Name: 货物装载到驱动蛋白供电分子梭 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-03T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 了解驱动蛋白驱动的分子梭系统组装方法，用于纳米级货物运输研究。本实验展示如何将纳米球装载到微管上，并利用荧光显微镜观察运输过程，为神经科学与生物物理学研究提供可重复的高效技术方案。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们非常感谢Jonathon Howard，他的研究团队开发了滑动运动测定实验的基本方案，我们在此基础上进行了后续改进。感谢美国国家科学基金会（NSF）资助项目DMR0645023提供的经费支持。

1）缓冲液与试剂
这些溶液应提前配制，并分装成方便使用的等份量储存。每份等份量应包含一次典型实验所需的足够溶液，且每次运动性检测均应使用新鲜的等份样品。以下方案中也注明了储存条件和典型的分装体积。
1. BRB80 缓冲液（80 mM PIPES，1 mM MgCl2，1 mM EGTA，溶于去离子蒸馏水（dd水），用KOH调节pH至6.9）
<ul>
	<li>用去离子水配制100 mL 0.5 M EGTA储备液，用2 M NaOH溶液调节pH至7.0。</li>
	<li>用去离子水配制100 mL 1 M MgCl2储备液，溶液经高压灭菌。</li>
	<li>将24.2 g PIPES和3.1 g KOH颗粒加入约800 mL去离子水中，搅拌至溶解。用1 M KOH溶液调节pH至6.9。加入2 mL 0.5 M EGTA储备液和1 mL 1 M MgCl2储备液，用去离子水定容至1000 mL。</li>
	<li>分装至50 mL离心管中，于-20°C冷冻保存以备后续使用。正在使用的BRB80溶液可于4°C或室温保存。</li>
</ul>
2. 氯化镁，MgCl2（dd 水中 100 mM）
<ul>
	<li>用双蒸水稀释，配制成终浓度为 100 mM 的溶液。</li>
	<li>分装至 0.5 mL 微量离心管中，每管 10 μL，于 -20 °C 保存以备后续使用</li>
</ul>
3. 鸟苷-5'-三磷酸二钠盐，GTP（dd水配制，25 mM，用NaOH调节pH至7）
<ul>
	<li>称取适量并溶于双蒸水中，用 2 M NaOH 溶液调节 pH 至 7。</li>
	<li>通过测量 260 nm 处的紫外吸光度验证浓度。（使用消光系数 11.7 x 103 M−1cm−1）。</li>
	<li>分装（每份 10 μL）至 0.5 mL 微量离心管中，于 -20 °C 保存以备后续使用。</li>
</ul>
4. 二甲基亚砜，DMSO
<ul>
	<li>分装（每份10 μL）至0.5 mL微量离心管中，于-20 °C保存以备后续使用。</li>
</ul>
5. 紫杉醇（1 mM，DMSO 中）
<ul>
	<li>在通风橱中称量并用DMSO溶解，配制成终浓度为1 mM的溶液。</li>
	<li>分装（每管20 μL）至0.5 mL微量离心管中，于-20 °C保存以备后续使用。</li>
</ul>
6. D-(+)-葡萄糖（dd 水中 2 M）
<ul>
	<li>称取并溶解于双蒸水中，配制成终浓度为 2 M 的溶液。</li>
	<li>分装至 0.5 mL 微量离心管中，每管 20 μL，于 -20 °C 保存以备后续使用。</li>
</ul>
7. 葡萄糖氧化酶（2 mg/mL，溶于 BRB80）
<ul>
	<li>用BRB80溶解，配制成终浓度为2 mg/mL的溶液。</li>
	<li>分装至0.5 mL微量离心管中（每管20 μL），于-20 °C保存以备后续使用。</li>
</ul>
8. 二硫苏糖醇，DTT（dd 水中配制成 1 M）
<ul>
	<li>在通风橱中用去离子水溶解，配制成终浓度为 1 M 的溶液。</li>
	<li>分装至 0.5 mL 微量离心管中，每管 20 μL，于 -20 °C 保存以备后续使用。</li>
</ul>
9. 过氧化氢酶（0.8 mg/mL，溶于BRB80缓冲液）
<ul>
	<li>分至少两个阶段将样品溶解于BRB80中，最终浓度为0.8 mg/mL。通过测量276 nm和406 nm处的紫外吸光度确定每个阶段的浓度（276 nm处的消光系数为3.1 × 105 M-1 cm-1，406 nm处为2.2 × 105 M-1 cm-1，使用公式A = cL）。</li>
	<li>分装（每份20 μL）至0.5 mL微量离心管中，于-20 °C保存以备后续使用。</li>
</ul>
10. 腺苷-5'-三磷酸（ATP）（100 mM，溶于 100 mM MgCl2 中）
<ul>
<li>用去离子水配制 100 mM MgCl2 储存液。称取干燥粉末，溶解于该储存液中，以获得 100 mM 的终浓度。</li>
