方法文章

经腹正中切口的大鼠回肠膀胱扩大术标准化操作方法

DOI：

10.3791/71123

⸱

2026年6月12日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Urology and Urosurgery, University Medical Center Mannheim, Medical Faculty of the University of Heidelberg, 2Department of General, Visceral, and Transplantation Surgery, Heidelberg University Hospital, 3Division of Intelligent Systems and Robotics in Urology (ISRU), German Cancer Research Center (DKFZ) Heidelberg, 4DKFZ Hector Cancer Institute at the University Medical Center Mannheim, 5Department of Urology, University Hospital Leipzig, 6Department of Plastic Surgery and Hand Surgery, TUM University Hospital Munich, 7ORSI Academy, Innotech

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本方案描述了一种标准化的大鼠肠代膀胱模型，采用带蒂、带血管并去管化的回肠补片，通过导管暂时性体外尿流改道，以实现可重复的膀胱扩大术。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

当保守治疗失败时，使用肠道节段进行膀胱扩大术仍是治疗低容量或顺应性差膀胱患者的核心重建手术。尽管该术式具有重要临床意义，但由于缺乏标准化且可重复的实验方案，难以在受控的临床前环境中可靠地模拟外科手术原则，从而限制了相关实验进展与深入研究。本文介绍了一种逐步实施的大鼠肠代膀胱扩大术（enterocystoplasty）实验方案，该方法采用带完整系膜蒂的去管化回肠补片作为带蒂皮瓣，用于扩大天然膀胱。手术步骤包括经腹正中切口开腹、可控地暴露并以固定缝线稳定膀胱、通过体外导管导尿管进行尿液转流、分离一段带有完整系膜蒂的短段回肠、去管化处理，以及与膀胱壁进行无张力吻合。本方案特别强调维持系膜血供、防止系膜蒂扭转、确保吻合口严密不漏水，以及保持导管通畅，这些因素对于手术成功和实验可重复性至关重要。在8只非存活大鼠中，采用高光谱成像（HSI）进行的代表性术中验证显示，在关键手术步骤后，肠道节段的组织氧合和灌注得以保留，支持该手术结束时移植物组织的存活能力。因此，本方案为大鼠肠代膀胱扩大术提供了一种标准化的实验方法，可用于可重复的外科手术实施。该模型未来的潜在应用方向包括代谢与电解质变化、感染易感性、黏液分泌，以及异型增生或恶性转化的研究，有待后续存活实验进一步探讨。

引言

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

正常的膀胱生理功能对于维持高质量的生活至关重要，因为有效的尿液储存和排泄对控制排尿、社会福祉以及整体健康具有关键作用。影响膀胱功能的疾病可能导致严重的疾病负担，包括尿失禁、反复感染、肾功能损害以及对日常生活的显著负面影响。

先天性和获得性膀胱疾病均可导致显著的功能障碍，当保守治疗和药物治疗无效时，常需进行外科干预。诸如后尿道瓣膜1、膀胱和泄殖腔外翻以及尿道上裂2,3等先天性畸形通常伴有低容量、低顺应性的膀胱，从而增加上尿路功能恶化的风险。同样，神经源性疾病如脊柱裂4、多发性硬化5和脊髓损伤6也常导致神经源性膀胱功能障碍，影响膀胱的储尿和排空功能。此外，结核病7和血吸虫病8等感染性病因可引起膀胱壁纤维化，降低膀胱顺应性，并易引发继发性并发症。在难治性病例中，膀胱扩大术是一种有效的治疗策略，可增加膀胱容量、降低膀胱内压、保护肾功能，最终提高生活质量并减少长期并发症。

根据美国泌尿外科学会（AUA）关于膀胱过度活动症的指南，对于膀胱容量减小、顺应性差或逼尿肌过度活动且对保守治疗无效的患者，应考虑行膀胱扩大术（肠代膀胱术）9。该手术最初由Tizzoni和Foggi于1888年在犬模型中描述10，随后于1899年由von Mikulicz改良并应用于人类11。迄今为止，肠代膀胱术仍是降低尿液储留压力、减轻与多种膀胱功能障碍（包括神经源性膀胱、膀胱外翻和后尿道瓣膜）相关的肾损伤及尿失禁风险的标准外科治疗方法12,13。

传统的肠代膀胱扩大术技术包括在冠状面或矢状面将膀胱切开至三角区，随后植入一段去管化的肠段12。回肠是最常使用的肠段，通常取自回盲瓣近端25-40 cm处12。当回肠不适用时，乙状结肠为首选替代方案12。

