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资料来源:惠特尼·斯旺森1，2，弗朗西斯·萨亚斯塔德2，3和托马斯·格里菲斯1，2，3，4
1明尼苏达大学泌尿科，明尼阿波利斯，MN 55455
2明尼苏达大学明尼阿波利斯分校免疫学中心，MN 55455
3明尼苏达大学明尼阿波利斯分校微生物学、免疫学和癌症生物学研究生课程，MN 55455
4共济会癌症中心，明尼苏达大学明尼阿波利斯分校，MN 55455
酶相关免疫吸附测定 （ELISA） 通常用于测量生物样品中抗原、抗体、肽、蛋白质、激素或其他生物分子的存在和/或浓度。它极其敏感，能够检测低抗原浓度。ELISA 的敏感性归因于其检测单个抗原-抗体复合物 （1） 之间的相互作用的能力。此外，加入酶结合的抗原特异性抗体，可以将无色基质转化为色化或荧光产物，由板读取器检测并轻松定量。与已知感兴趣的抗原的定子量生成值相比，可以确定实验样品中相同抗原的浓度。不同的ELISA方案已经适应了测量各种实验样品中的抗原浓度，但它们都具有相同的基本概念（2）。选择 ELISA 的类型执行，间接，三明治，或竞争，取决于许多因素，包括要测试的样品的复杂性和可用的抗原特异性抗体。间接 ELISA 通常用于确定免疫反应的结果，例如测量样品中抗体的浓度。三明治ELISA最适合分析复杂样品，如组织培养上生或组织解液，其中分析物或感兴趣的抗原是混合样品的一部分。最后，当只有一种抗体可用于检测感兴趣的抗原时，竞争ELISA最常使用。竞争的 ELISA 也可用于检测只有单个抗体表位的小型抗原，该表位由于阻抗而无法容纳两种不同的抗体。该协议将描述间接、三明治和竞争性ELISA检测的基本程序。
间接ELISA测定通常用于测量血清或杂交瘤培养液中抗体的含量。间接 ELISA 测定的一般程序是:
三明治ELISA测定法与间接ELISA测定不同，该方法不涉及涂覆纯化抗原的板。相反，"捕获"抗体用于涂覆板的孔。抗原被"夹在"捕获抗体和第二个"检测"酶结合抗体之间 - 两种抗体对同一抗原是特定的，但在不同的表位 （3）。通过与捕获抗体/抗原复合物结合，检测抗体留在板中。单克隆抗体或多克隆抗血清可用作捕获和检测抗体。三明治ELISA的主要优点是，样品在分析前不必经过纯化。此外，测定可能相当敏感 （4）。许多市售ELISA试剂盒都是三明治品种，并使用经过测试的匹配抗体对。三明治 ELISA 测定的一般程序是:
大多数市售三明治ELISA试剂盒都带有酶结合检测抗体。在无酶结合检测抗体的情况下，可以使用二次酶结合抗体，用于检测抗体。二次抗体上的酶的作用相同，即将无色基质转化为致色或荧光产物。例如，上述二次酶结合抗体更希望用于由一名已经产生自己单克隆抗体的调查员开发的"自制"三明治ELISA。使用二级酶结合抗体的一个缺点是，确保它只与检测抗体结合，而不是捕获抗体与板结合。这将导致在所有井中产生可测量的产品，无论是否存在抗原或检测抗体。
最后，利用竞争的ELISA检测检测可溶性抗原。它执行简单，但只有当纯化抗原有相对大量的可用时，它才适用。竞争 ELISA 测定的一般程序是:
此检测中的"竞争"来自以下事实:步骤 3 中使用的测试样本中更多的抗原将导致可用于与油井抗原涂层结合的抗体较少。因此，测定结束时井中致色/含氟产物的强度与测试样品中存在的抗原量成反比。
任何类型的 ELISA 中的关键组成部分是已知浓度的定子标准，该标准将允许用户确定测试样品中存在的抗原浓度。通常，一系列水井被指定为创建标准曲线，其中已知数量的纯化重组蛋白以递减量添加到井中。当这些孔与测试样品同时处理时，用户可以从微板读取器获得一组已知蛋白质浓度的吸收率值参考集，以便与测试样品的吸光值一致。然后，用户可以计算一个标准曲线，测试样本可以进行比较，以确定感兴趣的蛋白质数量。标准曲线还可以确定用户稀释的精度。
