Name: 防污图案生物分子自组装膜的微电极为 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-25T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: 了解在硅基底金微电极上制备聚乙二醇自组装单分子层（PEG-SAM）的防污方法，利用电泳技术实现生物分子的纳米级图案化。该技术可应用于生物传感器和药物递送系统。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们感谢 Melissa Grunlan 在自组装单分子膜（SAM）形成方面的有益讨论。本研究部分得到了罗伯特·A·韦尔奇基金会（A-1585）的支持。

试剂的制备
配制 PIPES 缓冲液（80 mM PIPES，1 mM MgCl2，1 mM EGTA，用 KOH 调至 pH 6.8）。根据现有方案1,2，将葡萄糖氧化酶、过氧化氢酶和葡萄糖分装后于 -70°C 保存，紫杉醇于 -20°C 保存。根据供应商提供的说明，将微管蛋白分装后于 -70°C 保存。
使用光刻技术制备图案化金微电极
<ol>
<li>使用刻划笔或晶圆切割器将硅片切割成 1 cm ´ 1.5 cm 的基底。将基底放入盛有足量丙酮的烧杯中，超声清洗 5 分钟。在基底未干燥的情况下，用新鲜丙酮冲洗，随后立即用异丙醇冲洗，并用氮气吹干。</li>
<li>根据所需结构尺寸，采用标准的正性光刻或电子束光刻技术在洁净的基底上制备金微电极3。设计图案几何形状时，应使每个电极图案的直径小于 100 微米，以确保能被后续的 PEG 自组装单分子层（SAM）完全覆盖（见下一节描述）。在距离图案 300 至 500 mm 处设置引线焊盘（约 300 mm2），并通过一条 1 mm 宽的导线将焊盘与电极相连（图 1）。将光刻图案置于基底中央附近，以便在图案周围留出空间用于组装流动池。 <img border="0" src="/files/ftp_upload/1390/1390fig1thumb.jpg" alt="带有光刻图案示意图的硅基底；金刮痕接触点与微电极布局。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="figure 1"> 图 1. 样品几何结构示意图。请<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1390/1390fig1.jpg">点击此处</a>查看图 1 的放大版本。</li>
<li>在光刻胶层中完成图案显影后，使用镊子从引线焊盘处沿基底边缘刮划一条线（图 1）。在金属沉积过程中，该刮痕可使电极与基底边缘之间形成电连接。使用沉积腔室（优选配备双源）进行金属层沉积。依次沉积 2 nm 铬（用于增强附着力）和 6 nm 金，过程中保持真空不中断。腔室内配备的石英晶体微天平可用于实时监测薄膜沉积厚度。</li>
</ol>
制备 SAM
<ol>
<li>在通风良好的环境中将烘箱预热至 75°C。取一个 250 mL 玻璃烧杯，加入 20 mL 甲苯，配制硅烷化溶液。然后使用塑料移液管向甲苯中加入 1 mL PEG-硅烷（即 5% v/v）。用移液管反复吹打 5 至 10 次，使 PEG-硅烷充分混匀，再用移液管搅拌 30 秒。</li>
<li>将带有图案的样品放入烧杯中，图案面朝上，确保样品完全浸没在 PEG-硅烷甲苯溶液中，并在烧杯底部均匀分布。将烧杯放入烘箱，在 75°C 下烘烤 18 至 21 小时。在自组装单分子膜（SAM）形成期间，准备对电极（见下文），并组装后续步骤所需的其他组件。</li>
<li>烘烤 18 至 21 小时后，甲苯应已蒸发，样品表面留下黏稠的 PEG-硅烷残留物。向烧杯中加入 20 mL 甲苯，浸泡样品 1 至 2 分钟。将样品从烧杯中取出，依次用甲苯、异丙醇冲洗，最后用氮气吹干。此时样品应看起来洁净，自组装单分子膜（SAM）层在肉眼观察下不可见。此类 SAM 样品在低温干燥条件下（25 °C，中等湿度）最多可保存两天。若 SAM 形成失败，则样品表面会呈现浑浊或颜色不均的残留涂层。</li>
</ol>
制备对电极