<li>通过测量 260 nm 处的紫外吸光度验证浓度。（使用消光系数 15.4 × 103 M−1cm−1）。</li>
<li>分装（每份 20 μL）至 0.5 mL 微量离心管中，于 -20°C 保存以备后续使用。</li>
</ul>
11. 酪蛋白溶液（BRB80 中含 20 mg/mL 酪蛋白）
<ul>
<li>在50 mL离心管中，将约3 g酪蛋白加入30 mL去离子水中，涡旋混合约1小时，直至溶液形成较稠的质地。</li>
<li>在约15000 g条件下离心30分钟，用0.5 μm和0.2 μm针头滤器过滤上清液。</li>
<li>通过测定280 nm处的紫外吸光度确定上清液浓度（使用消光系数0.67 mL mg-1 cm-1），然后用BRB80缓冲液稀释至20 mg/mL。</li>
<li>分装（每管20 μL）至0.5 mL微量离心管中，于-20 °C保存以备后续使用。</li>
</ul>
2.）标准溶液
这些溶液需在实验当天配制，实验结束后应予以丢弃。每种配制1 mL。
1. BRB80CS0.5
<ul>
	<li>将酪蛋白溶液用BRB80稀释至终浓度为0.5 mg/mL，并置于冰上保存。该溶液在驱动蛋白之前引入流动池，有助于驱动蛋白吸附到表面后保持其活性。</li>
</ul>
2. BRB80CA
<ul>
	<li>用 BRB80 缓冲液配制 0.2 mg/mL 的酪蛋白和 1 mM ATP，置于冰上保存。在将驱动蛋白引入流动池之前，用此溶液进一步稀释。</li>
</ul>
3. BRB80T
<ul>
	<li>将紫杉醇溶液用BRB80稀释至终浓度为10 μM，并在室温下保存。该溶液用于稳定微管。</li>
</ul>
4. BRB80CT
<ul>
	<li>在BRB80缓冲液中配制10 μM紫杉醇和0.2 mg/mL酪蛋白，室温保存。该溶液用于进一步配制抗荧光淬灭剂和微管溶液。</li>
</ul>
5. BRB80AF
<ul>
	<li>在BRB80CT缓冲液中配制20 mM D-葡萄糖、20 μg/mL葡萄糖氧化酶、8 μg/mL过氧化氢酶、10 mM DTT和20 μM ATP，室温保存。该溶液用于稀释链霉亲和素和纳米球，并在流动池中“洗去”多余的链霉亲和素。通过调节该溶液中的ATP浓度，可控制驱动蛋白的运动速度。</li>
</ul>
3）驱动蛋白制备
<ul>
	<li>表达包含野生型全长的驱动蛋白构建体 Drosophila melanogaster 驱动蛋白重链及C端His标签在大肠杆菌中表达，并按所述方法使用Ni-NTA柱进行纯化 6.</li> 
<li>分装（10 μL 每个样品置于0.5 mL微量离心管中，于-80℃保存80°C 以供后续使用。这些等分试样中活性驱动蛋白的浓度约为 200 nM。7</li>
	<li>对于典型实验，用 BRB80CA 将驱动蛋白溶液稀释 20 倍。将该溶液标记为 KIN20，并置于冰上保存。</li>
</ul>
4.）微管制备
<ul>
	<li>在0.5 mL微量离心管中，配制25 μL聚合反应液：含4 mM MgCl2、1 mM GTP和5% DMSO（v/v）的BRB80缓冲液。</li>
	<li>取6.25 μL上述溶液加入一份20 μg冻干的生物素化微管蛋白中。</li>
	<li>涡旋混匀后，置于37°C水浴中孵育30分钟以促进聚合。用BRB80T缓冲液稀释100倍，轻轻涡旋混匀。将该溶液标记为MT100，并于室温保存。</li>
	<li>用BRB80AF缓冲液将MT100溶液稀释10倍，标记为MT1000。</li>
</ul>
5）链霉亲和素和纳米球溶液
在 BRB80AF 中配制浓度为 100 nM 的 AlexaFluor568 标记链霉亲和素。标记为 STV100，并置于冰上保存。同样，将纳米球在 BRB80AF 溶液中稀释 5000 倍。标记为 NS5000，并置于冰上保存。
6）流动池构建
使用两张玻璃盖玻片和双面胶带构建一个流动池。该流动池长约2 cm，宽约1 cm，高约100 μm，体积约为20 μL。通过移液枪从一侧向流动池中加入溶液，并用滤纸从另一侧通过毛细作用将液体吸出。
7.）倒置实验组装
首先用酪蛋白对玻璃表面进行包被，以使驱动蛋白在吸附后仍能保持其功能活性。吸附驱动蛋白后，引入由驱动蛋白固定的微管。随后用荧光标记的链霉亲和素对微管进行包被。洗去多余的链霉亲和素后，加入生物素化的聚苯乙烯荧光素纳米微球（直径40 nm）。表面吸附的静止纳米微球与运动的微管发生碰撞，并被装载到微管上（图1）。
以下列出了各溶液的添加顺序以及在引入下一种溶液前的孵育时间。
<ul>
	<li>BRB80CS0.5，5 分钟</li>
	<li>KIN20，5 分钟</li>
	<li>MT1000，5 分钟</li>
	<li>STV100，5 分钟</li>
	<li>BRB80AF，3 次</li>
	<li>NS5000</li>
</ul>
8.）显微镜观察