尽管该手术具有长期耐用性和较高的患者满意度14，但将胃肠道组织引入尿路会带来明显的缺点，包括代谢紊乱、膀胱结石形成以及恶性肿瘤风险升高15,16,17。

鉴于这些潜在的并发症，迫切需要开展对照研究，以探索其潜在机制、优化手术技术，并评估替代性增强材料。啮齿类动物模型为研究这些方面提供了一个结构化且可重复的环境，使研究人员能够分析增强术后发生的代谢适应，包括酸碱平衡和电解质紊乱。此外，该模型还允许对膀胱组织随时间推移的重塑过程进行观察，从而深入了解纤维化、尿路上皮再生以及增强节段的整合情况。同时，鉴于肠代膀胱术与恶性肿瘤风险升高相关，啮齿类动物模型为研究组织病理学的时序性变化以及识别癌变早期标志物提供了可能。重要的是，此类模型还有助于生物材料与组织工程应用的研究，有望推动开发具有更低致癌性和免疫原性风险的替代增强材料12。

尽管已有报道关于啮齿类动物及其他物种的实验性膀胱扩大模型，但目前尚缺乏一种可通过正中腹切开术在大鼠中实施回肠肠代膀胱术的可直接比较且标准化的逐步操作方案。早期的大鼠研究建立了经典的扩大膀胱成形术作为实验模型，并描述了多种变体技术，如浆肌层膀胱成形术和激光辅助肠代膀胱成形术18,19,20。后续研究进一步探讨了长期组织病理学和细菌学变化、肿瘤发生、转运生理学及功能结局，同时也探索了其他重建改良方法，如部分膀胱移植以及利用光动力学方法将肠黏膜替换为尿路上皮21,22,23,24,25,26,27。综合来看，这些研究表明大鼠膀胱扩大模型确实存在，但在研究范围上具有异质性，主要集中在可行性、生物学继发效应、生理学或特定重建改良方面18,19,20,21,22,23,24,25,26,27。因此，本研究的目的是提供一份详细的标准化操作指南，用于在大鼠中通过正中腹切开术实施肠代膀胱成形术。该方案已在非存活实验条件下建立。虽然本方案也可应用于需要长期观察的研究，但若用于存活实验研究，则可能需要进行调整，以包括术后恢复和纵向随访。此类应用可包括对功能结局、术后失败机制、随时间推移的组织再生或组织工程整合效果的评估。

本模型旨在大鼠体内可控地重现临床肠膀胱成形术的关键技术原理，同时确保其适用于标准化的实验操作。选择去管化的回肠补片，是因为去管化可降低肠道固有的收缩性，更真实地反映临床扩大术中常用的重建原则。采用带蒂、带血管的肠段可保留肠系膜灌注，并能在移植物制备期间及之后直接评估组织活力。通过导尿管（Foley导尿管）实现外置尿流改道，可在手术过程中为膀胱提供可控引流，并便于术中对重建肠段进行标准化评估。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本文所述所有动物实验均在经认证的设施内进行，并已获得德国卡尔斯鲁厄巴登-符腾堡州地区委员会机构动物护理与使用委员会（IACUC）的批准（35-9185.81/G-62/23）。实验动物的处理遵循机构规程，符合德国动物福利相关法律法规，同时遵守欧洲共同体委员会（2010/63/EU）及ARRIVE指南所规定的要求。实验所用雄性Sprague-Dawley大鼠（n = 8），购自Janvier Labs，年龄为8–12周，体重400 g，在使用前经过为期一周的适应性饲养。

