Name: 组织测定动物第移植（ACT）的含量非洲爪蟾 /em (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-05-16T17:00:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: 学习非洲爪蟾动物帽移植实验技术，通过RNA过表达和荧光标记研究基因产物如何决定原始外胚层细胞命运，观察异位组织形成并分析发育生物学机制。

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本工作获得了防盲研究基金会（为 MEZ 和 ASV 提供的职业发展奖，以及向眼科系提供的无限制资助）、E. Matilda Zeigler 基金会（MEZ 和 ASV）以及美国国立眼科研究所/国立卫生研究院（MEZ，资助号 R01EY015748 和 R01EY017964）的资助。

第一部分：ACT 实验的设置
<ol>
	<li>按照制造商建议的方法，使用其酚:氯仿纯化法（例如 mMessage mMachine 试剂盒；Applied Biosystems/Ambion，Austin，TX）制备用于注射的加帽 RNA。使用编码荧光蛋白的 RNA 作为示踪剂。我们转录黄色荧光蛋白（YFP）或 mCherry 5 的 cDNA，该 cDNA 位于 pCS2+ 表达载体中。</li>
	<li>使用微电极拉制仪将硼硅酸盐玻璃毛细管拉制成锥形玻璃尖端。我们使用 Sutter 微电极拉制仪 P-97（Sutter Instruments, Inc.，Novato，CA），操作方法如前所述 6。</li>
	<li>使用 10 X Marc's 改良林格液（MMR）储存液（10 mM MgCl2；20 mM KCl；20 mM CaCl2；50 mM HEPES；1 M NaCl；调至 pH 7.5，高压灭菌后室温保存）配制表 1 中的无菌溶液。</li>
	<li>从雄性青蛙中分离睾丸组织，并将其在含 50 μg/mL 庆大霉素硫酸盐（BioWhittaker，货号 #17-518Z）的无菌 1X MMR 溶液中 4°C 保存。此步骤可在实验开始前一周内完成，但组织活性会随时间下降。</li>
	<li>卵产出溶液（1X：150 mM NaCl，2.62 mM KCl，0.8 mM Na2HPO4，20 mM Trizma 碱，2.62 mM NaHCO3 和 2.75 mM MgSO4；调至 pH 7.6）可配制成 8X 储存液，于 4°C 保存最多两周。注意：注意该溶液中的污染问题，因为污染会影响卵的质量。</li>
	<li>制备注射用培养皿。将 1% 琼脂糖溶于 0.4X MMR 溶液中（微波炉加热溶解），取约 6 mL 熔化的琼脂糖溶液加入 60 mm 培养皿中，轻轻将弹性体模具（图 1）平铺于溶液表面以防止气泡产生，室温冷却约 20 分钟。所需培养皿数量应根据实验条件数（例如 1，YFP；2，YFP+Noggin）以及所需移植宿主胚胎数量确定。在我们的实验中，每种实验条件至少需要 20 个移植宿主胚胎。在 18–19°C 条件下，胚胎处于第 15 阶段的时间约为一小时。若完成 20 次移植需耗时一小时，则假设宿主胚胎能接受全部移植，需设置两个受精时间点。因此共需四个注射培养皿（2 个实验条件 × 2 个受精时间点 = 4）。将培养皿于 4°C 保存，最多可保存一周。</li>
	<li>使用 1% 琼脂糖 + 0.7X MMR 溶液并配合模具制备帽状结构分离培养皿，数量与注射培养皿相同，另加每个受精时间点一个额外培养皿（4 + 2 个受精时间点 = 6）。</li>
	<li>在显微注射前一天傍晚，向雌蛙注射 500 单位人绒毛膜促性腺激素。将雌蛙在 16–18°C 下过夜保存。</li>
</ol>
第二部分. Xenopus laevis 胚胎的RNA显微注射
A. 显微注射前准备
<ol>
	<li>移除激素诱导的雌性个体，并将其分别置于含有1X产卵液（ELS）的独立容器中。 注意： 我们不使用在ELS中存放超过两小时的鸡蛋，因为鸡蛋质量会下降。因此，大约在操作前一小时 体外 受精后，我们将弃去养殖箱中所有卵子，仅收集新产的卵。</li>
	<li>通过剪断针尖制备显微注射用针头，以获得25-35 μm 直径。将针头放置于皮升注射仪上，并校准至每次注射量为 10 nL。</li>
	<li>将培养箱设定为 14°C.</li>
	<li>雌性产卵约一小时后，用移液管将卵从水槽中取出，放入60 mm的培养皿中。尽可能去除卵周围的ELS，并替换为1×MMR。卵可立即受精，或在1×MMR中保存最多一小时。进行移植实验时，最好在上午11点、中午12点和下午1点左右分三批进行，每批将两个培养皿中的卵（单层，装至80%满）立即受精。注射后，将卵置于 14°C 以便它们生长至帽状结构分离所需的阶段（8.5–9期）和移植所需阶段（15期；参见第一部分，上述第6项）。</li>
	<li>为了检测睾丸的质量，我们通常在清晨进行受精实验（约上午8点），以便在第一个雄性的精子无活性时，能够从另一只雄性中提取睾丸备用。注意：我们将约0.25个睾丸在1 mL 1× MMR中匀浆，每皿卵母细胞加入约5至7滴。</li>
	<li>体外 用匀浆后的睾丸组织使卵子受精，一小时后使用去胶液去除卵子的胶质膜164μl 1 M DTT + 10 mL 1 M Tris（pH 8.8），加至50 mL经高压灭菌的超纯水。等待胚胎发育至二细胞期后开始分选，此过程在约2小时后完成 18°C 或在室温下孵育1.5小时（22°C).</li>