在用于微电极沉积的同一沉积腔室装置中，通过在22 × 50 mm的1号或0号玻璃盖玻片上先沉积1 nm的Cr，再沉积4 nm的Au，制备对电极。对电极应近乎透明，呈浅灰色或淡粉色。将对电极镀层面朝上存放于培养皿中以保持清洁。
将微管蛋白聚合形成微管
<ol>
<li>解冻未标记的微管蛋白和罗丹明标记的微管蛋白，立即按1:2的标记蛋白与未标记蛋白比例混合，以获得荧光强烈的微管。用移液器吹打数次混匀。将微管蛋白在预热的水浴中孵育20–40分钟以诱导聚合 37°C微管的长度会随着聚合时间的延长而增加。在微管蛋白聚合的同时，通过将紫杉醇加入含有PIPES缓冲液的微量离心管中，配制含20 mM紫杉醇的PIPES-紫杉醇缓冲液。用移液器反复吹打并涡旋充分混匀紫杉醇，然后将离心管置于预热的水浴中 37°C聚合完成后，用温热的PIPES-紫杉醇缓冲液将微管（MTs）稀释1/100，并避光保存。以此方法制备的微管会随时间逐渐延长并发生束化，进一步稀释可减轻该现象。</li>
<li>通过将30 mL 冷的PIPES缓冲液（0-4°C5 mL 50% 2-巯基乙醇，5 mL 葡萄糖氧化酶，5 mL 过氧化氢酶，和 5 mL 葡萄糖。2 葡萄糖应最后加入。每加入一种成分后，用移液器上下吹打3-5次混匀。将OS混合液置于冰上，其活性可保持约2小时。</li>
<li>通过使用1×OS缓冲液对制备的微管（MT）进行成像，验证微管聚合是否成功，并确认微管在数分钟荧光激发下保持稳定。对以该方法制备的微管进行成像时，务必选用适用于罗丹明荧光的激发/发射滤光片组合。为进一步确定用于成像单根微丝的最佳工作稀释度，可使用PIPES缓冲液将微管稀释1/10至1/100，并在1×OS缓冲液存在下进行成像。</li>
<li>通过将两段双面胶带（相距2-3 mm）夹在一大（22 × 50 mm）一小（22 × 22 mm）玻璃盖玻片之间，制备一个流动小室。可将双面胶带贴于载玻片上，用剃刀片切割成条状，便于操作。使用移液器向流动小室内引入数微升微管蛋白（MTs）。对于高倍成像，可能需要使用长工作距离物镜来观察流动小室的上表面。从盖玻片/样品表面到流动小室上表面的距离由胶带厚度决定，应为60-100 mm。</li>
</ol>
利用电泳技术对微管进行图案化
<ol>
<li>通过在图案化的 SAM 涂层样品上放置两条双面胶带，准备电泳装置，使电极位于胶带之间，且连接路径与胶带垂直（图 2）。将对电极放置在双面胶带上，金属面接触胶带，使样品边缘在对电极上悬空约 3 mm（图 2）。剪下数段 15 cm 长的绝缘铜漆包线，并将两端各剥去 1 cm 的绝缘层。使用少量银浆将一根导线连接到基底暴露的 Au 区域，注意避免与对电极形成电接触（可用万用表检测）。使用银浆将第二根导线连接到对电极上。用银浆连接的导线可用胶带进一步固定在样品上。 <img src="/files/ftp_upload/1390/1390fig2thumb.jpg" border="0" alt="微流控装置示意图；流体控制、样品定位、防止蒸发方法。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="figure 2"> 图 2. 倒置荧光显微镜用流动池组装示意图。请 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1390/1390fig2.jpg">点击此处</a> 查看图 2 的放大版本。</li>
<li>使用 PIPES 缓冲液将微管蛋白（MTs）稀释至所需浓度，并加入 OS 至终浓度为 1×。以 20 倍放大倍数成像，并在施加电压前定位硅晶圆上的图案。可选地，可使用指甲油密封流动室，以防止流体流动和微管蛋白在流动室平面内的迁移。</li>
<li>施加最高达 1 V 的电压，并观察微管蛋白的迁移。若需实现微管蛋白的可逆捕获，可使用较低电压（低至约 0.5 V），但需密封流动室以防止横向漂移。指甲油适用于密封流动室的开放端。当电压高于约 0.7 V 时，可在图案上观察到部分微管蛋白粘附，但粘附较弱。当电压高于约 0.9 V 时，微管蛋白迁移速度加快，粘附也更强。当电压超过约 1.2 V 时，发生电解（气泡形成）以及微电极损坏的可能性显著增加。可通过调节显微镜的焦平面来追踪迁移过程。若操作正确，微管蛋白将定位于电极表面。</li>
</ol>

