本方案旨在通过临床组织分析和 体外通过ERK1/2信号通路评估其在调控上皮-间质转化中作用的检测方法。
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本方案旨在通过临床组织分析和 体外通过ERK1/2信号通路评估其在调控上皮-间质转化中作用的检测方法。
本方案描述了一种方法学途径,用于研究含CUB结构域蛋白1在鼻咽癌中的表达及其功能作用,以及其在上皮-间质转化过程中的潜在参与。收集鼻咽癌患者和鼻炎患者的临床组织样本,采用实时定量PCR和免疫组织化学方法分析CDCP1的表达。 体外 实验使用CNE2和HK1鼻咽癌细胞系进行。 CDCP1 通过转染CDCP1质粒或特异性siRNA实现基因过表达和敲低。采用MTT法检测细胞增殖,通过Caspase-3活性测定评估细胞凋亡,利用Western blot和定量PCR检测EMT相关标志物的表达及ERK1/2的磷酸化水平。为验证信号通路的参与作用,使用ERK1/2特异性抑制剂U0126进行挽救实验。该方案提供了一套系统的 体外 和 离体 阐明CDCP1调控鼻咽癌肿瘤进展分子机制的框架。
鼻咽癌是最常见的原发性鼻咽恶性肿瘤,起源于鼻咽上皮组织,是一种具有独特地理分布特征的头颈部恶性肿瘤1,2。约98%的鼻咽癌病例与潜伏性EB病毒(EBV)感染相关。该疾病在亚洲发病率较高,而在欧洲较为罕见,其发生可能与饮食习惯及其他因素有关3,4,5。根据组织学分类,鼻咽癌可分为世界卫生组织(WHO)I型、II型和III型6,7,8。与I型相比,II型和III型鼻咽癌对电离辐射更为敏感9;因此,放射治疗在临床上被广泛用于鼻咽癌的治疗10,11。然而,鼻咽癌患者仍面临肿瘤细胞转移的风险,这是导致患者死亡的主要原因之一12,13。较高的复发率凸显了阐明影响鼻咽癌转移的关键分....
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本研究经华中科技大学同济医学院梨园医院伦理委员会批准[批准文号:2026IEC(RYJ016)]。所有患者均签署知情同意书,临床样本的采集与使用均符合《赫尔辛基宣言》的相关伦理准则。本研究使用的主要实验材料和仪器见材料表。
临床组织样本的收集及CDCP1表达的检测
2019年1月至2019年12月期间,我们医院收集了七名鼻咽癌患者的手术组织标本。同时,收集了六名鼻炎患者的鼻腔组织样本作为对照。所有组织样本在采集后立即用液氮速冻,用于后续RNA提取。
RNA 提取与实时定量 PCR 检测
根据制造商说明书从组织样本中提取总RNA。每个样本取50–100 mg组织,在冰上加入1 mL裂解试剂,使用组织匀浆器进行处理。匀浆过程持续30秒,重复3次,以确保组织完全破碎。组织破碎后,每份裂解液中加入200 µL氯仿。试管剧烈涡旋振荡15秒,室温静置3分钟,然后在4 °C下以12,000 × g. 离心15分钟以分离各相。小心移取上层澄清水相,避免扰动中间相,并转移至新试管中。
通过向该水相中加入等体积的异丙醇来回收RNA。室温孵育10分钟后,将样品....
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CDCP1在鼻咽癌组织中的上调
采用实时定量PCR检测了7例鼻咽癌组织和6例鼻炎组织中CDCP1 mRNA的表达水平。结果显示,鼻咽癌组织中CDCP1 mRNA的表达水平显著高于鼻炎组织(P < 0.05,图1A)。此外,通过免疫组织化学染色检测CDCP1蛋白在组织中的定位及表达水平。结果表明,CDCP1蛋白在鼻咽癌组织中表达,主要定位于细胞膜和细胞质;而在鼻炎组织中表达水平较低或缺失(图1B)。这些结果提示,CDCP1在鼻咽癌组织中表达上调。
鼻咽癌细胞中 CDCP1 表达的调控
为研究 CDCP1 在鼻咽癌细胞中的功能,通过转染 CDCP1 过表达质粒和 CDCP.......