	<li>使用移液管将色素分布均匀且分裂均等的胚胎（如图3左侧动物帽所示）挑选出来，转移到含有0.4X MMR + 6% Ficoll的注射培养皿孔中。</li>
</ol>
B. 显微注射
<ol>
	<li>将 Parafilm 覆盖在 60 mm 培养皿盖的顶部。用移液器吸取 2 μl 第一个 RNA 样品点加到 Parafilm 上，并使用 PLI-100 吸取样品以填充注射针。开始注射前，务必确认针头仍能准确释放 10 nL 样品。</li>
	<li>在一个培养皿中，向 20-30 个两细胞期胚胎（两个卵裂球）注射 500 pg YFP RNA；在另一个培养皿中，注射目标基因（例如 20 pg Noggin RNA）与 YFP RNA 的混合物。</li>
	<li>在另一个注射用培养皿中，每时间点放置 100-200 个未注射的胚胎，并加入 Ficoll 溶液。这些胚胎应与注射后的胚胎同时放入和取出培养箱。这些胚胎将作为第四部分中使用的宿主。</li>
	<li>注射后，将所有胚胎在 14°C 下过夜培养。对所有时间点重复上述操作。</li>
</ol>
第三部分：分离显微注射胚胎的动物极帽
<ol>
	<li>清晨尽早到达，对胚胎进行分期处理，最早的时间点应为9期。移除未存活的胚胎，随后按不同时间点分批进行以下操作。</li>
	<li>倒掉每块培养板中的Ficoll溶液，重新加入0.7X MMR/庆大霉素溶液。在帽状结构分离培养皿中加入足量的0.7X MMR/庆大霉素溶液。使用移液器将胚胎从注射用培养板孔中脱离，并转移至新配制的帽状结构分离培养皿中。</li>
	<li>在0.7X MMR + 庆大霉素溶液中分离动物帽结构，同时保留2至3个完整胚胎用于分期鉴定。可使用装配有黄色吸头（弯曲至400 μm）的Gastromaster，或使用一对尖头5号镊子进行操作。</li>
	<li>将分离的动物帽放回14°C培养箱中，直至次日。宿主胚胎应与动物帽同时从培养箱中取出，以确保其发育阶段与供体组织保持一致。</li>
</ol>
第四部分. 将囊移植到 flank 部位
<ol>
	<li>从14°C培养箱中取出第一个时间点的帽状组织和胚胎，并对胚胎进行分期。根据所注射的示踪剂类型，筛选出荧光均匀的黄色或红色阳性帽状组织（图2）。</li>
	<li>计数帽状组织数量，并取出两倍数量的12–13期胚胎，转移至新配制的含庆大霉素的0.7X MMR溶液注射皿中。使用尖头#5镊子小心去除每个胚胎的卵膜。将去膜后的胚胎转移至含有帽状组织的培养皿中，操作需谨慎。由于失去卵膜保护，胚胎在液面处容易迅速解体。</li>
	<li>使用胃部操作器（黄色吸头，200–250 μm弯丝，最高档位）或#5镊子，在14–15期胚胎侧面切除一个边长约200 μm的方形区域（图3）。随后，将一个帽状组织切成两半（使用胃部操作器或#5镊子），并将其中一半组织植入宿主胚胎的切口内。轻轻旋转胚胎使其贴合培养皿孔壁，促进愈合。在胚胎处于15期期间尽可能多地完成此操作。对所有时间点重复该步骤。</li>
	<li>胚胎通常在30分钟内完成愈合。使用#5镊子轻轻刮除死亡细胞（白色）。随后将胚胎在18°C下过夜培养。</li>
	<li>在解剖荧光显微镜下，筛选出带有荧光标记移植组织的胚胎，并将其重新放回18°C继续培养至42–43期。</li>
	<li>用三卡因麻醉动物。此时可在荧光解剖显微镜下拍照记录。完成后，可对样本进行固定、切片及免疫染色，或使用特定组织标记物进行原位杂交（in situ hybridization）分析。</li>
</ol>
<img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig1.jpg" alt="用于高通量DNA或蛋白质分析的8x12网格多重微阵列示意图" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1. 用于制备胚胎固定培养皿弹性体模具的有机玻璃设计。将一块50 mm × 50 mm、厚25 mm的有机玻璃加工成带圆角的38 mm × 38 mm方形凹槽（深度约5 mm）。在塑料表面钻出直径1.5 mm、深1 mm的圆形且等距排列的孔穴。为制备显微注射培养皿用的弹性体模具，按照生产商说明，将Sylgard弹性体倒入该有机玻璃凹槽中并使其固化。此弹性体模具用于制作注射用板和帽分离板。
<img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig2.jpg" alt="明场、mCherry荧光、合并图像；细胞观察过程的显微图像" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 图 2. 移植前对动物极帽进行筛选至关重要，因为基因表达可能存在差异。左侧的动物极帽在整个组织中均匀表达 mCherry，而右侧的外植体表达呈斑片状，将被弃用。
<img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig3.jpg" alt="鱼类侧线系统研究；显微图像；感觉器官细节；生物学研究。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 图3. 移植动物帽细胞后，宿主蝌蚪在体侧发育出类似眼睛的结构。 荧光图像已叠加在明场图像上。

