Name: 使用卷压力记录，一条尾巴袖套法小鼠的血压测量 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-15T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: 学习使用卷压力记录技术通过尾袖套法对小鼠进行无创血压测量。本方法可同时测量多达八只啮齿动物的收缩压和舒张压，为心血管研究提供准确可靠的生理数据。

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<ol style="padding:5px;">
<li>设备设置<ol style="padding:5px;">
<li>在实验室中选择一个室温在20°C或以上的区域。</li>
<li>避免靠近空调出风口和/或噪音较大的位置。</li>
<li>避免使动物接触可能引起刺激和/或应激的气味，例如香水、古龙水、化学品和清洁剂。</li>
<li>打开CODA控制器。</li>
<li>打开加热平台并设置为3级。如果室温高于25°C，则从1级或2级开始。</li>
<li>控制器诊断测试<ol style="padding:5px;">
<li>打开CODA软件。</li>
<li>通过点击选择CODA设备。</li>
<li>点击“测试选定设备”。</li>
<li>选择要测试的袖带和通道，然后点击“测试”。</li>
<li>测试完成后，关闭设备测试窗口。</li>
</ol></li>
</ol></li>
<li>软件设置<ol style="padding:5px;">
<li>人员与动物管理<ol style="padding:5px;">
<li>人员管理<ol style="padding:5px;">
<li>选择工具 &gt; 管理人员。</li>
<li>点击“研究员1”以更改姓名。</li>
<li>点击后续行以添加其他研究人员。</li>
<li>点击“技术人员标签”以修改或添加技术人员。</li>
<li>点击“样本标签”为动物命名以便于识别，并选择动物类型：大鼠或小鼠。</li>
<li>点击“动物标签”以更改动物类型和敏感度。</li>
</ol></li>
</ol></li>
<li>新建实验<ol style="padding:5px;">
<li>选择文件 &gt; 新建 &gt; 实验</li>
<li>开始新实验<ol style="padding:5px;">
<li>输入实验名称。</li>
<li>选择主要研究员。</li>
<li>选择开始日期并点击“下一步”。</li>
</ol></li>
<li>基本会话信息<ol style="padding:5px;">
<li>输入会话名称。</li>
<li>将“适应循环次数”设为5。若不希望包含适应循环，可设为零。为帮助动物适应固定器和袖带，可在实验中增加额外循环，并连续运行5天。</li>
<li>将“集合数”设为1。</li>
<li>对于多个集合，将“集合间时间”设为30秒。</li>
<li>将“每集合循环数”设为20次循环。</li>
<li>将“循环间时间”设为5秒，然后点击“下一步”。</li>
</ol></li>
</ol></li>
<li>样本选择<ol style="padding:5px;">
<li style="list-style-type:none;">&nbsp;<ol style="padding:5px;">
<li>从样本池中选择样本，分配至第一个可用通道，然后点击“下一步”。</li>
</ol></li>
<li>会话参数<ol style="padding:5px;">
<li>将“最大阻断压力”设为250mmHg。</li>
<li>将“放气时间”设为小鼠20秒，大鼠15秒。</li>
<li>将“最小体积”设为15µL。</li>
<li>将“显示样式”设为每图一个通道。</li>
<li>添加其他研究员和技术人员，然后点击“下一步”。</li>
