Name: 突触小泡池，利用苯乙烯染料的光转化的研究 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-02-15T17:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: 学习利用苯乙烯染料FM 1-43的光转化技术研究黑腹果蝇突触小泡池的方法。该技术通过解剖幼虫暴露神经肌肉接头，经化学刺激和强光照射实现染料光转化，为突触动力学研究提供有效的可视化手段。

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1）制备 黑腹果蝇 神经肌肉接头（NMJ）
<ol>
<li>配制标准果蝇生理盐水（130 mM NaCl，36 mM 蔗糖，5 mM KCl，2 mM CaCl2，2 mM MgCl2，5 mM Hepes，pH 7.3 4）。</li>
<li>在生理盐水（1.1）中进行标本解剖。将果蝇幼虫背侧朝上固定于硅胶培养皿中，沿背侧纵向切开，并移除内部器官。随后将标本拉伸并固定。可使用多个腹侧肌肉进行实验。</li>
</ol>
2) 刺激与 FM 染色
<ol>
<li>建议在弱光条件下进行以下所有步骤，以防止 FM 染料发生漂白。</li>
<li>对于神经的化学刺激，使用高钾缓冲液。配制含有 90 mM KCl 和 10 μM FM1-43 染料的果蝇生理盐水（见 1.1）。将溶液避光保存。</li>
<li>在室温下用预先配制好的缓冲液孵育样本 1 分钟。</li>
<li>用标准果蝇生理盐水（1.1）洗涤，以去除细胞外的 FM1-43 染料。随后迅速进行固定。</li>
</ol>
3）固定
<ol>
<li>将样品置于含2.5%戊二醛的磷酸盐缓冲液（PBS）中，在室温下固定45分钟。为良好保存形态学特征，优先选用戊二醛而非多聚甲醛。</li>
<li>用PBS洗涤一次，然后将样品浸入100 mM NH4Cl溶液中15分钟。此步骤旨在淬灭残留戊二醛固定剂中的游离醛基。</li>
<li>用常规PBS溶液洗去NH4Cl。</li>
</ol>
4）光转化
<ol>
<li>将神经肌肉接头标本在37°C下孵育30分钟 4°C 在含有1.5 mg·ml⁻¹二氨基联苯胺（DAB）的PBS中。 </li>
<li>将样品置于荧光显微镜下，使用相对低倍的水浸物镜（20× 0.5 NA）寻找并聚焦荧光信号。</li>
<li>以最大灯强度照射样品，直至FM染料完全漂白（图1C）。为确认光转化是否发生，建议在FM染料漂白步骤前后，在透射光下观察样品。若发生光转化，则会出现深棕色沉淀物（图1C）。照射时间因光照强度以及DAB渗透程度的不同而有所变化。在使用20倍物镜时，我们发现约30–45分钟的照射时间最为适宜；对于更高倍率的物镜（60倍），则采用较短的照射时间。</li>
<li>照明光源我们更倾向于使用带有后置反射镜灯箱的汞灯，该反射镜可收集向后散射的光束，从而提高总光强。</li>
</ol>
5) 样品的电镜处理
<ol>
<li>四氧化锇处理
 <ol class="lalpha">
 <li>用一份量的四氧化锇与三份量的水配制溶液（每份样品约需 300 μl）。操作四氧化锇时必须在通风橱内进行，并佩戴手套和眼部防护设备。</li>
 <li>将样品在四氧化锇溶液中室温孵育 1 小时（在通风橱内）。</li>
 <li>用 PBS 充分洗涤（4–5 次，每次 5 分钟），并将每个样品转移至洁净的玻璃烧瓶中。</li>
 </ol>
 </li>
<li>脱水
 <ol class="lalpha">
 <li>分别配制含 30%、50%、70%、90%、95% 和 100% 乙醇的溶液。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 30% 乙醇，作用 5 分钟。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 50% 乙醇，作用 5 分钟。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 70% 乙醇，作用 5 分钟。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 90% 乙醇，作用 5 分钟。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 95% 乙醇，作用 5 分钟（重复 3 次）。</li>
