本文概述了一种使用 14种 C 标记的有机污染物研究植物介导的修复方法。它描述了水培植物制备、放射性标记摄取和荧光粉成像,以跟踪污染物的吸收、易位和代谢。该技术为评估各种植物物种和环境污染物的植物修复潜力提供了宝贵的工具。
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本文概述了一种使用 14种 C 标记的有机污染物研究植物介导的修复方法。它描述了水培植物制备、放射性标记摄取和荧光粉成像,以跟踪污染物的吸收、易位和代谢。该技术为评估各种植物物种和环境污染物的植物修复潜力提供了宝贵的工具。
植物修复,即使用植物来减轻环境污染物,为清洁受污染场地提供了一种可持续且具有成本效益的方法。开发有助于阐明植物吸收和污染物代谢背后机制的方法对于改进植物修复实践至关重要。本文介绍了一种使用放射性标记化合物评估植物对有机污染物的吸收和转化的方法。 14C 标记的有机化合物,例如 14型 C-环烷酸,用于追踪它们在植物组织中的吸收、易位、定位和代谢。我们之前曾将这种方法用于多种植物物种,包括 Elymus trachycaulus 和 Salix inside。这些观察结果在这里得到了模型植物拟 南芥的证实,该植物在改良的霍格兰溶液中水培生长。通过液体闪烁计数和荧光粉成像 监测 放射性标记摄取,从而可以可视化和定量植物组织内的放射性标记化合物。该方法详细介绍了植物材料的制备、放射性标记化合物的使用以及分析植物内污染物的分布和去向的过程。该方法还包括评估化合物渗出的策略,并允许评估植物对环境污染物的吸收和易位。这种方法提供了对植物介导的修复过程的深入了解,并可应用于各种环境污染物和植物物种的研究。
生物修复是一种由植物和微生物等生物实体介导的修复技术。植物修复使用植物或植物产品从环境中去除污染物,可以补充或作为基于微生物的修复的替代方案,克服单独使用微生物的一些局限性1,2,3,4。植物修复是具有成本效益的,因为植物采用太阳能驱动的过程,污染物通过其根或芽被吸收,并在细胞和组织之间运输,在那里它们可以被代谢、隔离或挥发5。植物修复最有效的植物通常是具有弹性、耐逆性的物种,具有高蒸腾速率、快速生物质生产和深根系,例如在杨属和柳属6 中发现的植物。作为固着生物,植物已经进化出不同的代谢途径来处理环境中的有毒化合物1。这赋予了它们广泛的基因和生化过程,增强了它们管理污染物的能力。
植物降解框架首先由Sandermann等人(1977)7提出,概述了植物介导的污染物解毒的三阶段过程:转化、共轭和区室化。在每一阶段,污染物都会经历酶促修饰,从而增加其亲水性,降低其毒性,并使其更易于螯合或进一步矿化4。然而,由于植物主要依靠大气中的二氧化碳进行碳固定,因此它们将有机污染物完全矿化的能力可能有限。相反,污染物可能被封存在液泡或细胞壁中(植物螯合)或挥发到大气中(植物挥发)1。
植物修复研究的一个关键挑战是检测植物是否可以从环境中吸收和转化有机污染物1。传统的检测方法通常无法准确追踪污染物吸收和易位的途径,因此很难评估植物修复特定污染物的能力1,5。放射性标记的碳 14 (14C) 有机化合物为这个问题提供了强大的解决方案。通过将植物暴露于 14种 C 标记的污染物中,研究人员可以跟踪放射性标记碳掺入植物组织的情况,从而准确了解污染物的吸收、易位和转化。该技术能够识别能够修复特定有机污染物的植物物种,并提供一种可靠的方法来评估所涉及的生理途径。最终,使用 14种 C 标记化合物增进了我们对植物修复潜力的理解,支持制定更有效、更有针对性的环境修复策略。
本文介绍了一种使用 14种 C 放射性标记的有机污染物来监测植物从水培溶液中吸收、易位和去向的方法。最近的一篇出版物描述了一种类似的方法,用于跟踪 14种 C 标记除草剂在叶面施用后的命运8。然而,这里描述的方法概述了如何评估水培溶液中放射性标记污染物的去除和易位,并评论了如何使该方法适应土壤的使用。
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注意:在继续执行本协议之前,请务必查阅相关机构和国家放射性同位素安全指南和法规。简而言之,处理所有放射性物质或任何可能与放射性同位素接触的东西,同时戴上双层手套、实验室外套和安全护目镜。该程序在实验室的专用空间中进行,用胶带标记含有放射性同位素的部分。此外,在所有程序后,立即清洁玻璃器皿和仪器,然后擦拭并通过闪烁计数 测试 它们是否存在污染放射性同位素。这些测定中使用的所有材料和液体也都处理在专用的放射性废物容器中,并按照卡尔加里大学和加拿大核安全委员会的指导方针妥善处理。
1. Hoagland 溶液的制备
2. 放射性标记溶液的制备
3. 拟南芥 ( Arabidopsis thaliana (L.) Heynh.) 植物准备