<ol><li>Tubulin Polymerization with GTP/GMPCPP/Taxol [Internet]. , Harvard University. Cambridge, Ma. Available from:
 
 <a target="_blank" href="http://mitchison.med.harvard.edu/protocols/poly.html">http://mitchison.med.harvard.edu/protocols/poly.html</a> (2009).</li>
<li>Flow Cell Assays with Microtubules: Motility/Dynamics [Internet]. , Harvard University. Cambridge, Ma. Available from:
 
 <a target="_blank" href="http://mitchison.med.harvard.edu/protocols/flowcell.html">http://mitchison.med.harvard.edu/protocols/flowcell.html</a> (2009).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Handbook+of+Microlithography%2C+Micromachining%2C+and+Microfabrication%3A+Microlithography%22">Handbook of Microlithography, Micromachining, and Microfabrication: Microlithography</a>. Rai-Choudhury, P. , SPIE Press. Bellingham, WA. (1997).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

由于微管（MTs）具有高亮度且背景荧光低，其迁移过程可通过荧光显微镜轻松观察。该方法通常适用于生物分子的图案化，仅需通过适当调节缓冲液pH值使生物分子带有净电荷即可。本实验装置中避免了电渗现象，因为不存在诸如毛细管电泳中使用的带电硅壁等带电表面。
该方法有多种可能的改进方式。密封流动室的两端对于观察可逆性至关重要，因为开放端的蒸发会导致体相液体流动和微管的非预期迁移。在光刻图形化之前对硅片进行氧化处理，可以阻止基底导电，从而允许同时使用具有独立电位的多个电极。

<table><tbody><tr><td>2-[甲氧基聚(乙二醇)丙基]三甲氧基硅烷（PEG-硅烷）</td><td>Gelest 公司</td><td>SIM6492.7</td><td>6-9 个 PEG 单元；分子量 450-600 g/mol&lt;sup&gt;-1&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>2-巯基&amp;#8211;乙醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7522</td><td></td></tr><tr><td>丙酮</td><td>EMD Millipore</td><td>AX0120-8</td><td>ACS 级</td></tr><tr><td>过氧化氢酶</td><td>Calbiochem</td><td>219001-5MU</td><td></td></tr><tr><td>氯苯</td><td>EMD Millipore</td><td>MK441908</td><td>ACS级</td></tr><tr><td>乙二醇双(2-氨基&amp;#8211;thylether)&lt;em&gt;-N,N,N&amp;rsquo;，N&amp;rsquo;-&lt;/em&gt;四乙酸（EGTA）</td><td>Calbiochem</td><td>324626</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖</td><td>EMD Millipore</td><td>DX0145-1</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖氧化酶</td><td>MP Biomedicals</td><td>100330</td><td></td></tr><tr><td>鸟苷-5&amp;rsquo;-[(&amp;alpha;,&amp;#914;)-亚甲基]三磷酸钠盐（GMPCPP）</td><td>Jena Biosciences, GmbH</td><td>NU-405s</td><td></td></tr><tr><td>鸟苷-5&amp;rsquo;-三磷酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8752</td><td></td></tr><tr><td>异丙醇</td><td>EMD Millipore</td><td>PX1835-5</td><td>ACS级</td></tr><tr><td>甲基异丁基酮（MIBK）</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC12739-0010</td><td></td></tr><tr><td>紫杉醇（taxol）</td><td>Calbiochem</td><td>580555</td><td></td></tr><tr><td>哌嗪-N,N&amp;rsquo;&amp;rsquo;-二(2-乙烷磺酸)（PIPES）</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1851</td><td></td></tr><tr><td>聚甲基丙烯酸甲酯（PMMA）</td><td>Brewer Science, Inc.</td><td>950K</td><td>分子量 950K</td></tr><tr><td>罗丹明标记的微管蛋白</td><td>Cytoskeleton, Inc.</td><td>T331M</td><td>来自牛脑，99%纯度，冻干粉</td></tr><tr><td>甲苯</td><td>EMD Millipore</td><td>TX0735-5</td><td>ACS级</td></tr><tr><td>微管蛋白</td><td>Cytoskeleton, Inc.</td><td>T238</td><td>来自牛脑，99% 纯度，冻干粉</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_content">No. 1 硼硅酸盐玻璃盖玻片（22 × 50 mm）购自 VWR。抛光电子级 p 型 &amp;lt;111&amp;gt; 硅片购自Addison Engineering, Inc.。高纯度银漆购自Structure Probe, Inc.（目录号 # 5001 AB）。绝缘细径铜漆包线（~ 0.08 mm（0.003&amp;#8221;）直径）可从电子器材供应商处获得。&lt;/p&gt;</td></tr></tbody></table>