 <li>向每个样品中加入 1 ml 100% 乙醇，作用 5 分钟（重复 3 次）。</li>
 </ol>
</li>
<li>包埋及后续处理
 <ol class="lalpha">
 <li>将一份量的 Epon 树脂与一份量的乙醇混合。将该混合液加入样品中，在持续旋转条件下作用（2–4 小时）。</li>
 <li>将样品置于开口烧瓶中的 100% Epon 树脂内，使残留乙醇完全挥发（4–6 小时）。</li>
 <li>将样品置于模具中，在 60°C 下放置 36 小时。</li>
 <li>电镜样品制备。采用标准超薄切片技术，将样品切成 50–80 nm 的薄片进行处理。</li>
 </ol>
</li>
<li>电镜成像
 <ol class="lalpha">
 <li>采用常规电镜方法对样品进行成像。</li>
 </ol>
</li>
</ol>
6）代表性结果
预期结果如图1C和图2所示。光照程序将导致形成棕色的DAB沉淀物，该沉淀物在荧光和透射成像中均可见。光照过程中首先出现的现象是FM染料染色相关的荧光消失。相比之下，由醛类固定剂引起的背景荧光在整个实验过程中均可见。荧光淬灭通常在光照开始后约10-20分钟内发生。在此时间点通常无法观察到光转化产物。
应继续照射，约10分钟后，由于DAB的积累，样品将变为棕色（图1Civ）。目前尚不清楚DAB沉淀与FM染料漂白为何不能同时发生；可能的原因是氧化型DAB需要积累到一定量后才能发生聚集和沉淀，因此该反应比漂白过程更慢。然而在此阶段，样品尚不能用于电镜处理，因为DAB沉淀可能尚未完成。我们倾向于再等待5–10分钟，直至样品（即突触前神经末梢）呈现深棕色或黑色，表明转化已完全。此时可观察到样品整体表面出现轻微着色（例如神经肌肉接头中的肌纤维），这很可能与自发荧光（和/或固定剂荧光）诱导的DAB转化有关，但不会对实验造成不利影响。
然后将样品进行透射电子显微镜制备，并检查是否存在深色（标记的）囊泡。正如我们先前所证实的5,6，这些囊泡比未标记的囊泡密度更高，因此易于区分（图2B）。为了提高区分不同类型囊泡的几率，不应对接切片进行增强对比度的复染色处理（即不使用醋酸铀酰或柠檬酸铅染色）；锇染色足以观察大多数细胞结构，且其颜色不如DAB沉淀物深暗。
<img src="/files/ftp_upload/1790/1790fig1.jpg" alt="静态平衡图、化学结构、显微镜图像；扩散、分子分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1：FM染料及其在光转化中的应用. (A) 图示在刺激条件下使用FM染料对囊泡进行加载和去染的经典实验步骤。i在含有 FM 染料的缓冲液中孵育样品。ii) 在 FM 染料存在下，通过电或化学刺激诱导囊泡融合。iii刺激后的继发性胞吞作用会将仍存在于细胞外缓冲液中的FM染料摄入并装载到一些囊泡中。四用缓冲液洗涤以替换细胞外的FM染料。v新的刺激将诱导负载囊泡在胞吐过程中释放其FM染料。B) 示意图显示 FM1-43 染料的头部、桥接区和尾部。 (C光转换实验示例 果蝇 神经肌肉接头。i) 使用FM1-43对神经肌肉接头（NMJ）染色后，经洗去外部染料分子并固定，可在普通落射荧光显微镜（63倍物镜）下观察神经末梢的荧光。ii-iii在持续光照下，染料会完全漂白。四) 当持续光照时，由于二氨基联苯胺沉淀而出现黑色。比例尺表示 10 μm.
<img src="/files/ftp_upload/1790/1790fig2.jpg" alt="电子显微镜图像、细胞超微结构、细胞组分分析、显微镜研究" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 图 2：光转化样本的电镜示例。（A）图像显示一个含有突触小泡的神经末梢，但并非所有小泡均发生光转化；这可能是由于光照不足或二氨基联苯胺在组织中渗透不良所致。（B）经 FM 光转化后，突触小结内出现多个呈深色（充满）的小泡。（C）过度照射导致整个末梢变暗，无法分辨小泡或其他细胞器。比例尺为 200 nm。