</ol></li>
<li>会话脚本<ol style="padding:5px;">
<li>查看会话脚本，然后点击“下一步”。</li>
<li>在完成动物准备部分之前，请勿点击“完成”。</li>
</ol></li>
</ol></li>
</ol></li>
<li>动物准备<ol style="padding:5px;">
<li>动物设置<ol style="padding:5px;">
<li>动物固定器<ol style="padding:5px;">
<li>为训练并改善动物适应性，可在实验中增加额外循环，并连续运行五天。您也可以在正式研究开始前连续三天每天将动物放入固定器中15分钟，以辅助其适应。</li>
<li>通过抓住动物尾巴将其轻轻放入固定器后部，固定器后部应朝向鼻锥的开口端。注意：动物体型与所选固定器尺寸的匹配。动物应能自由进入固定器。</li>
<li>小心地通过旋转固定器后部红色螺帽将后盖固定。固定时应注意避免夹住尾巴或其他身体部位。</li>
<li>将鼻锥向后盖滑动，以限制动物活动。鼻锥的位置应能防止动物在固定器内转身。</li>
<li>将固定器放置在加热平台的指定位置。若在一段时间内对同一组动物进行测试，务必轮换固定器在加热平台上的位置，以提高血压测量的一致性和准确性。让动物至少适应固定器5分钟。</li>
<li>动物在固定器内时，请勿触碰或操作动物。&nbsp; 过多接触可能会刺激动物。</li>
<li>切勿让动物在无人看管的情况下留在固定器中。</li>
</ol></li>
<li>袖带放置<ol style="padding:5px;">
<li>将尾巴穿过“阻断袖带”，尽可能靠近尾根部放置，但不要用力。</li>
<li>将“阻断袖带管路”固定在固定器顶部后方的凹槽中。</li>
<li>将尾巴穿过“VPR袖带”，并将其放置在距离“阻断袖带”2mm以内。</li>
<li>将“VPR袖带管路”固定在固定器顶部后方的凹槽中。</li>
<li>将袖带连接至CODA控制器。</li>
</ol></li>
<li>动物体温<ol style="padding:5px;">
<li>让动物至少有5分钟时间进行体温调节。</li>
<li>使用红外测温仪频繁记录动物体温。动物体温应在32至35°C之间。</li>
</ol></li>
</ol></li>
</ol></li>
<li>实验<ol style="padding:5px;">
<li>开始实验<ol style="padding:5px;">
<li>点击“完成”，实验将立即开始。</li>
</ol></li>
<li>结束实验<ol style="padding:5px;">
<li>动物<ol style="padding:5px;">
<li>立即从袖带和固定器中取出动物。</li>
<li>在“简单会话摘要报告”显示后，将动物放回笼中。</li>
</ol></li>
<li>数据采集<ol style="padding:5px;">
<li>最后一个循环完成后，被接受的循环数据将自动以电子表格形式显示在CODA应用程序中，点击“导出至Excel”按钮。</li>
<li>选择保存文件的文件夹，命名文件并点击“保存”。</li>
<li>打开Excel应用程序并点击“打开”。</li>
<li>查看所有文件类型以显示已保存的“.csv文件”，点击该文件。</li>
</ol></li>
<li>数据处理<ol style="padding:5px;">
<li>有多种方式可在Excel文件中处理数据。常见的做法是计算平均值和标准差。</li>
<li>如果标准差大于30，则删除该测量值。</li>
<li>此外，可查看被拒绝的循环，整个数据库也可轻松导出至Excel。更多信息请参阅用户手册。</li>
</ol></li>
</ol></li>
</ol></li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