最后，上面列出的每种 ELISA 类型中的最后一步要求添加基板。基材转化为产物的程度与井中酶的含量直接相关。马萝卜过氧化物酶 （HRP） 和碱性磷酸酶 （AP） 是发现与抗体结合的最常见酶。正如所料，有许多基质可用于产生色化或荧光产物的酶。此外，基材具有一系列灵敏度，可提高测定的整体灵敏度。在选择要使用的基板类型时，用户还必须考虑到在实验结束时可用于读取板的仪器类型，以及相应的酶结合抗体。
HRP常用的致色基质包括2，2'-Azinobis [3-乙苯甲酰胺-6-硫酸]-二氧化硅盐（ABTS）和3，3'，5，5'四甲基苯甲胺（TMB），而p-硝基磷酸（PNPP）用于AP。分别生产水溶性绿色和蓝色反应产物。绿色 ABTS 产品具有两个主要吸光峰值，410 和 650 nm，而蓝色 TMB 产品在 370 和 652 nm 时最佳检测。ABTS 和 TMB 的颜色在添加酸性停止溶液后变为黄色，最好在 450 nm 处读取。ABTS 的颜色开发速度很慢，而 TMB 的颜色开发速度很快。TMB 比 ABTS 更敏感，如果酶反应过长，可能会产生更高的背景信号。PNPP 在 AP 转换后产生黄色水溶性产品，在 405 nm 处吸收光线。
1. 间接ELISA
间接ELISA是一种由二次结合抗体识别的主要抗原特异性抗体。以下协议是间接 ELISA 方法的示例，其中对受甲型流感病毒 （IAV） 感染的小鼠的血清样本进行 IAV 特异性 IgG 抗体测试。此示例的一个优势是，可以使用不同的二级抗体来识别所有抗体等型或特定等型（例如 IgG）。
将抗原涂覆到微孔板
阻塞
使用原抗体孵育
用二次抗体孵育
检测
2. 三明治ELISA
在此 ELISA 版本中，实验样本被"夹在"未结合的捕获抗体和结合检测抗体之间，这两种抗体都特定于同一蛋白质，但位于不同的表位上。在下面的三明治 ELISA 示例中，使用从已知标准重组人 TNF® （在浓度为 75 pg/mL） 的 2.5X 序列稀释中生成的标准曲线在未知样本中确定人类 TNF® 的浓度。
涂层捕获抗体到微孔板
阻塞
添加含有测试样品的抗原
添加酶结合检测抗体
检测
3. 有竞争力的ELISA
竞争 ELISA 的步骤不同于间接和三明治 ELISA 中使用的步骤，主要区别是样品抗原和"外接"抗原之间的竞争结合步骤。样品抗原与未标记的原抗体一起孵育。然后，这些抗体抗原复合物被添加到ELISA板中，ELISA板已经预涂了相同的抗原。潜伏期后，任何未结合的抗体被冲走。可用于结合井中抗原的游取抗体量与原始样品中的抗原量之间存在反比相关性。例如，具有丰富抗原的样品将具有更多的抗原原抗体复合物，留下很少未结合的抗体与ELISA板结合。然后，将原抗体特有的酶结合二级抗体添加到孔中，然后加入基质。
将抗原涂覆到微孔板
阻塞
与原抗体的孵育样品（抗原）
向井中加入抗原抗体混合物
添加二级抗体
检测
酶相关的免疫吸附测定，或ELISA是一种高度敏感的定量测定，通常用于测量分析物（如细胞因子和抗体）在生物样品中的浓度。这种测定的一般原则包括三个步骤:从捕获或固定在微板上的目标分析剂开始，然后通过目标特异性检测蛋白检测分析剂，最后，酶反应，其中偶联酶将其基质转化为彩色产物。基于不同的捕获和检测方法，ELISA 可以有四种类型:直接、间接、三明治和竞争。
对于直接ELISA，目标抗原首先结合到板，然后由特定的检测抗体检测。这种方法通常用于筛选特定抗原的抗体。间接 ELISA 用于检测样品中的抗体，以量化免疫反应。板首先涂有特定的捕获抗原，使目标抗体固定不动，然后使用第二种抗体检测这种抗原抗体复合物。
在三明治ELISA的情况下，靶向酶是一种抗原，利用捕获抗体在板上捕获，然后被检测抗体检测，从而形成抗体-抗原-抗体三明治。此方法可用于测量混合样品中抗原的浓度。