<ol><li>Betz, W. J., Bewick, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+analysis+of+synaptic+vesicle+recycling+at+the+frog+neuromuscular+junction%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical analysis of synaptic vesicle recycling at the frog neuromuscular junction.</a> Science. 255, 200-203 (1992).</li>
<li>Henkel, A. W., Lübke, J., Betz, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FM1-43+dye+ultrastructural+localization+in+and+release+from+frog+motor+nerve+terminals%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">FM1-43 dye ultrastructural localization in and release from frog motor nerve terminals.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 93, 1918-1923 (1996).</li>
<li>Sandell, J. H., Masland, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoconversion+of+some+fluorescent+markers+to+a+diaminobenzidine+product%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Photoconversion of some fluorescent markers to a diaminobenzidine product.</a> J Histochem Cytochem. 36, 555-559 (1988).</li>
<li>Kuromi, H., Kidokoro, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+optically+determined+size+of+exo%2Fendo+cycling+vesicle+pool+correlates+with+the+quantal+content+at+the+neuromuscular+junction+of+Drosophila+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The optically determined size of exo/endo cycling vesicle pool correlates with the quantal content at the neuromuscular junction of Drosophila larvae.</a> J Neurosci. 19, 1557-1565 (1999).</li>
<li>Denker, A., Kröhnert, K., Rizzoli, S. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revisiting+synaptic+vesicle+pool+localization+in+the+Drosophila+neuromuscular+junction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Revisiting synaptic vesicle pool localization in the Drosophila neuromuscular junction.</a> J Physiol (Lond). 587, 2919-2926 (2009).</li>
<li>Rizzoli, S. O., Betz, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structural+organization+of+the+readily+releasable+pool+of+synaptic+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The structural organization of the readily releasable pool of synaptic vesicles.</a> Science. 303, 2037-2039 (2004).</li>
<li>Darcy, K. J., Staras, K., Collinson, L. M., Goda, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+sharing+of+recycling+synaptic+vesicles+between+presynaptic+boutons%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Constitutive sharing of recycling synaptic vesicles between presynaptic boutons.</a> Nat Neurosci. 9, 315-321 (2006).</li>
<li>Harata, N., Ryan, T. A., Smith, S. J., Buchanan, J., Tsien, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+recycling+synaptic+vesicles+in+hippocampal+neurons+by+FM1-43+photoconversion%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Visualizing recycling synaptic vesicles in hippocampal neurons by FM1-43 photoconversion.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 98, 12748-12753 (2001).</li>
<li>Lange, R. P. J. de, de Roos, A. D. G., Borst, J. G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+modes+of+vesicle+recycling+in+the+rat+calyx+of+Held%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Two modes of vesicle recycling in the rat calyx of Held.</a> J Neurosci. 23, 10164-10173 (2003).</li>
<li>Richards, D. A., Guatimosim, C., Rizzoli, S. O., Betz, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+vesicle+pools+at+the+frog+neuromuscular+junction%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Synaptic vesicle pools at the frog neuromuscular junction.</a> Neuron. 39, 529-541 (2003).</li>
</ol>

