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方法文章

Shrinky-Dink悬滴法:一种简单形成与培养类胚体的方法

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DOI:

10.3791/692

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2008年3月5日

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本文内容

摘要

我们展示了一种简单且快速的方法,可将预定义数量的细胞加载到微加工孔中,并维持其进行胚状体发育。

摘要

类胚体(EB)是胚胎干细胞的聚集体。生成这些聚集体最常用的方法是悬滴法,即通过移液将任意数量的细胞滴加到孔板中,该方法操作繁琐。将干细胞强制性地置于紧密相邻的位置,可促进类胚体的形成。由于每个孔中的培养基都需每天手动更换,因此该方法需要大量人工操作。

此外,由于环境参数(包括细胞-细胞相互作用、细胞-可溶性因子相互作用、pH值和氧气供应)可能受类胚体(EB)大小的影响,即使在相同培养条件下,传统悬滴法获得的细胞群体也可能存在显著差异。近期研究确实表明,形成聚集体的初始细胞数量对干细胞分化具有重要影响。我们开发了一种简单、快速且可放大的培养方法,可将预定义数量的细胞加载至微加工微孔中,并维持其进行类胚体发育。最后,这些细胞易于获取,可用于进一步分析和实验。该方法适用于任何实验室,且无需专用设备。我们通过使用一种红色荧光小鼠细胞系(129S6B6-F1)生成类胚体来演示此方法。

方案

1. 制作 Shrinky-Dink 模具

  1. 使用高分辨率打印机将所需图案打印在缩水片(shrinky-dink sheet)上。
  2. 在 163°C 下烘烤缩水片约 10 分钟,或直至其完全收缩并形成规则形状。
  3. 待缩水模具冷却后,将其浸入异丙醇浴中,直至整个表面刚好被覆盖。
  4. 小心地向模具表面喷洒少量丙酮,并轻轻摇晃容器数次。加入更多异丙醇以洗去多余的丙酮,并重复此步骤数次,直至缩水模具表面看起来洁净。
  5. 将模具浸入蒸馏水中 10 分钟,以去除任何残留的有机溶剂。
  6. 用空气吹干缩水模具。再于 163°C 下加热约 5 分钟,以固化油墨并蒸发任何残留溶剂。

2. 制备PDMS微孔

  1. 制备10:1的PDMS/固化剂混合物,并剧烈搅拌几分钟。
  2. 将Shrinky-Dink模具放入一个小培养皿中。倒入PDMS混合物,使其覆盖模具表面约1/2 cm。
  3. 将培养皿置于真空钟罩下,以去除PDMS混合物中的所有气泡。
  4. 将培养皿放入70°C烘箱中,过夜固化。
  5. 将固化的PDMS从模具上剥离,并通过施加压力将其键合到玻璃载玻片上。
  6. 弃去第一个微孔芯片,因其PDMS之间残留有油墨。
  7. 重复此步骤制备第二个芯片,确保无油墨残留且形状更清晰。
  8. 使用70%乙醇溶液清洗微孔芯片。将其置于紫外光源下照射10分钟以灭菌。

3. 在微孔中捕获细胞

  1. 计数细胞,并用培养基将其稀释至所需浓度(根据希望每孔中初始细胞数量而定)。例如,若希望每孔约有10–15个细胞(平均值 = 11,标准差 = 5.4,上样率 = 93%),我们使用了8×104 个细胞/mL的浓度。当细胞浓度为17×104 个细胞/mL时,可稳定获得每孔25–35个细胞(平均值 = 27.17857,标准差 = 7.7,上样率 = 100%)。
  2. 小心将微孔芯片放入含有固化PDMS基底的50 mL离心管中。
  3. 加入约2JDP mL细胞悬液。
  4. 在4°C条件下,以760 rpm离心5分钟。
  5. 用移液器吸除多余液体,并用1× PBS溶液小心清洗微孔芯片。
  6. 将微孔芯片转移至小型培养皿中,从离心管中取出芯片时需格外小心。
  7. 使用1× PBS溶液洗去多余的细胞。
  8. 将微孔芯片置于倒置显微镜下,以确认每孔中的细胞数量是否符合预期。
  9. 将含有细胞的微孔芯片置于标准条件下孵育。