注意:水培种植拟南芥的方案详见Conn等人(2013)9。

图 1:拟南芥发芽和成熟水培罐和 14C-AdCA 处理容器。 (A)用于发芽拟南芥种子用于水培生长的发芽罐。(B)成熟罐中的拟南芥植物准备进行实验。(C)在实验过程中根浸没在 14C-AdCA溶液中的拟南芥植物。50 mL烧瓶( 14C处理容器)在暴露期间通常用铝箔(未显示)覆盖,以防止藻类生长。 请点击此处查看此图的大图。
4. 波罗的海灯心草 (Juncus balticus Willd. ) 植物准备
5. 沙洲柳(Salix interior Rowlee)小苗准备
注意:Alberts 等人 (2021)10 描述了种植沙洲柳树小苗的方案。
6. 放射性同位素标记
7. 植物的荧光粉成像
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14C 标签摄取程序适用于拟南芥以外的多种植物物种,包括 Salix interior、Elymus trachycaulus (Link) Gould ex Shinners 和湿地物种,例如 Juncus balticus10,12。然而,出于代表性的目的,我们介绍了拟南芥生态型 Columbia-7 (Col-7) 的结果。此前,我们证明环烷酸(NA)等环境污染物被水培溶液中生长的几种植物物种吸收和代谢10,12。众所周知,NAs影响模式植物拟南芥的生长、细胞器形态和动力学以及基因表达13,14,15。
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近几十年来,植物修复作为一种被动、经济且环保的清洁工业废物和受污染场地的方法而受到关注1。识别污染物吸收增强的植物物种并了解控制有机分子吸收的分子过程可以改进植物修复策略。与其他间接方法不同,这里描述的放射性标记摄取和荧光粉成像技术可以广泛用于跟踪植物中目标异生素和内源性有机化合物的摄取和易位。
为了模拟根际的条件,将放射性标记溶液调整到 pH 值为 5.0,以反映植物根部及其周围通常发现的微酸性环境。然而,这种可能持续存在于土壤中的天然酸性梯度不会保留在水培溶液中,因此需要添加缓冲液12,16。此外,为了安全和最佳信噪比,我们建议将放射性同位素浓度限制在 0.1-0.26 kBq/mL 之间。在需要更高浓度来模拟环境条件或观察特定效果的情况下,可以通过添加更高浓度的等效非放射性 12C 同位素来增加浓度。该协议还可以通过将
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作者声明不存在利益冲突。
这项工作得到了加拿大基因组协会与艾伯塔省基因组协会和魁北克基因组合作的大规模应用研究项目 (LSARP) 拨款 (#18207) 的支持。共同资金由艾伯塔省政府通过艾伯塔省创新局和就业、经济和贸易部提供。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| Hoagland 改良基础盐混合物 | 植物技术实验室 | H353型 | 含有硫酸亚铁 |
| 琼脂 | 生物商店 | AGR001型 | |
| MES(2-(N-吗啉)乙烷磺酸) | 生物商店 | MES555型 | |
| pH计 | 梅特勒-托利多 | 五易 | |
| 甲醇 | 生物商店 | MET302 | |
| 12C-金刚烷羧酸 | 西格玛·奥尔德里奇 | 106399 | |
| 14C-金刚烷羧酸 | 维特拉克斯 | 自定义合成 | |
| 125 mL锥形瓶 | 大众 | 30623-174 | |
| 50 mL Falcon 试管 | 大众 | CA21008-940 | |
| 微升直管 | 大众 | 87003-294 | |
| 植物生长室 | 康维伦 | ||
| 小费箱 | 迪亚迈德 | DIATEC530-8376 | |
| Rubbermaid Roughneck 3 加仑手提包 | 亚马逊河 | B0B3345MYH | |
| 滤纸 | 大众 | CA28320-020 | |
| 培养皿 | 大众 | 11019-566 | |
| 带烧瓶架的摇床 | 福玛科学 | 型号 4516 | |
| 闪烁鸡尾酒 | 研究产品国际 | 111195 | |
| 闪烁瓶 | 大众 | 10014-296 | |
| 闪烁计数器 | 贝克曼库尔特 | LS 6000IC | 使用的样品瓶将取决于您的闪烁计数器 |
| 凝胶干燥机 | 生物辐射 | 型号 583 | |
| 激光扫描荧光粉成像仪 | 生物辐射 | 分子成像仪 FX |
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