1. 麻醉与镇痛

  1. 将动物放入诱导室，使用4 vol%异氟烷溶于100%氧气中，以5 L/min的流速诱导麻醉。
  2. 为实现分离麻醉、镇痛和镇静，在失去翻正反射后，皮下注射100 mg/kg的氯胺酮（10%溶液；按400 g体重计算相当于0.35 mL）和4 mg/kg的赛拉嗪（2%溶液1:10稀释；按400 g体重计算相当于0.75 mL）28,29,30,31。所有麻醉剂和镇痛剂均应根据mg/kg体重剂量给予。
    注意：所列注射体积仅为400 g体重大鼠的近似示例，需针对每只动物单独计算。
  3. 使用镊子夹捏脚趾，确认无明显疼痛反应以评估镇痛深度，并涂抹角膜软膏以防止角膜干燥。
  4. 通过皮下注射5 mg/kg的卡洛芬（5%溶液1:10稀释；按400 g体重计算相当于0.35 mL）实现额外镇痛。
  5. 术中根据需要通过新生儿面罩补充异氟烷以维持麻醉状态。
  6. 将动物置于设定为40°C的加热垫上进行术中体温管理。此外，可插入直肠温度探头监测体温，但非必需。
  7. 通过皮下注射37 °C等渗盐水提供围手术期和术后液体支持，剂量为25 mL/kg/小时（按400 g体重计算相当于10 mL），分次每20分钟注射一次。应在腹腔关闭后进行最后一次注射，剂量按通常预计剩余30分钟麻醉时间计算。

2. 手术区域与仪器准备

  1. 在擦洗台上准备好器械和材料，包括：
    无创准备镊子
    钝头奥尔霍尔特钳
    准备剪刀
    双针不可吸收单丝6-0缝线
    单针快速可吸收多丝4-0缝线
    20 G导管作为临时替代的弗利导管
    加湿的棉签
    纱布拭子
    等渗氯化钠溶液
  2. 按照先前发表的研究所述方法30,31，将动物固定在啮齿类动物手术暴露装置上。剃除腹部手术区域的毛发，并使用70%乙醇与含聚维酮碘或氯己定的消毒拭子交替进行三次环形擦拭消毒，从切口部位开始由内向外操作。重复该过程三次。
  3. 用无菌手术单覆盖动物，仅暴露手术区域。

3. 经腹正中切口手术入路

  1. 使用精细剪刀沿中线纵向切开腹白线，进行约 5 cm 的正中腹部剖腹手术，以进入腹腔。
  2. 使用解剖钩和湿润敷料牵开腹壁，暴露腹腔。

4. 小肠和膀胱的识别与准备（图1）

  1. 识别小肠，使用无创性分离镊和湿润的棉签轻轻游离出一段肠袢（图1A.1）。
  2. 将小肠袢贴近膀胱，以确定一段位置合适、长度约为12 mm的小肠节段用于扩大术（图1A.2）。
  3. 该节段应为回盲瓣近端至少2 cm处的第一个结构上合适的肠袢。
  4. 使用分离剪解剖膀胱周围结缔组织，游离膀胱（图1B）。
  5. 使用单头不可吸收单丝4-0缝线，在膀胱壁的3点、6点、9点和12点位置放置固定缝线（图1C.1–1C.5）。
  6. 用无创镊夹住膀胱顶部，使用解剖剪在固定缝线之间剪出一个约4 mm的横向缺损（图1D.1–1D.2）。
  7. 重新放置4根固定缝线，使其穿过切缘：依次牵拉每根缝线。每次操作一根缝线，将针从切口边缘绕行，从管腔侧紧贴边缘进针，然后穿出相邻的浆肌层，形成线环，牵拉并暴露切缘（图1E.1–1E.6）。

5. 外部尿流改道用导尿管福莱导管的放置与固定（图1）

  1. 将静脉套管（G20）经膀胱腔插入，并从管腔内侧穿过腹壁引至体外（图1F.1–1F.3）。
  2. 用镊子固定套管管体，同时取出金属内芯，将其作为简易的弗利导尿管使用（图1F.4–1F.5）。
  3. 为将弗利式套管管体固定于皮肤，使用不可吸收的单股4-0缝线穿过管体腔，并在距离体外开口适当安全距离处打结固定，以尽量降低后续移位的风险（图1G.1–1G.6）。
  4. 使用比初始套管大一号的另一根静脉套管（例如G18）的管部，向弗利式套管管体中注入生理盐水，以确认其通畅性（图1G.1–1G.9）。
  5. 使用快速可吸收的4-0多股缝线，将弗利式套管管体在膀胱内缝合固定于膀胱壁，缝合时与套管管体接头保持安全距离，以降低意外脱落的风险（图1H.1–1H.4）。
  6. 用镊子夹住套管管体接头，使用剪刀将其从导管上剪下分离（图1H.5–1H.7）。
  7. 将弗利式套管管体置入膀胱内（图1H.8–1H.9）。