<ol><li>Smith, W. C., Harland, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+cloning+of+noggin%2C+a+new+dorsalizing+factor+localized+to+the+Spemann+organizer+in+Xenopus+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Expression cloning of noggin, a new dorsalizing factor localized to the Spemann organizer in Xenopus embryos.</a> Cell. 70, 829-840 (1992).</li>
<li>Lamb, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+induction+by+the+secreted+polypeptide+noggin%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Neural induction by the secreted polypeptide noggin.</a> Science. 262, 713-718 (1993).</li>
<li>Green, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Methods+in+Developmental+Biology%3A+Xenopus+%26+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Molecular Methods in Developmental Biology: Xenopus & Zebrafish.</a> Methods in Developmental Biology. , Humana Press. Towata, N.J. (1999).</li>
<li>Viczian, A. S., Solessio, E. C., Lyou, Y., Zuber, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+functional+eyes+from+pluripotent+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of functional eyes from pluripotent cells.</a> PLoS Biol. 7, e1000174-e1000174 (2009).</li>
<li>Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+choosing+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A guide to choosing fluorescent proteins.</a> Nat Methods. 2, 905-909 (2005).</li>
<li>Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+patch-pipettes+and+sharp+electrodes+with+a+programmable+puller%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Making patch-pipettes and sharp electrodes with a programmable puller.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
<li>Lan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noggin+Elicits+Retinal+Fate+in+Xenopus+Animal+Cap+Embryonic+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Noggin Elicits Retinal Fate in Xenopus Animal Cap Embryonic Stem Cells.</a> Stem Cells. , (2009).</li>
</ol>