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本研究首次系统地探讨了CDCP1在鼻咽癌组织中的表达特征及其对肿瘤细胞生物学行为的影响,并初步阐明了CDCP1通过激活ERK1/2信号通路促进上皮-间质转化的分子机制。研究结果表明,CDCP1在鼻咽癌中发挥促肿瘤作用,为深入理解该疾病转移机制提供了新的实验依据。
本研究发现,CDCP1 在鼻咽癌组织中的表达显著上调,这与既往在肺癌和三阴性乳腺癌等肿瘤中的报道一致21,22。免疫组织化学染色进一步证实,CDCP1 蛋白主要定位于鼻咽癌细胞的细胞膜和细胞质中,这种定位与其作为参与信号转导的膜受体功能相符。值得注意的是,本研究的样本量较小(7 例鼻咽癌组织和 6 例鼻炎组织)。尽管 CDCP1 的表达差异已得到初步验证,但其表达水平与 TNM 分期、淋巴结转移及无病生存期等临床预后指标之间的相关性尚无法分析。未来的研究应在更大样本队列中系统评估 CDCP1 表达与患者预后的关系,以明确其作为鼻咽癌预后标志物的潜在价值。
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作者声明,本文的发表不存在任何利益冲突。本研究的开展未受到任何财务关系或个人关系的影响。
本工作由福建省自然科学基金项目(编号:2017J01271)资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| BCA 蛋白检测试剂盒 | Thermo Fisher, USA | 23225 | 用于蛋白质浓度测定 |
| Caspase-3 活性检测试剂盒 | Beyotime, China | C1403 | 比色法检测 Caspase-3 活性 |
| CDCP1 过表达质粒 | 未指明 | 未指明 | 用于 CDCP1 过表达转染 |
| CDCP1 一抗 | Abcam, USA | ab137706 | 用于免疫组化和 Western 印迹;稀释比例为 1:200(免疫组化)或 1:1000(Western 印迹) |
| CDCP1 siRNA | 未指明 | 未指明 | 用于 CDCP1 基因沉默 |
| CNE2 细胞系 | 中国典型培养物保藏中心(CCTCC),中国 | 未指明 | 人鼻咽癌细胞系 |
| DMEM 高糖培养基 | HyClone, USA | SH30243.01 | 细胞培养 |
| DMSO | Sigma, USA | D2650 | 用于 MTT 实验中溶解结晶 |
| E-cadherin 一抗 | Cell Signaling Technology, USA | 3195S | Western 印迹;稀释比例为 1:1000 |
| ERK1/2 一抗 | Cell Signaling Technology, USA | 4695S | Western 印迹;稀释比例为 1:1000 |
| GAPDH 一抗 | Abcam, USA | ab8245 | Western 印迹上样对照;稀释比例为 1:5000 |
| HK1 细胞系 | 中国典型培养物保藏中心(CCTCC),中国 | 未指明 | 人鼻咽癌细胞系 |
| Lipofectamine 2000 | Invitrogen, USA | 11668019 | 转染试剂 |
| 酶标仪 | BioTek, USA | 未指明 | 吸光度检测(MTT、Caspase-3) |
| MTT | Sigma, USA | M2128 | 细胞增殖实验;以 PBS 配制成 5 mg/mL |
| Opti-MEM | Gibco, USA | 31985070 | 用于转染的低血清培养基 |
| p-ERK1/2 一抗 | Cell Signaling Technology, USA | 4370S | Western 印迹;稀释比例为 1:2000 |
| PrimeScript RT Master Mix | Takara, Japan | RR036B | 实时 PCR 反转录试剂 |
| PVDF 膜 | Millipore, USA | IPVH00010 | 蛋白质转膜;孔径 0.45 μm |
| QuantStudio 5 实时荧光定量 PCR 系统 | Applied Biosystems, USA | A34322 | qPCR 检测 |
| RIPA 裂解缓冲液 | Beyotime, China | P0039 | 蛋白提取;完全 RIPA 裂解缓冲液 |
| 二抗(HRP 标记) | Dako, Denmark | 未指明 | 用于免疫组化和 Western 印迹 |
| 柠檬酸钠缓冲液 | 未指明 | 未指明 | 用于免疫组化抗原修复,pH 6.0 |
| TB Green Premix Ex Taq II | Takara, Japan | RR820A | qPCR 反应试剂;200 次反应 |
| 组织匀浆器 | IKA T10, Germany | 未指明 | 用于组织 RNA 提取时的匀浆 |
| TRIzol 试剂 | Invitrogen, USA | 15596026 | RNA 提取 |
| U0126 | Selleck, USA | S1102 | ERK1/2 特异性抑制剂;使用浓度为 10 μmol/L |
| Vimentin 一抗 | Cell Signaling Technology, USA | 5741S | Western 印迹;稀释比例为 1:1000 |