本方案概述了完整的小鼠嗅觉神经系统的解剖学复杂性保存流程。本文详细描述了包括解剖、组织制备和成像在内的完整操作流程。该方案可用于在正常或异常条件下研究嗅觉系统,包括其自然修复状态。
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本方案概述了完整的小鼠嗅觉神经系统的解剖学复杂性保存流程。本文详细描述了包括解剖、组织制备和成像在内的完整操作流程。该方案可用于在正常或异常条件下研究嗅觉系统,包括其自然修复状态。
在三维(3D)成像时代,传统的免疫组织化学技术在病理学和复杂人体解剖学研究中已显示出显著局限性。由于仅能分析薄层切片,较大结构和组织架构的关键特征可能丢失重要的上下文信息,从而导致不完整或误导性的解释。尽管二维(2D)切片有助于对组织结构形成基本认识,但不足以呈现生物组织真实的三维结构。
目前,越来越多的研究在多个解剖区域采用分离完整解剖单位的技术——如铺片、整体装片或表面装片制备方法——并结合高分辨率荧光显微镜进行观察。这些方法能够更全面地可视化和解析组织结构的排列方式。这一点在嗅觉神经系统中尤为重要,因为要阐明其强大再生能力背后的复杂细胞机制,必须依赖完整的全层组织背景。而薄切片则可能遗漏一些尚未明确的关键病理生理特征。
鉴于这些局限性以及对驱动嗅觉再生的细胞相互作用认知尚存空白,开发一种能够完整保留全层组织复杂性的精细整体封片技术至关重要。将整个嗅黏膜以全层样本形式分离,并结合优化的抗体渗透方案。通过高分辨率成像(EVIDENT SpinSR)和三维重建,实现了对细胞间相互作用的精确可视化 体内.
嗅觉神经系统(ONS)是研究神经再生机制的一个独特且成熟的模型,因为它在整个生命过程中都保持着神经元更新的独特能力1。然而,由于我们对嗅觉系统中细胞行为的理解仍存在显著空白,这种神经修复能力在临床上的转化潜力仍然有限2,3,4。包括初级嗅觉神经元、嗅鞘细胞(OECs)和神经周成纤维细胞在内的ONS细胞反应及其解剖结构已在多项动物研究中被描述,这些研究依赖于超薄(<2 µm)组织切片技术,并结合对啮齿类动物ONS施加严重物理损伤的模型1,2。这些研究通常在损伤后10天处死动物,因而仅能提供一个狭窄的时间窗口,反映神经损伤过程中该组织广泛而复杂重塑的某一特定时刻2。这些研究报道了轴突死亡后,OECs和成纤维细胞会持续存在,并形成沿损伤路径延伸的连续通道。
尽管具有一定的信息量,但由于上述诸多局限性,所采用的方法仅在浅表层面提供了嗅神经系统的低分辨率概念性概述,最终无法对完整嗅神经系统内的真实细胞结构进行综合评估3。因此,一些关键的空间关系可能被忽略。
三维组织结构的保存对于精确的解剖学和细胞分析至关重要,并已成功应用于多种器官和病理研究4,5,6,7,8,9,10,11,12。整体染色方法已被用于绘制嗅黏膜内的神经组织结构13,14,然而,包含完整固有层在内的全层嗅神经上皮结构中细胞相互作用的可视化尚未实现。
本研究建立了一种利用小鼠模型的工作流程,结合整装组织处理、免疫染色、高分辨率成像和三维重建技术,实现对嗅神经上皮结构的详细分析。该方案旨在弥补现有已发表方法中的不足,能够完整保存包括固有层在内的全层嗅黏膜,从而支持细胞间相互作用的研究。值得注意的是,这种优化的组织采集与处理方法可适用于多种嗅觉系统模型,并可与其他模型联用。
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所有涉及动物和转基因修饰细胞的实验均经格里菲斯大学生物安全委员会(NLRD/003/2020_var3)和格里菲斯大学动物伦理委员会(MHIQ/04/23/AEC)批准,并遵循澳大利亚联邦基因技术监管机构(OGTR)的指南进行。
注意:本研究共使用了15只成年实验小鼠(8–9周龄),雌雄均有。具体为S100β-DsRed转基因小鼠,其所有嗅鞘细胞(OECs)在S100β启动子的调控下表达明亮的红色蛋白DsRed。S100β属于一类广泛存在的钙结合蛋白家族,通常在中枢神经系统中的胶质细胞(如OECs)中表达。该模型适用于本实验目的,可利用内源性荧光信号轻松定位目标细胞群。S100β-DsRed转基因小鼠此前已被成功构建,已有研究表明,与固定组织分析中的免疫组织化学方法相比,使用此类转基因小鼠可显著提高OECs的检测灵敏度15,16,17,18。
1. 头部采集与组织固定
2. 整体组织采集
3. 优化的染色方案
注意:常用的染色方案通常针对薄至中等厚度的切片(例如,不超过 50 µm)进行优化。因此,该方案需要针对更厚的组织进行调整。
关键步骤包括在整个染色过程中使组织悬浮于离心管内,并在试剂渗透时将离心管置于滚筒上缓慢旋转。因此,染色步骤并未将组织直接放置于成像载玻片上进行。组织首先在悬浮状态下完成染色,随后再转移至成像载玻片上进行封片。这些细节确保了组织不会发生折叠,同时试剂和抗体能够充分渗透整个组织区域。
4. 载玻片制备
5. 图像采集与后期处理
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本文所展示的整体组织方法能够完整地分离并保存嗅黏膜。在我们的研究中,重点是理解宏观(完整的解剖结构视图)和微观(细胞水平)尺度上的细胞与解剖学变化。
整体组织染色方法使我们能够同时收集上皮和固有层区室,并保持轴突束、嗅鞘细胞(OECs)和成纤维细胞——即我们关注的细胞类型——之间的空间关系。该方法获得了大范围、连续的数据集,完整覆盖了黏膜组织的全层厚度和广阔表面积(图3),使我们能够观察到复杂的细胞结构及其相互作用的细节(图3),并比较在完整状态(n = 3)(图3A、B)与损伤状态(n = 12)(图3C、D)下这些结构的变化情况。
通过将这种优化的组织处理和染色方法与高分辨率共聚焦显微镜相结合,我们获得了覆盖更广泛黏膜区...