在本视频中，我们展示了经典技术的我们的版本所使用的 非洲爪蟾 生物学家，我们对其进行了调整以创建动物帽移植实验。在室温下 非洲爪蟾 胚胎在9至15期发育非常迅速。通过将其置于14°C环境中，可减缓胚胎发育速度，从而在一次实验中完成更多移植操作。若需将胚胎培养至更晚的发育阶段（&gt;42/43）时，我们建议使用转基因venus YFP动物，因为注射的荧光蛋白信号在较年长的蝌蚪中会逐渐减弱。我们利用该检测方法证实了表达EFTFs或Noggin的动物帽组织被特化为形成类眼组织。该检测方法可作为一种简单测试，用于确定目的基因是否对特定细胞命运的决定具有必要性。

<table><tbody><tr><td>mMessage mMachine SP6 试剂盒</td><td>Applied Biosystems</td><td>AM1340</td><td></td></tr><tr><td>硼硅酸盐毛细玻璃管（1.0 mm 外径 × 0.5 mm 内径）</td><td>FHC, Inc.</td><td>27-30-1</td><td></td></tr><tr><td>Sutter 微量移液器拉制仪</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>硫酸庆大霉素 [50 mg/ml]</td><td>Fisher Scientific</td><td>BW17-528Z</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard/弹性体试剂盒 1.1 磅</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9644388</td><td></td></tr><tr><td>60 × 15 mm 聚苯乙烯培养皿</td><td>USA Scientific, Inc.</td><td>8609-0160</td><td></td></tr><tr><td>人绒毛膜促性腺激素</td><td>Intervet Inc.</td><td>22219</td><td></td></tr><tr><td>Pico-Injector 显微注射系统</td><td>Harvard Apparatus</td><td>650003</td><td></td></tr><tr><td>Torrey Pines Scientific ECHOtherm 培养箱</td><td>Fisher Scientific</td><td>11-680-21</td><td></td></tr><tr><td>移液管</td><td>Krackeler Scientific, Inc.</td><td>6290-20635A</td><td></td></tr><tr><td>Dumostar #5 镊子</td><td>Fisher Scientific</td><td>11295-10</td><td></td></tr></tbody></table>

利用动物帽移植（act）实验进行组织决定研究 xenopus laevis

Tissue Determination Using the Animal Cap Transplant (ACT) Assay in Xenopus laevis

许多蛋白质在胚胎发育过程中具有双重作用。那些在特定组织中调控细胞命运决定的蛋白质，也可能影响胚胎更大区域的发育。这使得分析其在特定组织中的作用变得困难。例如，noggin过表达在Xenopus laevis胚胎导致包括眼睛在内的整个前部区域扩张1,2. 从这一结果尚不清楚Noggin在眼发育决定中是发挥直接作用，还是通过引起神经组织的扩展而间接影响眼睛的形成。这种复杂的表型使得研究其在细胞命运决定中与眼睛相关的特异性功能变得难以分析。我们已开发出一种能够克服该问题的检测方法。利用细胞的多能性特性Xenopus laevis动物帽3，我们开发了一种检测基因产物等分子功能的实验方法noggin或眼区转录因子（EFTFs），通过将该组织移植到胚胎侧面，将外胚层帽转化为特定的组织或细胞类型4. 尽管我们发现Noggin蛋白处理或一组转录因子均可在动物极帽中决定视网膜细胞命运，但该方法也可用于鉴定参与其他组织命运决定的基因产物。