当目标抗原只有一种抗体可用时，使用竞争 ELISA。板首先涂有纯化抗原。同时，含有抗原的样品与抗体预先孵育，然后加入板中，使任何游置的抗体分子与固定抗原结合。来自板的信号越高，样品中的抗原浓度越低。在所有四种类型的ELISA中，直接、间接、三明治和竞争，检测抗体要么直接与酶结合，要么可以通过另一种抗体或蛋白质与酶间接相关。
通常用于反应的酶是马萝卜过氧化物酶或碱性磷酸酶及其各自的基质，都产生可溶性，有色产品，可以使用板读取器测量和量化。在本视频中，您将观察如何执行间接 ELISA、三明治 ELISA 和竞争 ELISA，然后从间接和三明治 ELISA 方法量化目标解毒剂的示例。
第一个实验将演示如何使用间接ELISA来确定从流感感染小鼠获得的血清中是否存在抗流感病毒抗体。
首先，在96孔ELISA板的每个孔中加入50微升的纯化抗原——在这种情况下，每毫升纯化A/PR/8流感病毒2毫克。接下来，用胶粘剂盖覆盖板，并在4摄氏度下孵育，使抗原与板结合。第二天，通过在水槽上轻拂板来去除涂层溶液。接下来，通过在每个孔中加入200微升的阻塞缓冲液，将5%的驴血清加入1XPBS-来阻断涂布井中剩余的蛋白质结合位点。在室温下，让盘子孵育至少2小时。孵育后，取出阻塞缓冲液，然后通过加入含有1%补间-20的1X PBS的200微升洗板。再次将板轻拂水槽以取出洗涤液。
然后，通过在新鲜管中加入460微升的PBS，然后加入40微升的血清，使1至12.5微液稀释，制备测试样品。然后，将300微升的PBS添加到第二管中，然后加入100微升的第一次稀释。继续此串行稀释范围，直到获得稀释 1 到 204，800 的最终样品。将连续稀释的血清样品加入井中。用胶粘剂盖板盖住盘子，在室温下孵育一小时。接下来，将板轻拂到水槽中，然后通过加入含有 1% 补间-20 的 200 微升 1X PBS 来清洗板。再次，轻拂盘子以取出洗涤液。
现在，在每个孔中加入100微升的酶结合二级抗体，该抗体是马萝卜过氧化物酶，或HRP，结合驴抗小鼠二次。"在室温下孵育板一小时，轻拂板以去除多余的液体。用含有 1% 补间-20% 的 1X PBS 清洗板，然后以每毫升 1 毫克的浓度将 100 微升指标基板涂抹到每个孔。在室温下用基板孵育5至10分钟。在此示例中，无色 3，3'、5，5' - 四甲基苯甲酸（TMB）基板在存在 HRP 时变为蓝色。10分钟后，加入100微升2N硫酸，停止酶反应。样品将变成黄色。
在加入停止溶液的 30 分钟内，将板插入微孔板读取器中，以适当的波长读取板，以确定孔的吸光度。
要开始三明治ELISA，板必须涂上纯化捕获抗体。为此，在96孔ELISA板的每个孔中，以每毫升1-10微克的浓度添加100微升捕获抗体。接下来，用粘合板盖盖板，然后在 4 摄氏度下孵育板过夜。孵育后，通过在水槽上轻拂板来去除涂层溶液。
现在，通过在井中加入200微升5%的脱脂干牛奶，阻断涂布井中剩余的蛋白质结合点位。在室温下孵育板至少2小时。接下来，取出阻塞缓冲液，然后用含有 1% 补间-20 的 1X PBS 清洗水井。将盘子轻拂在水槽上，取出洗涤液。现在，将100微升的测试样品加入井中，用粘合剂盖密封板，然后在室温下孵育2小时。孵育后，将盘子轻拂水槽，然后用含有1%补间-20的200微升1X PBS清洗孔。轻拂水槽上的盘子，取出洗涤液，然后将100微升的酶结合检测抗体添加到井中。
用粘合剂盖密封板。将盘子留在室温下孵育2小时。孵育后，通过轻拂水槽上的板来去除未结合的检测抗体，用含有1%补间-20的200微升1X PBS清洗孔。接下来，以每毫升1毫克的浓度加入100微升的指标基板，并在室温下孵育5至10分钟。10分钟后，在孔中加入100微升2N硫酸，然后在微孔板读片器中加入停止溶液后30分钟内读取板，从而停止酶反应。