膀胱扩大术手术步骤示意图，显示各操作步骤及所用器械。
图1：小肠与膀胱准备及体外尿流改道导管（Foley导管）的放置。（A）识别并靠近小肠与膀胱（A.1–A.2）。（B）通过腹膜分离游离膀胱（B.1–B.4）。（C）在膀胱顶部放置固定缝线（C.1–C.5）。（D）切开膀胱壁（膀胱切开术）（D.1–D.2）。（E）重新放置固定缝线（E.1–E.6）。（F）经膀胱切口置入用于体外尿流改道的导管（F.1–F.5）。（G）将导管外段固定于腹壁（G.1–G.9）。（H）固定导管尖端并完成其在膀胱内的最终放置（H.1–H.9）。（I）示意图总结上述准备过程及Foley导管的放置方式。粗虚线表示小肠，细虚线表示膀胱。黑色方块表示后续照片中放大显示的区域。请点击此处查看该图的放大版本。

6. 小肠节段的分离（图2）

  1. 将小肠袢置于无菌纱布上，评估其向膀胱方向的活动性，并选择一段长约 12 mm 的合适肠段（图 2A.1–2A.4）。
  2. 在保留肠系膜血供的同时，将选定的肠段从其余肠道上横行切断，并保持正确的方向，以防止血管蒂后续发生扭转（图 2B.1–1B.4）。
  3. 使用棉签轻轻挤出横断后两端肠管内的残留腔内容物（图 2C.1–2C.6）。
  4. 将小肠袢的两个相邻肠段向上翻起，使仅有选定的肠段保留在纱布上（图 2D–2E）。

显示肠吻合术操作步骤和缝线应用的外科技术进展示意图。
图2：用于膀胱扩增的小肠节段的识别与分离。（A）为膀胱扩增而游离并识别合适的小肠节段（A.1–A.4）。（B）将选定的小肠节段从其余肠袢中横断（B.1–B.4）。（C）清除肠腔内残留内容物（C.1–C.4）。（D）分离并定位剩余小肠袢的近端（口侧）和远端（肛侧）断端。（E）已分离的小肠节段，准备用于后续扩增手术。（F）总结节段选择与分离过程的示意图。粗虚线表示被分离的小肠节段。请点击此处查看该图的高清版本。

7. 肠段准备与膀胱扩大术（图3）

  1. 使用剪刀沿肠段的对系膜缘切开，形成一个去管化的补片，大小约为 12 mm × 8 mm（图 3A.1–3A.3）。
  2. 切除移植物新形成的角缘（图 3B.1–3B.3）。
  3. 使用双针6-0单股缝线进行小肠段的吻合。在12点钟位置，将针从膀胱壁外腔侧穿入内腔侧（图 3C.1–3C.2）。
  4. 将针从小肠段右下角从内腔侧穿出至外腔侧。确保双针缝线被拉出至约其中点位置，此点即为上端固定点（图 3C.3–3C.4）。
  5. 收紧缝线，使肠移植物贴近膀胱，导致该肠段发生约45°的逆时针旋转。在外腔侧打结（图 3D.1–3D.2），并将第二根针绕过肠段系膜，以便从两侧对移植物进行环形缝合（图 3E.1）。
  6. 开始膀胱扩大补片的环形吻合：依次在膀胱边缘采用由外向内的进针方式，随后在肠段采用由内向外的进针方式，将小肠段逐针缝合至膀胱缺损处，然后进行下一针。
  7. 依次松开固定缝线（图 3E.1–3E.15）。对小肠补片的缝合进针应略大于膀胱侧；但由于补片需要覆盖的长度明显更长，因此会保留一部分未缝合的小肠多余长度。
  8. 完成膀胱缺损的环形闭合后，将一端缝线打结固定。利用剩余缝线，以锥形（“尖帽状”）方式闭合肠段残余的游离部分，并将缝线打结（图 3F.1–3F.6）。
  9. 将膀胱复位至解剖位置，并重新安置肠道，确保肠段无扭转（图 3G.1–3G.2）。

手术操作序列，包括组织取样、肠段及示意图。
图3：小肠补片构建及膀胱扩大术的环周吻合。（A）小肠节段的游离与准备（移植物制备）（A.1–A.3）。（B）切除移植物的角缘部分（B.1–B.3）。（C）通过在移植物与膀胱开口之间放置锚定缝线开始吻合（C.1–C.4）。（D）固定锚定点以对齐移植物与膀胱切口边缘（D.1–D.2）。（E）将膀胱扩大补片与膀胱壁进行环周吻合（E.1–E.15）。（F）将剩余的小肠节段组织以圆锥形、尖顶状方式闭合（F.1–F.6）。（G）将器官复位至其解剖位置（G.1–G.2）。（H）示意图总结移植物制备及膀胱扩大吻合过程。粗虚线表示小肠节段，细虚线表示膀胱壁的开口，白色箭头表示缝针。请点击此处查看该图的放大版本。

