本研究介绍了一种冷冻切片技术方案,该方案采用紫外光固化树脂稳定化方法,在保持植入物-组织界面完整性的同时保留抗原可及性,从而实现对合成聚合物植入物进行可靠且高分辨率的免疫荧光分析。
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本研究介绍了一种冷冻切片技术方案,该方案采用紫外光固化树脂稳定化方法,在保持植入物-组织界面完整性的同时保留抗原可及性,从而实现对合成聚合物植入物进行可靠且高分辨率的免疫荧光分析。
由于传统组织处理方法与这些材料的理化特性不相容,对合成性、生物相容性植入物进行组织学评估面临重大的技术挑战。目前采用完全树脂包埋的方法虽能提供足够的结构保存效果,但会严重损害表位的可及性,从而限制了用于表征宿主免疫反应所必需的免疫组织化学应用。相反,传统的石蜡包埋对合成基质的黏附性较差,并限制了抗体的选择,难以实现全面的免疫学分析。标准的冷冻切片方案通过改善抗原保存而提高了免疫组织化学的兼容性;然而,这些方法常导致含植入物样本的结构完整性不足,影响形态学评估和切片质量。为克服这些局限,本研究开发了一种新型处理方案,在冷冻切片前使用紫外光固化树脂对植入物-组织复合体进行选择性稳定。该方法采用光聚合树脂提供机械支撑,同时保留表位可及性和抗原决定簇——这些通常在完全树脂聚合过程中受到破坏。本方案能够稳定地制备出适用于免疫荧光分析的最佳厚度高质量切片,在结构保存方面优于标准冷冻切片,且避免了传统树脂包埋样本中因广泛交联而导致的抗体穿透受限问题。该方法为合成植入物的组织学处理提供了一种实用且成本效益高的解决方案,增强了生物相容性评估的分析能力,并有助于深入表征植入物-组织界面处的局部免疫反应。
免疫荧光显微技术是再生医学研究中一项关键的分析方法,通过使用荧光素标记的抗体,可实现对组织结构和细胞组成的可视化观察。该方法结合了免疫化学识别的分子特异性与荧光检测的高灵敏度和多功能性,能够在组织微环境中详细观察特定细胞靶标的分布情况。免疫荧光技术包括直接和间接标记策略,其中间接免疫荧光方案利用与多种荧光素(覆盖可见光至近红外光谱范围)偶联的二抗系统,实现更强的信号放大1。该方法通过光谱分离实现多靶标同时检测的固有优势,有助于对复杂组织微环境中的异质性细胞群体及其空间关系进行全面的表型表征2。
免疫荧光显微镜的技术能力已超越传统的蛋白质定位,拓展至多种定量分析应用,包括荧光强度测量、共定位分析以及对理解细胞功能和组织结构至关重要的空间分布评估3。在植入物生物相容性研究中,免疫荧光分析可提供关于宿主免疫反应的关键信息,包括异物反应、炎症级联反应以及决定植入物在细胞和分子水平上被接受或排斥的组织整合过程4。
成功实施免疫荧光实验方案需要仔细考虑组织处理方法,以在保持荧光信号并尽量减少背景自发荧光的同时,维持组织形态的完整性。传统包埋介质的选择取决于组织类型、后续分析需求以及特定目标抗原的性质。对于合成材料和植入物,现有文献主要推荐完全树脂包埋,以在切片过程中维持结构稳定性5。然而,该方法存在显著局限性,因其需要使用专门的超薄切片机和刀片来切割聚合后的树脂块,这需要较高的设备投入和技术经验。石蜡包埋虽然能为切片提供足够的结构支撑,但在固定和处理过程中,由于经历充分脱水、化学硬化以及有机溶剂渗透,可能导致抗原决定簇发生构象改变,从而引起蛋白质变性和表位遮蔽。此外,石蜡处理还会产生内在的自发荧光干扰,影响信号检测和定量分析。这些改变 necessitates 抗原修复步骤,通常采用热诱导表位修复(HIER)或蛋白水解诱导表位修复(PIER),以恢复抗体的可及性6。尽管采取了这些措施,仍有大量 commercially available 抗体无法与石蜡包埋样本兼容,且剧烈的修复条件可能进一步损害荧光信号质量,并引入光漂白伪影。
冷冻切片为免疫荧光应用提供了一种替代的组织处理方法。组织制备可采用两种冷冻保存方法。第一种方法是通过将新鲜组织样本直接浸入用液氮预冷的异戊烷浴中进行快速冷冻保存,使其温度降至–20 °C以下,随后使用配备温控切片室的冷冻切片机进行切片。第二种方案则先用多聚甲醛(PFA)或福尔马林进行短时间固定,再通过梯度蔗糖浸润实现冷冻保护,最后进行冷冻。冷冻保存过程可形成刚性基质,在维持组织完整性的同时,保留蛋白质的天然构象,这对于抗体识别至关重要。冷冻切片使组织保持在接近天然的状态,化学修饰极少7,从而减少了对剧烈抗原修复步骤的需求,并可使用更广泛的初级抗体,包括那些因表位遮蔽或变性而无法用于石蜡包埋组织的抗体8。
冷冻切片过程通常使用最佳切割温度(OCT)包埋剂,这是一种水溶性包埋介质,由聚乙烯醇和聚乙二醇组成,可在切片过程中提供结构支撑,同时保持透明性,并与荧光检测系统兼容。OCT包埋有助于生成厚度为5–15 µm的薄而均匀的切片,具体厚度取决于特定的分析需求和组织特性9。冷冻切片中天然蛋白质构象的保存可维持定量免疫荧光分析所必需的最佳信噪比,同时保留完整的抗原表位,从而允许使用更广泛的初级抗体,包括那些与石蜡包埋组织不兼容的抗体8。
