器吸头
移液器吸头,200 µLSarstedt70.3030.020适用于 1–200 µL 的移液器吸头
盐(NaCl)Fisher ScientificS271-10细菌培养基组分(10 g/L)
带平盖的单个 0.2 mL PCR 管FroggaBioTF-1000PCR 管
胰蛋白胨(细菌学级)BioShop CanadaTRP402.5细菌培养基组分(10 g/L)
VeriFi 高保真 DNA 聚合酶PCR BiosystemsPB10.42-01高保真聚合酶,购买时附带含 Mg2+ 的 PCR 缓冲液和 dNTPs
Xba INew England BiolabsR0145S限制性内切酶,附带相应缓冲液
酵母提取物BioShop CanadaYEX401.205细菌培养基组分(5 g/L)

参考文献

  1. Bertero, A., Brown, S., Vallier, L. Methods of cloning. Basic Science Methods for Clinical Researchers. Chapter 2, Academic Press. 19-39 (2017).
  2. Garcia-Nafria, J., Watson, J. F., Greger, I. H. IVA cloning: A single-tube universal cloning system exploiting bacterial in vivo assembly. Sci R....

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