用于图案化生物分子的微电极上防污自组装单分子层

Antifouling Self-assembled Monolayers on Microelectrodes for Patterning Biomolecules

我们介绍一种在带有金微电极的硅基底上形成聚乙二醇三甲氧基硅烷（PEG-trimethoxysilane）自组装单分子层（SAM）的方法。该PEG-SAM通过一步组装形成，可有效防止硅和金表面的生物污染。该SAM可用于涂覆采用标准正性光刻工艺制备的微电极。以微管为例，我们施加直流电压，可逆地诱导微管通过电泳迁移至SAM包被的电极。实验中使用流动腔室对电泳迁移过程及微管的图案化进行成像观察。in situ使用落射荧光显微镜。该方法通常适用于生物分子的图案化，因为它利用电泳将目标分子固定，因而无需特定的分子相互作用。此外，该方法避免了直接使用光刻技术对自组装单分子层（SAM）分子进行图案化时所遇到的问题。与电子束光刻的兼容性使得该方法可用于纳米尺度的生物分子图案化。

我们介绍一种在带有金微电极的硅基底上形成聚乙二醇自组装单分子层（PEG-SAM）的方法。该PEG-SAM通过一步法形成，可防止硅和金表面的生物污染。随后利用电泳技术实现生物分子在纳米尺度上的图案化。