然而,冷冻组织切片在处理具有与天然生物组织不同理化特性的合成植入材料时,面临着独特的技术挑战。在冷冻过程中,合成聚合物与生物组织界面之间的热膨胀系数差异可能导致局部机械应力,从而破坏结构完整性并产生切片伪影10。此外,许多合成材料相对于冷冻生物组织具有较高的固有刚性,这会在切片过程中引起刀片偏转,导致切片厚度不均,并对样本及切割设备造成损伤。这些技术局限性要求采用特殊的处理方案,在保持冷冻切片适用于免疫荧光应用优势的同时,满足含植入物样本的独特需求。
为解决这些局限性,本研究开发了一种冷冻切片技术,该技术结合了选择性紫外光固化树脂稳定化与可控的冷冻切片机切片参数,以实现对植入物-组织复合体进行高分辨率、多参数的免疫荧光分析。
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本研究严格按照梅奥诊所机构动物护理和使用委员会(IACUC)的指南进行,批准编号为 A00003765-18-24。所有涉及合成生物相容性植入物的操作均在无菌条件下进行,并遵循适当的生物安全规程。
1. 样本处理与冷冻保护
注意:福尔马林含有甲醛,是一种强效刺激物、致敏剂和致癌物,因此必须在化学通风橱中操作,并穿戴适当的个人防护装备(PPE)。
2. 冷冻切片机的设置与初步切片
3. 紫外光固化树脂的应用
注意:操作紫外光固化树脂时,应在通风良好的环境中进行,并穿戴适当的个人防护装备;同时保护眼睛和皮肤免受LED紫外固化光源的伤害。此类树脂含有刺激性成分,可能引起皮肤和眼睛反应;暴露于LED紫外光可能导致紫外线相关的眼损伤。
4. 切片回收与载玻片制备
5. 储存与保存
6. 免疫荧光染色实验方案
注意:使用胃蛋白酶时应穿戴适当的个人防护装备,因其对皮肤和呼吸道具有刺激性。
7. 荧光显微镜与图像采集
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切片质量评估与优化
在紫外光固化树脂稳定化处理并以8 µm厚度切片后,将切片收集至防脱载玻片上,并进行质量控制评估。高质量切片应呈现完整的形态结构,无明显裂纹或断裂伪影,组织架构连续,且植入物-组织界面保持完好(图2A)。若切片出现严重结构损伤,包括断裂或组织从树脂稳定的植入物表面分离,则排除于后续分析之外(图2B)。值得注意的是,紫外光固化树脂的应用并未影响OCT包埋块的质量,因为在整个包埋块的全深度范围内均能稳定获得厚度均一的连续切片,表明树脂渗透与紫外光固化过程未对切片质量产生不利影响。保留符合质量标准的切片,用于后续免疫荧光染色实验。
不同样本类型中的免疫荧光染色效果
免疫荧光染色在多种样本类型中均成功实现,包括含有植入物的小鼠皮下组织以及仅含分离植入物材料的样本。由于采用了简化的甲醛固定程序(4°C 过夜),需进行抗原修复以恢复表位的可及性,从而实现抗体的最佳结合。在完成...
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这种紫外光固化树脂稳定化方法为含有合成材料的OCT包埋组织样本提供了一种冷冻切片的替代处理方案,这类样本通常难以通过标准冷冻切片技术进行处理。尽管已有多种粘附选择,例如带电荷载玻片、组织结合胶带及其他贴附式支撑材料,可用于防止组织切片或脆弱样本在操作过程中脱落,但这些产品仅提供载玻片粘附功能,无法在切割过程中为植入物-组织界面提供所需的机械增强支持。此外,目前尚无适用于生物样本表面、可均匀涂布且通过紫外光固化的树脂产品,以增强冷冻切片过程中的结构稳定性。在此背景下,本文所介绍的紫外光固化树脂方案填补了方法学上的空白,能够在保持抗原表位可及性的同时,为需要冷冻处理的抗体检测提供靶向机械支撑,从而实现对含有合成聚合物组分样本的可靠切片11。
成功实施该操作流程需特别注意若干步骤。树脂的选择必须优先考虑其自体荧光尽可能低,并具有适当的黏度,以在切片过程中提供足够的结构支撑,同时避免脆裂或固化不完全。本方案所选用的高黏度树脂在多个荧光通道中均表现出极低的背景干扰。切片厚度需根据材料特性进行优化。在6–10 µm范围内的测试表明,8 µm厚度可...
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作者声明不存在任何竞争性经济利益。
本研究由美国国立卫生研究院国家耳聋及其他沟通障碍研究所资助,项目编号为 R01DC019114。
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| 抗体 - IV 型胶原蛋白(多克隆) | Abcam | ab6586 | 1:100 |
| 抗体 - 驴抗兔 IgG AlexaFluor Plus 555 | Invitrogen | A32794 | 10 ug/mL |
| 抗体 - 羊抗兔 IgG AlexaFluor 488 | Invitrogen | A-11008 | 10 ug/mL |
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| BZ-X 滤光片 TRITC | Keyence | OP-87764 | 滤光片组 |
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