    细胞显微图像;细胞分布与结构分析。

4. 细胞孵育

  1. 按照实验室常规 EB 方案操作。
  2. 从培养 chamber 的侧边缓慢更换培养基;避免扰动微孔中的细胞。

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讨论

我们开发了一种简单、快速且可扩展的培养方法,可将预定义数量的细胞加载到微加工孔(由Shrinky-Dinks材料模制而成)中,并维持其进行类胚体发育。最终,这些细胞可方便地用于后续分析和实验。该方法适用于任何实验室,且无需专用设备,因为我们避免了对光刻技术的需求。我们可调节微孔的尺寸以及每孔细胞的浓度,从而改变类胚体的数量和大小。

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致谢

我们感谢CIRM对本工作的支持。该细胞系由加拿大多伦多安大略省西奈山医院的Dr. Andras Nagy慷慨捐赠。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
材料名称类型公司目录编号
Shrink-Dink 薄膜材料K&B InnovationsD300-10A
PDMS材料Dow CorningSylgard 184
丙酮试剂Fisher ScientificA16P-4
乙醇试剂Fisher ScientificA405P-4
PBS试剂SigmaP4417
BMP-4试剂R and D Systems314-BP-010
Knock-Out DMEM(KO DMEM)试剂Invitrogen10829
KnockOut 血清替代物(KSR)试剂Invitrogen10828
青霉素-链霉素(Penn-Strep)试剂Invitrogen15070-063
L-谷氨酰胺试剂Invitrogen25030-081
非必需氨基酸(NEAA)试剂Invitrogen11140
β-巯基乙醇(BME)试剂Calbiochem444203
白血病抑制因子(LIF){ESGRO 106 单位}试剂ChemiconESG1106
打印机工具HPLaser Jet 2420d
烘箱工具Yamato ScientificDP-22
小鼠胚胎干细胞培养基(mESC 培养基,McCloskey 实验室方案):(配制总体积:50 ml;100 ml)KO DMEM:40.8 ml;81.6 ml 15% KSR:7.5 ml;15 ml 1× 青霉素-链霉素:0.5 ml;1 ml 2 mM L-谷氨酰胺:0.5 ml;1 ml NEAA:0.5 ml;1 ml LIF:100 μl;200 μl BMP-4(10 ng/ml):50 μl;100 μl 稀释后的 BME:50 μl;100 μl(将 35 μl 无菌过滤的 BME 加入 5 ml PBS 中,用注射器滤器再次过滤除菌。两周后弃用。溶液中最终浓度为 0.1 mM)

参考文献

  1. Keller, G. M. In vitro differentiation of embryonic stem cells. Curr Opin Cell Biol. 7, 862-869 (1995).
  2. Doetschman, T. C., Eistetter, H., Katz, M., Schmidt, W., Kemler, R. The in vitro development of blastocyst-derived embryonic stem cell lines: Formation of visceral yolk sac, blood islands and myocardium. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 87, 27-45 (1985).
  3. Park, J., Cho, C. H., Parashurama, N., Li, Y., Berthiaume, F., Toner, M., Tilles, A. W., Yarmush, M. L. Microfabrication-based modulation of embryonic stem cell differentiation. Lab Chip. 7, 1018-1028 (2007).
  4. Koike, M., Sakaki, S., Amano, Y., Kurosawa, H. Characterization of embryoid bodies of mouse embryonic stem cells formed under various culture conditions and estimation of differentiation status of such bodies. J Biosci Bioeng. 104, 294-299 (2007).
  5. Hwang, N. S., Varghese, S., Elisseeff, J. Controlled differentiation of stem cells. Advanced Drug Delivery Reviews. 60, 199-204 (2008).
  6. Adelman, C. A., Chattopadhyay, S., Bieker, J. J. The BMP/BMPR/Smad pathway directs expression of the erythroid-specific EKLF and GATA1 transcription factors during embryoid body differentiation in serum-free media. Development. 129, 539-549 (2002).
  7. Tanaka, N., Takeuchi, T., Neri, O. V., Sills, E. S. Laser-assisted blastocyst dissection and subsequent cultivation of embryonic stem cells in a serum/cell free culture system: applications and preliminary results in a murine model. J Transl Med. 4, (2006).

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