应考虑以下几个关键步骤：
<ul>
<li>必须在彻底清洗并淬灭样品后，才能进行DAB孵育。否则未反应的戊二醛会与DAB发生反应，导致其沉淀（通常表现为扁平晶体，无电子密度）。若样品中出现大量此类沉淀，则通常无法用于透射电子显微镜观察。</li>
<li>光照时间应通过测试多个相同样品在不同光照时间下的效果进行优化。根据我们的经验，最佳转化效果（图2B）出现在约5分钟的时间窗口内（例如，从光照开始后35至40分钟之间）。光照不足（图2A）表现为无标记细胞器或部分标记的细胞器（例如，囊泡仅在其体积的一半中显示含有DAB）。相反，过长的光照会导致过度转化——DAB转化产物大量积累，使细胞器结构扭曲，并扩散至胞质溶胶中（图2C）。此类样品在透射电镜下呈现为黑色结构，几乎无法观察到形态细节。</li>
</ul>
我们已在多种样本制备中应用了该技术，包括秀丽隐杆线虫（Caenorhabditis elegans）、黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）、斑马鱼（Danio rerio）以及蛙类（Rana ...

<table><tbody><tr><td>FM 1-43</td><td>Invitrogen</td><td>F10317</td><td></td></tr><tr><td>环氧树脂 Epon</td><td>Plano GmbH</td><td>R1030</td><td></td></tr><tr><td>二氨基苯肼盐酸盐</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5905</td><td></td></tr><tr><td>50% 戊二醛</td><td>AppliChem</td><td>A3166</td><td>电镜级</td></tr><tr><td>硅胶 Sylgard</td><td>Dow Corning</td><td>104186298</td><td></td></tr><tr><td>Axioskop 2 FS plus 显微镜</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>20倍物镜，数值孔径 0.5</td><td>Olympus Corporation</td><td></td><td>干式物镜</td></tr><tr><td>100 W 汞灯</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>带反光镜的灯箱</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td>1007-980</td><td></td></tr><tr><td>MRm 相机</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td>0445-554</td><td>图像采集</td></tr><tr><td>激发滤光片（HQ 470/40）</td><td>AHF</td><td>F49-671</td><td></td></tr><tr><td>二向色镜（495 DCLP）</td><td>AHF</td><td>F33-100</td><td></td></tr><tr><td>发射滤光片（HQ 500 LP）</td><td>AHF</td><td>F42-018</td><td></td></tr><tr><td>EM</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Proscan CCD HSS</td><td>Proscan Electronic Sys.</td><td></td><td>1024 × 1024</td></tr></tbody></table>

利用 styryl 染料光转化研究突触囊泡池

Studying Synaptic Vesicle Pools using Photoconversion of Styryl Dyes

突触小泡与质膜的融合（胞吐作用）是神经递质释放和神经元间通信所必需的步骤。随后，这些小泡从质膜上被回收（内吞作用），并重新归入神经末梢内的小泡总池中，直至它们再次经历新的胞吐与内吞循环（小泡循环）。这些过程已通过多种技术手段进行研究，包括电子显微镜、电生理记录、安培法和电容测量法。尤其在过去二十年中，一系列荧光标记物相继出现，使得光学技术能够用于追踪小泡在循环过程中的动态变化。其中最常用的标记物之一是苯乙烯基染料（即FM染料）1；从结构上看，所有FM染料均包含一个亲水性头部和一个疏水性尾部，二者通过芳香环以及一个或多个双键相连（图1B）。一种经典的FM染料实验方法是在刺激神经（通过电刺激或高K+溶液）的同时，将样品（图1Ai）浸入含有染料的溶液中。该过程可诱导小泡循环，并使染料被新近内吞的小泡摄取（图1Ai-iii）。在小泡完成染料加载后，将其转移至无染料溶液中并进行第二次刺激，即可通过胞吐作用释放FM染料（图1Aiv-v），此过程可通过监测荧光强度的下降（脱色）来实时追踪。
尽管FM染料在囊泡循环研究领域发挥了重要作用，但使用常规荧光显微镜无法确定单个囊泡的精确定位或形态。因此，本文介绍如何通过光转化技术，将FM染料作为内吞标记物用于电子显微镜观察。光转化技术利用了荧光染料在强光照下产生活性氧物种的特性。将荧光标记的样品浸入含有二氨基联苯胺（DAB）的溶液中并进行光照。染料分子产生的活性物种会氧化DAB，形成稳定且不溶性的深色沉淀物，可在电子显微镜下清晰识别2,3。由于DAB仅在荧光分子附近被氧化（因为活性氧物种寿命极短），该技术可确保只有荧光标记的结构才会含有电子致密沉淀。因此，该技术可用于研究活跃循环细胞器的精确位置和形态。

FM染料在理解突触动态方面提供了不可估量的帮助。通常在不同刺激条件下，通过荧光显微镜观察FM染料的信号。然而，将FM染料的光转化技术与电子显微镜相结合，可实现对突触小体中不同突触囊泡池以及其他超微结构组分的可视化观察。

