2010年2月15日
FM染料在理解突触动态方面提供了不可估量的帮助。通常在不同刺激条件下,通过荧光显微镜观察FM染料的信号。然而,将FM染料的光转化技术与电子显微镜相结合,可实现对突触小体中不同突触囊泡池以及其他超微结构组分的可视化观察。
本视频演示了Styro Dye FM 1-43的光转化过程。为了研究黑腹果蝇(drosophila melanogaster)的突触小泡池,首先解剖果蝇幼虫以暴露腹侧肌肉,从而制备出神经肌肉接头(NMJ)标本。将标本孵育在含有FM染料的缓冲液中,图中以灰色显示,用于标记细胞膜。
随后通过电刺激或化学刺激诱导其发生物理融合,使囊泡膜内化。刺激后的胞吐作用将用FM染料进行染色。之后洗去细胞外的FM染料,将其从质膜上清除,并在持续高强度光照条件下固定组织。染料被完全漂白,由于二氨基苯的沉淀,呈现出黑色。
随后可通过透射电子显微镜观察该沉淀物。大家好,我是来自德国哥廷根欧洲神经科学研究所 Sylvia Olli 实验室的 Philippe o Paso。今天我们将向您展示一种在神经肌肉接头中进行 FM 光转换的实验方法。
我们在实验室中使用此方法研究突触囊泡的循环。好的,现在开始吧。在解剖显微镜下操作,首先将一条果蝇幼虫背侧朝上固定在一个硅化处理的培养皿中。
用注射器针头滴加果蝇生理盐水覆盖组织,用解剖剪沿背侧纵向切开。随后去除内脏器官。接着,将标本拉伸并再次用图钉固定于Sylgard培养皿中。
随后可利用几块腹侧肌肉来保护本实验中使用的 FM 染料免于漂白。该操作应在低光照条件下进行。用含有 90 毫摩尔氯化钾和 10 微摩尔 FM1 43 染料的果蝇生理盐水覆盖夹住的果蝇标本,以化学方式刺激神经。
刺激后,在室温下孵育一分钟。移除刺激溶液,并将插有果蝇的培养皿浸入盛有 100 毫升果蝇生理盐水的烧杯中,清洗两次,以去除细胞外的 FM 1-43 染料,操作过程需在化学安全通风橱中进行。
将神经肌肉接头样品在含有2.5%戊二醛的磷酸盐缓冲液(PBS)中固定,室温下处理45分钟。用PBS洗涤样品一次,然后将其从培养皿中取出,浸入100毫摩尔浓度的氯化铵溶液中15分钟,以淬灭残留戊二醛固定剂中的游离醛基。
用正常的 PBS 清洗氯化铵溶液,将神经肌肉接头制备物放入新的培养皿中,并浸入过滤后的 1.5 毫克/毫升二氨基苯(DAB)PBS 溶液中,在 4 摄氏度下孵育 30 分钟。将样品置于配备汞灯光源的荧光显微镜下,汞灯灯箱内含后置反射镜,使用相对较低放大倍数的干式物镜进行观察。
找到样品后,使用普通的蓝色激发绿色荧光滤光片组,将荧光信号调至清晰对焦。神经肌肉接头在肌肉上呈现为明亮的斑点。
接下来,使用相同的荧光滤光片组,以最大强度照射样品,直至 FM D 完全漂白。使用 20 倍物镜时,通常需要 30 至 45 分钟。然而,光转化所需时间会因光照强度、DAB 渗入样品的程度以及所用物镜的不同而有所差异。
光照后,在透射光下观察样本。若光转化已发生,应可见深棕色沉淀物。返回解剖显微镜,然后使用剪刀从幼虫中切下光转化的区域。
返回解剖显微镜,然后使用剪刀从幼虫中剪下已发生光转化的区域。现在将样品放入含有 PBS 的微量离心管中,在化学安全通风橱内操作,并佩戴适当的安全装备,包括手套和护目用具。
每份样品准备 300 微升 1% 四氧化锇溶液。将样品放入带有塑料盖的玻璃瓶中,加入已配制的四氧化锇溶液以进行后固定。在样品孵育的同时,分别配制含 30%、50%、70%、90%、95% 和 100% 乙醇的溶液。
用 PBS 每次五分钟,清洗样品四到五次。每次清洗后,使用塑料移液管将样品转移至新的烧瓶。最后一次清洗后,将样品转移至洁净的玻璃烧瓶中。
接下来,通过将样品置于系列乙醇溶液中进行脱水。首先在1 mL的30%乙醇中孵育,5分钟后使用移液管吸除乙醇,并更换为1 mL的50%乙醇。
继续进行脱水处理,将神经肌肉接头样本依次置于70%、90%和95%的乙醇溶液中孵育。随后,将样本在95%乙醇溶液中孵育的次数需多于在100%乙醇中孵育三次的次数。加入两毫升1:1的EIN树脂与乙醇混合液,并将样本置于旋转器上孵育。
室温下旋转孵育100% EIN 2至4小时后,将样品置于敞口烧瓶中,使残留的乙醇挥发4至6小时。将新鲜的EIN倒入模具中,加入制备好的样品,并在60摄氏度下孵育36小时。
当EIN包埋样品制备完成后,使用超薄切片机和金刚石刀切出50至80纳米的超薄切片I。样品被切成薄片后,切片会漂浮在刀具的水浴面上,随后可转移至普通的透射电镜载网上。
现在可以使用常规的透射电镜技术对样品进行成像。如图所示,采用高钾溶液刺激黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)分离的神经肌肉接头,使细胞内化膜并用FM 1-43染色。
可以使用传统的落射荧光显微镜观察神经末梢的荧光。在持续照明下,染料会完全漂白,当照明继续时,由于二氮苯沉淀,会出现黑色。该神经末梢含有突触小泡,但其中没有一个发生光转化。
这可能是由于光照不足或DIA氨基苯在组织中渗透不良所致。相反,光照过强会导致整体终端过暗,无法分辨囊泡或细胞器;而在适当光照下,则可观察到相应的光转化现象。该显微图像显示了一个突触终末,其中可见一群深色囊泡,表明FM染料发生了光转化。
我们刚刚向您展示了如何对使用 fem die 标记的突触小泡进行光转化。在进行此操作时,重要的是要始终仔细校准转化步骤的照明时间。就是这样。
感谢观看。祝您的实验顺利。
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本视频演示了使用Styro染料FM 1-43进行光转化以研究黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)突触囊泡池的操作步骤。该方法包括解剖幼虫以暴露神经肌肉接头,用FM染料孵育,并利用高强度光照进行可视化观察。
利用styryl染料的光转化对突触小泡池进行精确绘图,可实现对小泡循环动态的高分辨率分析,这是理解神经递质释放机制的关键步骤。该技术能力支持在早期神经科学药物发现中进行机制性风险降低和靶点验证,为以突触功能为治疗重点的研发项目组合决策提供依据。光学与超微结构读数的整合应用,可增强神经药理学转化研究的预测可靠性。
这种光转化方法通过在模型系统中实现突触小泡动态的直接定量分析,架起了早期发现与临床前研究之间的桥梁。