为了执行具有竞争力的 ELISA，首先用 100 微升纯化抗原在 96 孔 ELISA 板上的孔中涂上 100 微升的纯化抗原，浓度为每毫升 1-10 微克。用粘合板盖盖住板，然后在 4 摄氏度下孵育过夜。之后，通过轻拂水槽上的板，从井中取出未结合的抗原溶液。
接下来，通过在PBS中为每个井中加入200微升的阻断缓冲液，阻断涂布井中剩余的蛋白质结合位点。在室温下孵育板至少2小时。在堵住油井时，将抗原抗体混合物制备为1。5毫升管，通过在测定中为每个井添加150微升样品抗原到150微升原抗体。在37摄氏度下孵育这种混合物1小时。现在，通过在水槽上轻拂板，从井中取出阻塞缓冲液。然后，用含有Tween 20的1X PBS清洗水井，然后加入100微升的抗原原抗体混合物样品。
让盘子在37摄氏度下孵育一小时。接下来，将板轻拂在水槽上，然后用含有 1% 补间-20 的 1X PBS 清洗孔，以去除任何未结合的抗体，从而去除样品混合物。在每个孔中加入100微升酶结合的二级抗体，并在37摄氏度的温度下孵育板一小时。之后，用含有1%补间-20的1X PBS清洗板，然后向每个孔中加入100微升的基板溶液。等待 5-10 分钟。10分钟后，加入100微升2N硫酸，停止酶反应，然后在加入停止溶液后的30分钟内测量微孔板读取器中的吸光度。
在半定量间接ELISA测定中，通过读取板读器中每口孔在405纳米处的吸光度，确定甲型流感病毒抗体在甲型流感小鼠血清序列稀释样本中的存在。此原始数据将导出到跨页工作表以进行计算。在这个实验中，连续稀释的血清样本，范围从1 - 12.5，到1 - 204，800，重复在三重。
因此，为了分析数据，通过添加每个稀释的所有值并将总和除以 3 来计算每组三元组的平均吸收率值。一旦确定每组三元数的均值，就针对串行稀释绘制平均 OD450 读数。随着血清被稀释，OD读数减少，表明在稀释程度较低的样品中发现的抗体较少。在定量三明治ELISA中，将已知标准的稀释物（本例中重组人类TNFalpha）添加到96孔板中，并与未知样品一起读取。
为了创建标准曲线，计算了已知浓度的每组读数的平均吸收率值。然后，在 y 轴上绘制平均吸收值，与 x 轴上的已知蛋白质浓度绘制。通过图形中的点添加最佳拟合曲线。
生成标准曲线后，通过首先计算测试样品的平均吸收值，可以确定测试样品中的 TNFalpha 蛋白质量。在此示例中，测试样本给出 OD450 读数为 0.636 和 0。681. 加上这些值，将总和除以2，平均为0.659。从标准曲线图上的 y 轴中，将水平线从此吸收值扩展到标准曲线。在交点，将一条垂直线延伸到 x 轴并读取相应的浓度，在此测试样本中，该浓度对应于每毫升 38.72 象形图的 TNFalpha 浓度。
酶联免疫吸附测定法 （ELISA） 是一种高灵敏度的定量测定法，通常用于测量生物样品中分析物（如细胞因子和抗体）的浓度。该测定的一般原理包括三个步骤：首先在微板上捕获或固定目标分析物，然后通过靶标特异性检测蛋白检测分析物，最后是酶反应，其中偶联酶将其底物转化为有色产物。根据不同的捕获和检测方法，ELISA 可以分为四种类型：直接、间接、夹心和竞争。
对于直接 ELISA，靶抗原首先结合到板上，然后通过特异性检测抗体进行检测。这种方法通常用于筛选特定抗原的抗体。间接 ELISA 用于检测样品中的抗体，以量化免疫反应。首先在板中包被特异性捕获抗原，该抗原固定靶抗体，然后使用第二种抗体检测该抗原-抗体复合物。
在夹心 ELISA 的情况下，目标分析物是抗原，使用捕获抗体将其捕获到板上，然后由检测抗体检测，从而形成抗体-抗原-抗体夹心。该方法可用于测量混合样品中抗原的浓度。