为了确定组织是否已决定分化命运，将过表达基因产物的动物极帽组织移植到正在发育的Xenopus laevis胚胎的侧 flank 区域。

利用动物帽移植（ACT）实验进行组织决定研究 Xenopus laevis

许多蛋白质在胚胎发育中发挥双重作用。那些调控特定组织中细胞命运决定的蛋白质，也可能影响发育……

ACT 检测的总体目标是验证目的基因是否能够决定原始外胚层向特定细胞命运分化。该实验流程首先在发育中的 XUS lavis 胚胎中过表达编码荧光报告基因以及目的基因的 RNA。下一步是分离表达过量 RNA 的动物极帽或原始外胚层组织，并将其培养至 15 期。该实验步骤的第三步是去除15期宿主胚胎侧 flank 部位的组织。最后一步是将供体动物帽组织的一半移植到宿主胚胎的 flank 部位，并将宿主培养至42至43期。实验结果通过切片及针对组织特异性标志物的免疫染色显示，出现了异位组织形成，例如类似眼睛的结构。大家好，我是来自纽约州立大学上州医学院眼科系的and sine。今天我将向大家展示一种我们称之为动物帽移植实验的方法，该方法是我与Mike Suber合作开发的。我们两个实验室都使用这一实验来研究足以促进眼睛形成的基因。那么，让我们开始吧。首先准备用于注射的帽状RNA，转录noggin或其他目的基因以及YFP作为示踪剂。同时准备好MMR基础溶液、8倍卵产液储存液以及用于胚胎注射的针头。使用定制的弹性体模具制作胚胎固定培养皿。将1% AROS溶于0.4 XMMR中，用微波炉加热融化，每种实验条件制备一个注射用培养皿。取约六毫升该溶液转移至60毫米培养皿中。将弹性体模具轻轻放置在溶液上以防止产生气泡，并静置冷却约20分钟。在室温下，为每种实验条件制备一个盖片隔离板，使用1% AGROS加0.7 XMMR，并采用与上述注射板相同的方法和模具。为每个时间点准备额外的平板。有关计算时间点的详细信息，请参阅配套的书面实验方案。接下来进行分离。取自雄性青蛙的组织进行检测，并将组织置于含有50微克/毫升庆大霉素的1倍XMMR无菌溶液中，在4摄氏度下保存。此步骤可在实验开始前一周内进行，但需注意精子会随着时间推移而降低活性。在显微注射前一天傍晚，给雌鱼注射 500 单位人绒毛膜促性腺激素。将雌鱼在 16 至 18 摄氏度下过夜。现在一切准备就绪，可于次日进行显微注射。首先移除经激素诱导的雌鱼，并将其分别放入含有一个XELS的独立水族箱中。通过剪断针尖来制备显微注射用的注射针。为了获得25至35微米的直径，将针头安装到PLI 100皮升注射仪上，并校准使其每次注射量为10纳升。将培养箱温度设置为14摄氏度，通过在注射RNA后将胚胎置于该较低温度下，可减缓胚胎发育，从而在一次实验中完成更多移植操作。在受精前约一小时，从鱼缸中取出卵子。雌鱼产卵后，再等待一小时，使用移液器将新产的卵子从鱼缸中移出。注意不要使用在ELS溶液中存放超过两小时的卵。由于卵的质量会下降，应将卵放入60毫米的培养皿中。每个培养皿中的卵单层分布，约占皿面积的80%。尽可能去除卵中的ELS，并替换为一份XMMR。卵子可在一份XMMR中保存长达一小时。随后使用匀浆化的睾丸组织对卵子进行体外受精。最好在上午11:00、中午12:00和下午1:00左右分三批对胚胎进行受精，以便使其发育至所需阶段：用于帽分离的8.5至9期，以及用于移植的15期。卵子受精后一小时，使用D型琼脂溶液去除卵子的胶状包被，并用大量0.1 XMMR溶液洗涤，然后等待受精卵发育至二细胞期。开始分选。准备一个注射皿，其中加入含有6% Ficoll的0.4 XMMR溶液。当胚胎发育至两细胞期时，使用转移移液管将色素分布均匀且分裂均等的胚胎分选至注射皿的孔中。首先将显微注射用的拉制毛细管尖端轻柔地拉伸，使其覆盖在60毫米培养皿盖的上方。用移液器将2微升RNA样品滴加到生物膜上并吸取。使用皮升注射仪（pico injector）填充注射针头。在开始注射前，务必确认针头仍能准确释放10升样品。将RNA注射到两个处于两细胞期的胚胎中。每个胚胎注射500皮克的Y-F-P-R-N-A，每次注射20至30个胚胎，并置于同一培养皿中。