使用容积-压力记录尾套法测量小鼠血压

Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method

CODA 8通道高通量无创血压系统可同时测量多达8只小鼠或大鼠的血压。该CODA尾套系统采用容积压力记录法（VPR）通过测定尾部血容量来测量血压。系统配备特制的差分压力传感器和阻断式尾套，可在无需获取单个脉搏信号的情况下测量尾部总血容量。为获得最准确的血压读数，特别关注了阻断尾套的长度设计。VPR技术可轻松获取深色皮肤啮齿类动物（如C57BL/6小鼠）的读数，并与磁共振成像（MRI）兼容。CODA系统可提供六种不同的血压参数测量值：收缩压、舒张压、心率、平均动脉压、尾部血流量和尾部血容量。测量可在清醒或麻醉状态下的小鼠或大鼠上进行。CODA系统包含控制器、笔记本电脑、软件、尾套、动物固定器、红外加热垫和红外温度计。系统配备七种不同尺寸的动物固定器，适用于体重低至8克的小鼠至高达900克的大鼠。

CODA 8通道高通量无创血压系统可同时测量多达8只小鼠或大鼠的血压。该尾套系统采用容积压力记录法（VPR），通过测定尾部血容量来测量血压。

CODA 8通道高通量无创血压系统可同时测量多达8只小鼠或大鼠的血压。CODA……

“coda”一词在意大利语中意为“尾部”。Coda无创血压系统借助一种专门的容积压力记录传感器，通过测量放置在动物尾部时尾部血容量的变化，实现对啮齿类动物的血压测量。本视频演示了如何设置该系统、准备动物，并同时对八只动物进行血压测量。您好，我是 Anju Bala Krishnan，来自肯塔基大学列克星敦分校心血管研究中心 Alan Dougherty 实验室。今天我们将向您展示一种使用容积压力记录尾套法测量小鼠血压的实验操作。在我们的实验室中，该方法用于心血管系统的研究。那么，让我们开始吧。设置CODA系统时，选择实验室中室温稳定在20摄氏度或以上的区域。避免靠近空调出风口的位置，以免动物暴露于高分贝噪音或异味中，从而引起刺激或应激反应。动物气味可能包括您所使用的任何浓烈香水。打开Coda控制器，然后开启加热平台，将其设置为三档。如果室温高于25摄氏度，则从一档或二档开始。首先执行控制器诊断测试，打开 Coda 软件。通过点击选择 Coda 设备，然后点击测试所选设备。选择要测试的袖带和通道，然后点击测试。控制器诊断测试完成后，关闭设备测试窗口。选择要使用的控制器代码，然后点击。使用这些设备来设置软件。选择工具以管理人员。然后，点击研究人员一。如需更改名称，请点击后续行以添加其他研究人员，然后点击保存数据。点击技术人员标签页以修改或添加技术人员。然后，点击“标本”标签，为动物命名以便于识别，并选择动物类型。接着点击保存数据。最后，点击“动物”标签。如需更改动物类型和敏感性，请点击保存数据，然后关闭。要开始新实验，请选择文件 新建实验。输入实验名称，选择主要研究人员，并选择开始日期。单击下一步。下一步是输入基本的实验会话信息。首先输入会话名称，将适应周期设置为5；如果不需要包含适应周期，则设置为0。设置组数为多组时，组间间隔时间为30秒。每组循环次数为20次，循环间间隔时间为5秒。然后点击下一步。开始样本选择时，从样本池中选择样本并将其分配至第一个可用通道。然后点击下一步以设置会话参数。将最大阻塞压力设置为 250 毫米。汞柱放气时间降至20秒。对于小鼠，最小体积设为15 µL，显示样式设为每张图表一个通道。您还可以添加其他研究人员和技术人员。然后点击下一步。查看会话脚本并点击下一步。在完成接下来所述的动物准备步骤之前，请勿选择“完成”。现在可以取出动物，并将其放置在尾动脉血压系统的旁边。在将动物放入固定器之前，注意观察每只动物的大小与所选固定器尺寸的对应关系。动物应能自由地进入固定器。用手抓住每只动物的尾巴，将其轻轻放入固定装置的后部，固定装置的后部朝向鼻罩的开口端。通过旋转后部舱门上的螺丝，小心地将后部舱门固定到固定装置上。在固定后部舱门时，注意不要夹到动物的尾巴或其他任何身体部位。下一张幻灯片。将鼻锥朝向后部舱门，以限制动物的活动。鼻锥应置于限制动物转身的位置。将动物放入固定装置后，把固定装置放置在加热平台上。在指定位置，让动物至少适应固定装置五分钟。不要触摸或抓握动物。动物在固定器内时，过多接触可能会刺激动物，且切勿将动物单独留在固定器中无人看管。为正确安放阻断式尾套，应将尾巴穿过阻断套环，并将套环尽可能贴近尾根部，但不得用力强行放置。随后，将尾部穿过 VPR 传感器套管，将其放置在阻断套管前方两毫米以内。将管路固定在支架后上方的凹槽内。通过充气阻断尾部套管以阻碍尾部的血液流动。缓慢放气解除阻塞袖带，VPR 尾套内置的特制传感器可测量血液回流至尾巴时的血流生理特征。VPR 传感器袖带可测量因血流引起的动脉脉动所导致的尾巴肿胀。收缩压在尾巴肿胀首次出现时自动测定。当尾部肿胀速率停止增加时，舒张压将自动计算得出。将所有动物放入固定装置并套上尾部袖带后，至少让它们适应五分钟以达到热平衡。记录动物的体温。使用红外温度计时，动物的体温通常应介于 32 至 35 摄氏度之间。现在动物已准备就绪，我们可以开始实验。点击“完成”以开始实验。红线代表阻塞袖带和VPR传感器袖带的放气过程。蓝线代表尾巴中血容量的变化。蓝线的第一个拐点，即变化速率最小值，对应于收缩压。蓝色曲线的第二个拐点，即变化速率的最大值，用于确定实验结束时的舒张压。立即从袖带和固定装置中取出动物。此时会显示一个简单的会话总结报告。实验中收集的数据以 Excel 文件格式保存。可在 Excel 文件中通过多种方式处理数据。常见的做法包括计算平均值和标准差，以及删除测量值。如果标准差大于30。此外，可查看被拒绝的循环，且整个数据库可轻松导出至Excel。请参考书面实验方案和用户手册。有关更多信息，我刚刚向您展示了如何使用容积压力记录法非侵入性地测量小鼠血压。最重要的是，遵循本操作流程以减少动物应激，从而获得准确且一致的测量结果。就此结束。感谢观看，祝您的实验取得圆满成功。

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使用卷压力记录，一条尾巴袖套法小鼠的血压测量

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