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近几十年来,三维技术时代逐渐拉开序幕,科学领域涌现出许多创新方法。例如,得益于复杂的整体成像技术与高分辨率荧光显微镜的结合发展,三维重建方法得以实现,从而促进了对多种全层组织组织架构的深入理解。这些三维可视化技术已被用于解析人体多个结构,如血管、腺体以及常见肿瘤4,5,6,7,8,9。此外,研究人员已收集到关于病理结构与正常结构差异的信息,例如在完整小鼠大脑中的研究结果10,11,12。该方法被认为是在深入理解各类生物系统方面至关重要的一步,有助于更全面地认识细...
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作者无任何利益冲突需要披露。
本工作获得了Clem Jones基金会、Perry Cross脊髓研究基金会和昆士兰机动车事故保险委员会对JSTJ和RR的资助,RR还获得了国家伤害保险计划昆士兰研究员项目的支持,FO获得了Perry Cross脊髓研究基金会研究员项目的支持。本项目的部分研究得到了“格里菲斯大学研究生研究奖学金(GUPRS)”和“格里菲斯大学国际研究生研究奖学金(GUIPRS)”对FO的资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 牛血清白蛋白(BSA) | Sigma-Aldrich | A3294-50G | 免疫组织化学 |
| Adobe Illustrator | 版本 28.5 | ||
| 抗-beta III 微管蛋白抗体 - 神经元标志物 | Abcam | ab18207 | |
| 抗-PDGFR β 抗体 [APB5] | Abcam | ab91066 | |
| 双苯并咪唑 H 33342 三盐酸盐 | Sigma Aldrich | 14533 | |
| 24×50 mm 盖玻片,1.5 号,100 片/盒 | Bio-strategy | EPBRCS245015GP | 免疫组织化学 |
| 驴抗兔 IgG (H+L) 高度交叉吸附二抗,Alexa Fluo 488 | Thermo Fisher | A-21206 | |
| Dumont #15A 骨剪 - 环氧涂层 | Daniels Health Laboratory Products P/L | 11215-02 | 组织解剖 |
| Dumont #7 镊子 - 生物学/Dumostar | Daniels Health Laboratory Products P/L | 11297-10 | 组织解剖 |
| 羊抗大鼠 IgG (H+L) 交叉吸附二抗,Alexa Fluor™ 647 | Thermo Fisher | A-21247 | |
| Imaris 软件 | Imaris | 版本 9.5.0 | 成像 |
| Mayo 解剖剪 | ProSciTech | 420SS | 组织解剖 |
| 多聚甲醛 | Sigma-Aldrich | P6148-500G | 组织处理 |
| 磷酸盐缓冲液,无菌 PBS 片剂(PBS) | Thermo Fisher Scientific | 18912014 | 组织处理 |
| ProLong Glass 抗荧光淬灭封片剂 | Thermo Fisher Scientific | P36980 | 免疫组织化学 |
| 手术刀片 #23 | Scalpel Blades Swann Morton | COS240B | 组织解剖 |
| 手术刀柄 #4 | ProSciTech | T134 | 组织解剖 |
| 叠氮化钠 | Sigma-Aldrich | S2002-25G | 组织处理 |
| 蔗糖 | Chem-Supply | 57-50-1 | 组织处理 |
| TOMO 黏附载玻片 | ProSciTech | GEMS63705-09 | 免疫组织化学 |
| 吐温 X-100 | Sigma-Aldrich | X100-100mL | 免疫组织化学 |
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