另取20至30个胚胎，每个注射20皮克的Nain RNA，该RNA已与Y-F-P-R-N-A预先混合，注射后放入培养皿中。此外，每个时间点另取100至200个未注射的胚胎，置于另一含有FICO溶液的注射皿中。将这些胚胎与注射过的胚胎同时移入和移出培养箱。这些是用于注射后移植菌盖的宿主。将所有胚胎在14摄氏度下过夜培养。对所有计划的时间点重复此操作。经过过夜培养后，可分离动物极帽。请于清晨尽早到达，对胚胎进行分期处理。同时记得将未注射的宿主胚胎从培养箱中移除。最早的时间点应在第九阶段。首先，移除未存活的胚胎。随后，从存活的胚胎中分离动物极帽，将每个时间点的胚胎分批处理，转移至动物极帽分离培养皿中。加入足量的 0.7 XMMR 加庆大霉素溶液。然后将每块含有已注射胚胎的培养皿中的培养液倒出，并重新加入 0.7 XMMR 加庆大霉素溶液。使用移液器将胚胎从注射用培养皿的孔中轻轻吹下，并转移至 freshly prepared cap isolation dish 中。使用装有弯成400微米的黄色尖端的胃部操作器，或使用一对锋利的5号镊子，在0.7 XMMR加庆大霉素溶液中分离动物极帽组织。保留两到三个完整的胚胎用于分期鉴定。分离动物极帽后，将其与宿主胚胎一同放回14摄氏度的培养箱中，直至次日将帽组织移植到宿主胚胎的侧 flank 部位。从14摄氏度培养箱中取出第一个时间点的帽状体和宿主胚胎，根据荧光阳性且发育阶段一致的标准对胚胎进行筛选和分类。计数帽状体数量并移除。使用尖头5号镊子将宿主胚胎数量加倍转移至新制备的注射皿中，注射皿内含0.7 XMMR加庆大霉素溶液。从每个宿主胚胎上移除勒内膜。将它们转移到带有盖子的培养皿中，但需小心操作，因为缺少了勒内膜。可以使用装有黄色吸头且在最高档位下配有200至250微米弯丝的胃部操作器，或使用5号镊子，使胚胎在水面迅速分离。在14至15期胚胎的侧面移除一个200微米见方的区域。然后再次使用胃部操作器或5号镊子，将组织帽切成两半，并将组织放入宿主胚胎上所形成的孔洞中。将胚胎在孔中轻轻转动以促进愈合。在胚胎处于15期时，尽可能对所有胚胎进行此操作。对所有时间点重复该步骤。胚胎通常在30分钟内愈合。使用5号镊子，以轻柔的刷动动作去除呈白色的死亡细胞。将移植后的胚胎在18摄氏度下培养过夜。经过过夜孵育后，在解剖荧光显微镜下操作，筛选出移植组织带有荧光标记的胚胎。将选出的胚胎放回18摄氏度环境中继续培养，直至发育至42至43期。当动物达到所需发育阶段时，用三卡溶液进行麻醉，置于荧光解剖显微镜下观察并拍照。随后可将移植的胚胎进行固定、切片和免疫染色，或使用特定组织的标记物进行原位杂交。以下是移植后一天表达荧光示踪剂和noggin的供体组织在宿主蝌蚪中的代表性结果。请注意组织在蝌蚪侧面聚集成团的现象。接受仅表达荧光示踪剂的受控供体组织的宿主胚胎，已开始将动物帽细胞整合到其体侧。几天后，接受表达 nain 的供体细胞的蝌蚪在体侧形成类似眼睛的结构，而接受对照供体组织的蝌蚪则在皮肤表面呈现荧光标记的细胞。我们刚刚向您展示了如何在爪蟾（Zaps Lavis）中进行动物帽移植实验。进行此检测时，重要的是要记住在当天操作之前将所有物品准备就绪，以免胚胎发育速度超过您处理的速度。就是这样。感谢观看，祝您的实验顺利成功。

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生物学

组织测定动物第移植（ACT）的含量非洲爪蟾</em

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成年Xenopus可及组织的高效全面取样技术

学习非洲爪蟾动物帽移植实验技术，通过RNA过表达和荧光标记研究基因产物如何决定原始外胚层细胞命运，观察异位组织形成并分析发育生物学机制。

利用动物帽移植（ACT）实验进行组织决定研究 Xenopus laevis

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