利用 Styryl 染料光转化研究突触囊泡池

突触小泡与质膜的融合（胞吐作用）是神经递质释放和神经元间通信所必需的步骤。

本视频演示了Styro染料FM 1-43的光转化过程。为了研究黑腹果蝇（drosophila melanogaster）中的突触小泡池，首先解剖果蝇幼虫以暴露腹侧肌肉，从而制备出神经肌肉接头（NMJ）标本。将标本置于含有FM染料的缓冲液中孵育，图中以灰色显示，用于标记细胞膜。随后通过电刺激或化学刺激诱导其发生物理融合，使囊泡膜内化。刺激后的胞吐作用将用FM染料进行染色。之后洗去细胞外的FM染料，将其从质膜上清除，并在持续高强度光照条件下固定组织。染料被完全漂白，由于二氨基苯的沉淀，呈现出黑色。随后可通过透射电镜观察该沉淀物。大家好，我是来自德国戈廷根欧洲神经科学研究所Sylvia Olli实验室的Philippe o Paso。今天我们将向您展示一种在神经肌肉接头处进行FM光转换的实验方法。我们在实验室中采用此方法研究突触囊泡的循环过程。好的，现在开始操作：在解剖显微镜下进行工作。首先，将一只果蝇幼虫背面向上固定在涂有Sylgard的培养皿中。用注射器针头滴加果蝇生理盐水覆盖组织，用解剖剪沿背侧纵向剪开。随后去除内脏器官。接着，将标本拉伸并再次用图钉固定于Sylgard培养皿中。随后可利用多个腹侧肌肉来保护本实验中使用的 FM 染料免于漂白。该操作应在弱光条件下进行。用含有 90 毫摩尔氯化钾和 10 微摩尔 FM 1-43 的果蝇生理盐水覆盖夹住的果蝇标本，以化学方式刺激神经。刺激后在室温下孵育一分钟。移除刺激溶液，将固定好的果蝇放入培养皿中，并置于盛有100毫升果蝇生理盐水的烧杯中，重复浸泡两次，以在化学安全通风橱下清除细胞外的FM 1-43染料。在磷酸盐缓冲液（PBS）中加入2.5%戊二醛，于室温下固定神经肌肉接头样本45分钟。用PBS洗涤样本一次，然后将其从培养皿中取出，浸入100毫摩尔氯化铵溶液中15分钟，以淬灭残留戊二醛固定剂中的游离醛基。用正常的 PBS 清洗氯化铵溶液，将神经肌肉接头制备物置于新的培养皿中，并浸入过滤后的 1.5 毫克/毫升二氨基苯（DAB）PBS 溶液中，在 4 摄氏度下孵育 30 分钟。将样品置于配备汞灯光源（灯箱内含后向反射镜）的荧光显微镜下，使用相对较低放大倍数的干物镜进行观察。找到样本后，使用普通的蓝色激发绿色荧光滤光片组，将荧光信号调至聚焦状态。神经肌肉接头在肌肉上呈现为明亮的斑点。接下来，使用相同的荧光滤光片组，以最大强度照射样品，直至FM D完全漂白。使用20倍物镜时，通常需要30至45分钟即可。然而，光转化所需时间取决于照明强度、DAB渗入样本的程度以及所用物镜的性能。照射后，在透射光下观察样品。如果光转化已发生，应可见深棕色沉淀物。返回解剖显微镜，然后使用剪刀从幼虫上剪下已发生光转化的区域。返回解剖显微镜，然后使用剪刀从幼虫中剪下已发生光转化的区域。现在将样本放入含有磷酸盐缓冲液（PBS）的微量离心管中，操作时需在化学安全通风橱内进行，并佩戴适当的安全装备，包括手套和眼部防护装置。每份样品准备 300 微升 1% 四氧化锇溶液。现在将样品放入带有塑料盖的玻璃烧瓶中，并加入已配制的四氧化锇溶液以进行后固定。在样品孵育的同时，分别配制含 30%、50%、70%、90%、95% 和 100% 乙醇的溶液。用 PBS 清洗样品四到五次，每次五分钟。每次清洗后，使用塑料移液管将样品转移至新的烧瓶中。最后一次清洗后，将样品转移至洁净的玻璃烧瓶中。接下来，通过将样品置于系列乙醇溶液中进行脱水。首先在1 mL的30%乙醇中孵育，5分钟后使用移液管吸除乙醇，并更换为1 mL的50%乙醇。继续进行脱水，将神经肌肉接头标本依次浸入70%、90%和95%的乙醇溶液中。随后将样本在95%乙醇溶液中孵育的次数需多于在100%乙醇中孵育三次。加入两毫升1:1的EIN树脂与乙醇混合液，并将样本置于旋转器上孵育。室温下旋转孵育100% EIN 2至4小时后，将样品置于敞口烧瓶中，使残留的乙醇挥发4至6小时。将新鲜的EIN倒入模具中，加入制备好的样品，在60°C下孵育36小时。当EIN包埋样品制备完成后，使用超薄切片机和金刚石刀切出50至80纳米的薄切片I。样品被切成薄片后，切片会漂浮在刀具的水浴面上，随后可将其捞取至常规透射电镜载网上。现在可以使用常规的透射电镜技术对样品进行成像。此处展示的是利用高钾溶液刺激黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）分离的神经肌肉接头，并用FM 1-43对内化膜进行染色的结果。可以使用常规的落射荧光显微镜观察神经末梢的荧光。在持续照明下，染料会完全漂白，当照明继续时，由于二氮杂苯沉淀而出现黑色。该神经末梢含有突触小泡，但其中没有一个发生光转化。这可能是由于光照不足或DIA氨基苯在组织中渗透不良所致。相反，光照过强会导致整体终端过暗，无法分辨囊泡或细胞器；而在适当光照下，则可观察到相应的光转化现象。该显微照片显示了一个突触末梢，其中可见一群深色囊泡，表明发生了FM染料的光转化。我们刚刚向您展示了如何对用fem die标记的突触小泡进行光转化。在执行此操作时，重要的是要始终仔细校准转化步骤的照射时间。就是这样。感谢观看。祝您的实验顺利。