当目标靶抗原只有一种抗体可用时，使用竞争性 ELISA。首先用纯化的抗原包被板。同时，将含有抗原的样品与抗体预孵育，然后加入到板中，以使任何游离抗体分子与固定的抗原结合。来自板的信号越高，样品中的抗原浓度越低。在所有四种类型的 ELISA（直接、间接、夹心和竞争性）中，检测抗体要么直接与酶偶联，要么可以通过另一种抗体或蛋白质间接连接到酶。
反应常用的酶是辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶及其各自的底物，两者都产生可溶的有色产物，可以使用读板器进行测量和定量。在本视频中，您将了解如何进行间接 ELISA、夹心 ELISA 和竞争性 ELISA，然后介绍间接和夹心 ELISA 方法中目标分析物的定量示例。
第一个实验将演示如何使用间接 ELISA 来确定从流感感染小鼠获得的血清中是否存在抗流感病毒抗体。
首先，向 96 孔 ELISA 板的每个孔中加入 50 微升纯化的抗原 - 在本例中，每毫升纯化的 A/PR/8 甲型流感病毒 2 毫克。接下来，用粘合剂盖住板，并在 4 摄氏度下孵育过夜，以使抗原与板结合。第二天，通过在水槽上轻弹板来去除涂层溶液。接下来，向每个孔中加入 200 μL 封闭缓冲液（此处为 5% 驴血清的 1X PBS 溶液），封闭包被孔中剩余的蛋白质结合位点。将板在室温下孵育至少 2 小时。孵育后，去除封闭缓冲液，然后加入 200 微升含 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤板。再次将板子轻弹到水槽上以去除洗涤液。
然后，将 460 μL PBS 加入新试管中，然后加入 40 μL 血清进行 1 至 12.5 稀释，以制备测试样品。然后，将 300 微升 PBS 添加到第二管中，然后加入 100 微升第一稀释液。继续此系列稀释范围，直到获得稀释度为 1 至 204,800 的最终样品。将连续稀释的血清样品一式三份添加到孔中。用粘合剂盖住板，并在室温下孵育一小时。接下来，将板弹入水槽中，取出样品，然后加入 200 微升含 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤板。再次轻弹板以去除洗涤液。
现在，向每个孔中加入 100 μL 酶偶联的二抗，在本实验中是辣根过氧化物酶或 HRP，偶联的驴抗小鼠二抗。在室温下孵育板 1 小时，然后轻弹板以去除多余的液体。用含有 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤板，然后将 100 μL 浓度为 1 毫克/毫升的指示剂底物涂入每个孔中。在室温下将板与底物孵育 5 至 10 分钟。在这个例子中，当 HRP 存在时，无色的 3,3'、5,5'-四甲基联苯胺或 TMB 底物会变成蓝色。10 分钟后，加入 100 微升 2N 硫酸终止酶促反应。样品将变为黄色。
在添加终止液后 30 分钟内，将板插入酶标仪中，并以适合底物的波长读取板，以确定孔的吸光度。
要开始夹心 ELISA，必须在板中涂上纯化的捕获抗体。为此，向 96 孔 ELISA 板的每个孔中加入 100 μL 浓度在 1-10 μg/mL 范围内的捕获抗体。接下来，用粘性板盖住板，然后在 4 摄氏度下孵育板过夜。孵育后，将板轻弹到水槽上，去除涂层溶液。
现在，通过向孔中加入 200 微升 5% 脱脂奶粉来封闭涂层孔中剩余的蛋白质结合位点。将板在室温下孵育至少 2 小时。接下来，去除封闭缓冲液，然后用含有 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤孔。在水槽上轻弹板子，取出洗涤液。现在，将 100 微升测试样品添加到孔中，用粘合剂盖密封板，然后在室温下孵育 2 小时。孵育后，将板轻弹到水槽上以去除样品，然后用 200 μL 含 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤孔。在水槽上轻弹板以去除洗涤液，然后向孔中加入 100 μL 酶偶联检测抗体。