8. 小肠端-端吻合术（图4）

  1. 使用剪成两段的双臂不可吸收单丝6-0缝线进行吻合。将针穿过两端肠管对系膜缘。暂不打结，采用降落伞技术，将夹钳置于肠管之间的缝线段上，以保持视野清晰（图4A.3–4A.6）。
  2. 在两端肠管的系膜缘处放置另一缝线，并以类似方式用夹钳固定（图4A.7–4A.10）。
  3. 在两端小肠前壁各放置两针缝线，以便后续关闭，并用夹钳固定缝线末端（图4B.1–4B.4）。
  4. 将两端肠管向上翻转，以暴露小肠后壁。类似于前壁操作，在后壁放置两针缝线，并用夹钳固定缝线末端（图4C.1–4C.4）。
  5. 所有缝线放置完毕后，依次打结固定全部六根缝线（图4D.1–4D.6）。
  6. 使用2–3针间断的快速可吸收多丝4-0缝线关闭系膜缺损，以防止术后发生疝（图4F.1–4F.8）。

外科吻合过程；肠道修复；分步操作；医学示意图。
图4：小肠端对端吻合及肠系膜缺损关闭。（A）在对系膜缘和系膜缘放置对位缝线（A.1–A.10）。（B）放置两条前壁近似缝线（B.1–B.4）。（C）暴露后壁并放置两条后壁近似缝线（C.1–C.4）。（D）依次打结全部六条缝线以完成吻合（D.1–D.6）。（E）扩大的端对端吻合示意图（E.1–E.2）。（F）使用间断缝线关闭肠系膜缺损，以防止内疝形成（F.1–F.8）。（G）小肠端对端吻合的示意图。请点击此处查看该图的放大版本。

9. 终末步骤与注意事项

  1. 根据先前发表的方案29,30,31，在无菌条件下以多层方式关闭腹壁。
  2. 对于非存活性操作或随访后的计划性终止，应在深度麻醉下通过快速心脏切除、颈椎脱位或断头器斩首法对动物实施安乐死。
  3. 如需要，可切除膀胱以进行后续解剖学评估（例如，评估膀胱扩大部位及肠-膀胱吻合口）、生物分子分析或组织病理学成像。
  4. 为此，应在直视下仔细逐步解剖，整块切除扩大的膀胱，轻柔松解周围粘连，识别原生膀胱、扩增的肠段补片及吻合边界，根据需要切断远端膀胱出口及邻近的肠系膜或肠道附着处，同时避免对样本造成压迫或变形，以保持组织结构完整性，便于后续分析。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

为确认该方案后组织的存活能力，在八只大鼠中术中评估了组织氧合和灌注情况（表1）。在肠囊成形术前，对小肠进行高光谱成像（HSI），以可视化组织氧饱和度（StO₂）和灌注情况（NIR）（图5A.1）。作为阴性对照，通过夹闭主动脉诱导最大程度的低灌注（图5A.2）。在关键手术步骤后，重复对代表性组织区域进行高光谱成像，以评估灌注的持续性（图5B.1–5B.4）。

该可视化定量分析展示了腹部开放后小肠的生理状态组织氧合与灌注情况（图 5C.1–5C.2，“sb physiological”）。相比之下，诱导的低灌注状态导致氧饱和度和组织灌注均出现具有统计学意义的下降（

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本研究提供了一种可重复的大鼠肠囊膀胱成形术外科操作方案，该方案采用正中腹切口、体外插管以及去管化的回肠节段植入。该技术遵循Tizzoni和Foggi所描述的膀胱扩容术原则，并通过结合精确的麻醉、无菌准备、外置插管进行尿液转流以及获取带血管的小肠补片等方法，将其适配于啮齿类动物模型。

本方案已在非存活模型中实施并验证。然而，该方案建立了一个可用于膀胱扩容的转化研究平台，研究人员应能将其调整应用于存活模型，以进行长期观察。长期功能学结果的评估仍有待未来研究进一步探讨。