我们介绍一种在带有金层的硅基底上形成聚乙二醇（PEG）三甲氧基硅烷自组装单分子层（SAM）的方法……

该实验首先在硅胶基底上制备微电极。在微电极及基底表面形成聚乙二醇自组装单分子层，以防止微管发生污染。随后制备罗丹明标记的微管。最后，利用电泳技术将微管图案化至修饰电极上。大家好，我是来自德克萨斯农工大学物理系纳米实验室以及生物医学工程系分子生物力学实验室的 John Noel。我是来自物理系、同时也是德克萨斯农工大学中心技能科学与技术中心主任的 Wil free Teza。我是胡安·邝（Juan Quang），德克萨斯农工大学生物医学工程系分子生物力学实验室主任。今天我们将向您展示一种制备涂覆有抗污染自组装单分子层的微电极的实验方法。在我们的实验室中，该方法用于通过电泳技术研究微管解聚。那么，让我们开始吧。首先，使用刻划笔或晶圆切割器将硅片切割成1厘米×1.5厘米的片状，用作基底。接着，将基底放入盛有足量丙酮的烧杯中，确保丙酮完全覆盖基底，然后进行超声处理5分钟，在此过程中避免基底干燥。用新鲜的丙酮冲洗，然后立即用异丙醇再次冲洗，并用氮气吹干。采用标准的正性光刻或电子束光刻技术，在洁净的基底上制备金微电极。设计图案几何形状时，应使每个电极图案的直径小于100微米。为确保聚乙二醇三甲氧基硅烷自组装单分子层（PEG SAM）能够完全覆盖，需在距离图案300至500微米处设置接触焊盘，并用一条1毫米宽的导线将焊盘与电极连接。在抗蚀层中形成图案后，使用镊子从电极焊盘向衬底边缘在抗蚀层上划出一条线。金属沉积后，该划痕将实现电极与衬底边缘之间的电接触。采用沉积腔室（最好配备两个源）来沉积金属层。通过先沉积两纳米的铬，再沉积六纳米的金来形成电极。在不破坏真空的条件下，可使用腔室内配备的石英晶体微天平在沉积过程中实时测量薄膜厚度。现在我们可在通风良好的区域开始制备自组装单分子层，将烘箱预热至75摄氏度。在250毫升玻璃烧杯中，加入一毫升聚乙二醇硅烷至20毫升甲苯中，配制硅烷化溶液。用移液器上下吹打5到10次充分混匀，然后用移液器搅拌30秒。将图案样品有图案的一面朝上放入烧杯中，确保样品完全浸没在溶液中，并在烧杯底部均匀分布。将烧杯放入烘箱中，在SAM形成期间加热烘烤18至21小时。通过在22 mm × 50 mm的玻璃盖玻片上先沉积1纳米铬，再沉积4纳米金，制备对电极。对电极应近乎透明，呈浅灰色或粉红色。将镀层面朝上存放于培养皿中，以保持清洁。在烘箱中放置18至21小时后，将烧杯从烘箱中取出。甲苯应已蒸发，留下图案样品在黏稠的peg cline残留物中。向烧杯中加入20毫升甲苯，浸泡样品1至2分钟。将样品从烧杯中取出，依次用甲苯、异丙醇冲洗，最后用氮气吹干。此时，样品应看起来洁净，自组装单分子膜（SAM）层在肉眼观察下应不可见。以此方法制备的SAM样品在低温干燥条件下储存可使用长达两天。若SAM形成不成功，则会在表面形成浑浊或颜色不均匀的残留物涂层。在制备好SAM后，我们现在可以开始微管蛋白的聚合反应以形成微管。首先将未标记的微管蛋白和r domine标记的微管蛋白解冻，并立即按2:1的比例（未标记∶标记）混合，以获得明亮的微管。用移液器上下吹打数次，充分混匀。接下来，将微管蛋白在37摄氏度的水浴中温育20至40分钟以诱导其聚合。在微管蛋白聚合的同时，通过将20微摩尔的紫杉醇与PEM缓冲液混合，配制含紫杉醇的PEM缓冲液。通过反复吹打并涡旋充分混匀，然后将离心管置于37摄氏度的水浴中。聚合完成后，用预热的含紫杉醇缓冲液稀释微管，并避光保存。通过数分钟的荧光激发，验证微管聚合是否成功，并确认微管保持稳定。通过成像已制备的微管，同时使用氧气清除混合物使微管蛋白完全聚合为微管。接下来开始利用电泳对微管阵列（MTS）进行图案化。首先，将双面胶带贴在玻璃载片上，用剃刀刀片将其切成细条，然后将两条双面胶带条横向贴在经图案化处理的自组装单分子膜（SAM）包被的样品上，使电极位于两条胶带之间，且连接路径与胶带方向垂直。将对电极放置在双面胶带上，使金属面与胶带接触，且样品边缘超出对电极约三毫米。剪取数段15厘米长的绝缘铜漆包线，并将两端各剥除1厘米的绝缘层。使用少量银浆将导线连接至基底暴露的金区域，注意避免与对电极形成电接触。现在使用银漆将第二根导线连接到对电极上。用银漆固定的电极导线可用胶带进一步固定在样品上。接下来，使用移液器加入适当稀释的微管溶液，在20倍放大倍数下观察并定位硅片上的图案，然后施加电压。由于流动室的深度较大，可能需要使用长工作距离物镜来观察流动室的上表面。样品表面到流动室上表面的距离由胶带的厚度决定，通常约为 60 至 100 微米。施加最高一伏的电压，并观察微管的迁移情况。如果需要可逆地捕获微管，请使用指甲油密封流动室以防止横向漂移，并使用较低的电压，低至约 0.5 伏。通过调节显微镜的焦平面，可在施加约 0.9 至 1.2 伏电压时观察到微管在电极表面的定位，从而追踪其迁移过程。较高的电压会使迁移更快，黏附更牢固，但过高的电压会引发电解并导致解聚。微管：我们刚刚向您展示了如何制备经自组装单分子层（SAM）包被的微电极，用于微管的图案化，因为SAM涂层可防止微管在微电极上的吸附。该方法也可用于微管的可逆图案化。此外，该过程不仅限于微管，还可用于对生物分子进行普遍的图案化。就此结束。感谢观看，祝您的实验顺利成功。

antifouling-self-assembled-monolayers-on-microelectrodes-for

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

防污图案生物分子自组装膜的微电极为

通过施加还原电位，从玻璃基底上可单独寻址的氧化铟锡（ITO）电极表面脱附了抗污损的聚乙二醇（PEG）硅烷单分子层。对ITO微电极上的PEG-硅烷层进行电化学剥离，可实现空间可控的细胞黏附，细胞排列模式与电极图案高度一致。...