用粘性盖密封板。将板在室温下孵育 2 小时。孵育后，将板轻弹到水槽上以去除未结合的检测抗体，并用 200 μL 含 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤孔。接下来，加入 100 μL 浓度为 1 mg/mL 的指示剂底物，并在室温下孵育板 5 至 10 分钟。10 分钟后，向孔中加入 100 μL 2N 硫酸以终止酶促反应，然后在酶标仪中加入终止液后 30 分钟内读取板。
为了进行竞争性 ELISA，首先在 96 孔 ELISA 板的孔中涂上 100 μL 浓度为 1-10 μg/mL的纯化抗原。用粘性板盖住板，然后在 4 摄氏度下孵育过夜。然后，通过在水槽上轻弹板，从孔中去除未结合的抗原溶液。
接下来，通过向每个孔中加入 200 微升封闭缓冲液来封闭包被孔中剩余的蛋白质结合位点 - 这里是 PBS 中的 5% 脱脂奶粉。在室温下孵育板至少 2 小时。在封闭孔的同时，在 1.5 mL 试管，在检测中的每个孔中将 150 μL 样品抗原添加到 150 μL 一抗中。将此混合物在 37 摄氏度下孵育 1 小时。现在，通过在水槽上轻弹板，从孔中去除封闭缓冲液。然后，用含有 Tween 20 的 1X PBS 洗涤孔，然后加入 100 μL 样品抗原-一抗混合物。
将板放在 37 摄氏度下孵育 1 小时。接下来，在水槽上轻弹板以去除样品混合物，然后用含有 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤孔，以去除任何未结合的抗体。向每个孔中加入 100 μL 酶偶联二抗，并在 37 摄氏度下孵育板 1 小时。然后，用含有 1% Tween-20 的 1X PBS 洗涤板，然后向每个孔中加入 100 微升底物溶液。等待 5-10 分钟。10 分钟后，加入 100 μL 2N 硫酸终止酶促反应，然后在加入终止液后 30 分钟内在酶标仪中测量吸光度。
对于半定量间接 ELISA 测定，通过在读板器中读取每个孔在 405 纳米处的吸光度来确定来自甲型流感感染小鼠的连续稀释血清样品中甲型流感病毒抗体的存在。此原始数据将导出到电子表格以进行计算。在本实验中，连续稀释的血清样品（范围从 1 - 12.5 到 1 - 204,800）一式三份重复。
为了分析数据，因此，通过将每个稀释度的所有值相加并将总和除以 3 来计算每组一式三份的平均吸光度值。一旦确定了每组一式三份的平均值，就将平均 OD 450 读数与连续稀释度作图。OD 读数随着血清的稀释而降低，表明在稀释程度较高的样品中发现的抗体较少。在定量夹心 ELISA 中，将已知标准品的稀释液（在本例中为重组人 TNFalpha）加入 96 孔板中，并与未知样品一起读取。
为了创建标准曲线，计算了已知浓度的每组读数的平均吸光度值。然后，在 y 轴上绘制平均吸光度值，在 x 轴上绘制已知蛋白质浓度。最佳拟合曲线将通过图形中的点添加。
生成标准曲线后，可以通过首先计算测试样品的平均吸光度值来确定测试样品中 TNFalpha 蛋白的量。在此示例中，测试样品的 OD450 读数分别为 0.636 和 0。681. 将这些值相加并将总和除以 2 得到平均值 0.659。从标准曲线图上的 y 轴开始，从该吸光度值延伸一条水平线到标准曲线。在交点处，将一条垂直线延伸到 x 轴并读取相应的浓度，在该测试样品中，对应于 38.72 皮克/毫升的 TNFalpha 浓度。
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