本方案可通过多种改进来拓展其应用范围。尽管当前方案仅限于终末期设置，但它可为未来的生存研究提供技术基础。此类改进需要增加围手术期和术后措施，包括标准化的术后恢复、临床监测、镇痛、感染预防、尿液引流管理、预设的导管拔除标准以及人道终点。在生存实验条件下，膀胱导管需妥善固定，定期监测，并仅在动物充分恢复且无明显渗漏或血尿的情况下方可移除。对于组织再生、延迟的肠-膀胱整合或肠代膀胱术失败机制等长期应用，还需设定预定义的随访时间点，并进行功能学、组织学以及适当情况下的影像学...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

未声明任何利益冲突。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者们衷心感谢由巴登-符腾堡州科学、研究与艺术部（MWK）以及德国研究基金会（DFG）通过资助项目 INST 35/1314-1 FUGG 和 INST 35/1503-1 FUGG 支持的数据存储服务 SDS@hd。此外，作者们衷心感谢德国海德堡国家肿瘤疾病中心（NCT）通过其结构化博士后项目和外科肿瘤学项目提供的支持。我们还感谢巴登-符腾堡州议会批准的州级资金对海德堡-曼海姆创新园区健康与生命科学联盟结构化博士后项目的支持，该项目支持 Alexander Studier-Fischer 参与“健康领域的人工智能（AIH）”研究——该项目由德国癌症研究中心（DKFZ）、欧洲分子生物学实验室（EMBL）、海德堡大学、海德堡大学医院、曼海姆大学医院、中央心理健康研究所和马克斯·普朗克医学研究所以及合作开展。此外，我们感谢曼海姆大学医学中心 DKFZ HECTOR 癌症研究所提供的支持。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
无创持针钳AesculapFB395RDE BAKEY ATRAUMATA 无创钳，直型
钝头奥尔霍尔特钳AesculapBJ012R婴儿米克斯特组织钳与结扎钳，弯型，180 mm
用于冲洗和分流的 Foley 导管管芯Mdk Mart23-CA-CD-UL-CD18 号导管（仅使用管身冲洗分流导管）
卡洛芬cp pharma115卡洛芬 0.5%（5% 浓度为 50 mg/mL，按 1:10 稀释）（Carprosol）
非无菌棉签AmazonASIN: B0FPDB8ZGS非无菌脱脂棉签（存活实验需高压灭菌）
快速可吸收聚乳酸缝线 4-0COVIDIENSV-494单针带线可吸收聚乳酸多股外科缝线，配 P-13 针
固定杆legefirm‎500343896用作 Y 形金属固定杆的音叉
Foley 导尿管B. Braun4242010-0220 号 50 mm Introcan Safety 2 导管作为分流导管
无菌纱布块MedrullASIN: B09164D1JG无菌纱布块
加热垫Royal GardineerIP67Royal Gardineer 加热垫 S 型，20 瓦
高光谱成像相机系统Diaspective VisionTIVITA Tissue Halogen用于验证的高光谱成像系统
异氟烷Piramal Critical CarePZN / EAN 09714675 / 4150097146757100% 异氟烷 250 mL
异氟烷蒸发器UNO ROESTVASTSTAAL BV180000002异氟烷蒸发器
等渗氯化钠溶液B. BraunASIN: B007PZJOQ40.9% 氯化钠溶液
氯胺酮cp pharma1202氯胺酮 10%（100 mg/mL）
金属导管BD (Beckton, Dickinson)301300BD Microlance 3 20 号导管，用作分离钩
新生儿面罩asia connectionME03016-0新生儿面罩 #0 号
不可吸收单股缝线 4-0COVIDIENSP-670单针带线不可吸收聚丙烯单股外科缝线，配 C-16 针
不可吸收单股缝线 6-0COVIDIENVP-733-X双针带线不可吸收聚丙烯单股外科缝线，配两根 CV-22 针
眼科软膏Bayer Vital GmbH15786815% 泛醇
塑料灌注管M. Schilling GmbHS702NC150COEX 连接管 150 cm
手术剪AesculapBC177RJAMESON 手术剪，弯型，精细款，钝头/钝头，150 mm（6"）
大鼠麻醉诱导室wpiincEZ-1785麻醉诱导室
钢板Maschinenbau Feld GmbHC010206镀锌钢板，40 × 50 cm，厚度 4.0 mm
赛拉嗪cp pharma1206赛拉嗪 0.2%（2% 浓度为 20 mg/mL，按 1:10 稀释）（Xylavet）

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

相关文章