在光学透明的氧化铟锡电极上构建细胞图案

在金表面由长链烷烃硫醇形成的自组装单分子层（SAMs）为蛋白质图案化和细胞限域提供了明确的基底。使用聚二甲基硅氧烷（PDMS）印章对十六烷硫醇进行微接触印刷，随后用端基为乙二醇的烷烃硫醇单体进行反向填充，可形成一种图案，其中蛋白质和细胞仅吸附于印章转移的十六烷硫醇区域。...

创建用于蛋白质和细胞限制的二维图案化基底

已知的单层保护簇（MPCs）是由烷硫醇盐稳定的金胶体，其被合成、表征并组装成薄膜，作为简单氧化还原蛋白如铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa）的质体蓝素（AZ）和细胞色素c（cyt...

单层保护金纳米颗粒薄膜的合成、组装及表征用于蛋白质单层电化学研究

本方案描述了一种与微加工工艺兼容的在SiO2表面进行细胞图案化的技术。通过光刻法将预设的聚对二甲苯-C（parylene-C）图案印制在SiO2晶圆上。在孵育血清（或其他激活溶液）后，细胞特异性地黏附于下方的聚对二甲苯-C区域，并沿其轮廓生长，而在SiO2区域则被排斥。...

在光刻定义的聚对二甲苯-C：SiO 上进行细胞图案化2 底物

本文描述了用于单神经元微流控阵列化以及芯片内生物材料涂层等离子体图案化水掩模技术的实验方案。利用极少的细胞输入即可制备高度互连的共培养体系。...

单细胞精度神经元共培养体系的制备

支撑脂双层和天然膜颗粒是可模拟细胞膜特性的便捷体系，可被整合到多种分析策略中。本文展示了一种制备微阵列的方法，该微阵列由涂覆有支撑脂双层的SiO2微珠、磷脂囊泡或天然膜颗粒组成。...

采用刮刀式组装方法制备生物膜微阵列

本文介绍了一种将多种单分子共价偶联到原子力显微镜（AFM）探针尖端的实验方案，并提供了测定这些分子在固体载体及生物界面黏附力和自由能的步骤与实例。...

通过原子力谱学研究单分子粘附

细胞间通讯对于调控细胞内外多种生理活动至关重要。本文介绍了一种用于测量单个细胞分泌物时空特性的实验方案。为实现这一目标，采用了一种多学科交叉的方法，将无标记纳米等离子体传感技术与活细胞成像相结合。...

一种用于单细胞分泌物时空成像的无标记技术

本报告介绍了一种简单且易于操作的技术，利用低压真空将细胞和底物填充至微流控通道中，用于生物学研究。...

一种用于蛋白质和细胞图案化的多功能方法

采用软光刻技术，利用机械强度高且具有导电性的水凝胶制备一种仿生支架。微图案化水凝胶可实现心肌细胞的定向排列，从而产生特定方向的收缩作用。支架中还集成了柔性微电极，以实现对自搏动心肌组织的电学调控。...

仿生柔性机器人集成微电极

我们介绍一种利用微流控平台中毛细作用力辅助组装的技术，可将悬浮在液体中的微米级物体（如细菌和胶体）在聚二甲基硅氧烷基底上排列成预设的阵列。...

通过连续毛细辅助组装实现微生物与微粒的图案化

了解在硅基底金微电极上制备聚乙二醇自组装单分子层（PEG-SAM）的防污方法，利用电泳技术实现生物分子的纳米级图案化。该技术可应用于生物传感器和药物递送系统。

用于图案化生物分子的微电极上防污自组装单分子层

探索更多视频