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科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

突触小泡池，利用苯乙烯染料的光转化的研究

本报告展示了一种机械分离单个有活性神经元的技术，该神经元保留了附着的突触前末梢。经振动解离获得的神经元具有制备快速、药理学控制优良以及在无邻近细胞干扰的情况下改善空间钳制的优点。该方法可用于突触结构的成像及膜片钳记录。...

从啮齿类动物脑片中振动解离神经元以研究突触传递和成像突触前终末

介绍了一种活体荧光成像技术，用于定量中枢神经末梢中特定突触小泡（SV）池的补充与动员过程。在同一神经末梢中监测两轮SV循环，以提供内部对照。...

使用FM染料对培养的小脑颗粒神经元中突触囊泡池再补充进行定量分析

本视频演示了一种利用荧光染料研究表达光敏通道蛋白的黑腹果蝇（Drosophila）幼虫神经肌肉接头处突触小泡循环的实验方案。蓝光激活光敏通道蛋白，引发钙离子内流及突触小泡的胞吐作用。荧光染料嵌入神经元膜中，并在内吞过程中被摄入，导致荧光增强。随后的蓝光刺激诱导胞吐作用并释放染料，表现为荧光信号减弱。...

分析突触小泡循环与荧光染料摄取 黑腹果蝇 幼虫

本视频演示了为光学分析回收突触小泡而制备培养神经元的实验步骤。该过程包括对突触小泡蛋白进行荧光标记以及通过免疫染色来标记和可视化神经元内的回收小泡。...

制备用于回收突触囊泡光学分析的培养神经元

我们介绍了使用苯乙烯基FM染料对功能性神经末梢中的突触囊泡循环进行成像的方法。该方案不仅适用于诱发性突触活动，还可用于自发性和微小突触活动的检测。本方案拓展了可有效评估的突触事件类型。<br...

利用FM染料检测诱发性、自发性和微小突触活动期间的突触囊泡再循环

本文介绍了一种利用突触小泡蛋白2-pHluorin构建体和全内反射荧光显微镜技术研究神经母细胞瘤细胞中神经递质囊泡动态的方法。同时报道了图像处理与数据分析的策略。...

使用TIRFM和pH敏感型GFP探针评估SH-SY5Y神经母细胞瘤细胞中神经递质囊泡动态：细胞成像与数据分析

在此，我们展示了如何定量分析突触活性区的数量及其空间分布 果蝇...

分析长期光照后黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）感光细胞的突触调节

突触小泡（SV）循环是神经元突触处细胞间通讯的核心机制。FM染料的摄取与释放是定量检测SV内吞和外吐的主要方法。本文中，我们比较了在果蝇（Drosophila）神经肌肉接头（NMJ）模型突触上驱动FM1-43循环的所有刺激方法。...

突触处的FM染料循环：高钾去极化、电刺激与光敏通道蛋白刺激的比较

我们描述了一种用于培养神经元中突触小泡（SV）循环的光学检测方法。将该方案与双重转染技术结合，可同时表达突触前标记物和目的蛋白，从而定位突触前位点及其突触小泡循环能力，并确定目的蛋白的作用。...

一种用于检测过表达突触前蛋白的培养神经元中突触小泡循环的光学检测方法

描述了两种相关方法，用于可视化突触传递所需的亚细胞事件。这些方案通过活细胞成像技术，实现对突触前钙离子内流和突触囊泡膜融合动态过程的实时监测。 体外...

肌萎缩侧索硬化症模型中突触功能的实时荧光检测

学习利用苯乙烯染料FM 1-43的光转化技术研究黑腹果蝇突触小泡池的方法。该技术通过解剖幼虫暴露神经肌肉接头，经化学刺激和强光照射实现染料光转化，为突触动力学研究提供有效的可视化手段。

利用 Styryl 染料光转化研究突触囊泡池

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