在引入纳米球后，立即将流动池安装到显微镜载物台上。本实验使用配备100倍油镜（数值孔径1.45）、X-cite 120光源（EXFO，加拿大安大略省）和iXon EMCCD相机（ANDOR，美国康涅狄格州South Windsor）的Eclipse TE2000-U荧光显微镜（Nikon，美国纽约州Melville）。使用FITC滤光立方体（#48001）和TRITC滤光立方体（#48002，Chroma Technologies，美国佛蒙特州Rockingham）分别对流动池底面的纳米球和微管进行成像。曝光时间为0.2秒，两次曝光间隔为2秒。
<img src="/files/ftp_upload/2006/2006fig1.jpg" alt="驱动蛋白驱动运输中微管上生物素-链霉亲和素纳米球结合示意图。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1. 分子穿梭系统的示意图。

<ol><li>Agarwal, A., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomolecular+motors+at+the+intersection+of+nanotechnology+and+polymer+science%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Polymer+Science%22%5BJournal%5D)">Biomolecular motors at the intersection of nanotechnology and polymer science.</a> Progress in Polymer Science. 35 (1-2), 252-252 (2010).</li>
<li>Howard, J., Hunt, A. J., Baek, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+of+microtubule+movement+driven+by+single+kinesin+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Assay of microtubule movement driven by single kinesin molecules.</a> Methods Cell Biol. 39, 137-137 (1993).</li>
<li>Agarwal, A., Katira, P., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Millisecond+curing+time+of+a+molecular+adhesive+causes+velocity-dependent+cargo-loading+of+molecular+shuttles%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Millisecond curing time of a molecular adhesive causes velocity-dependent cargo-loading of molecular shuttles.</a> Nano Lett. 9 (3), 1170-1170 (2009).</li>
<li>Diez, S., Reuther, C., Dinu, C., Seidel, R., Mertig, M., Pompe, W., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretching+and+Transporting+DNA+Molecules+Using+Motor+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Stretching and Transporting DNA Molecules Using Motor Proteins.</a> Nano Lett. 3 (9), 1251-1251 (2003).</li>
<li>Bachand, G. D., Rivera, S. B., Boal, A. K., Gaudioso, J., Liu, J., Bunker, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+and+transport+of+nanocrystal+CdSe+quantum+dot+nanocomposites+using+microtubules+and+kinesin+motor+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Assembly and transport of nanocrystal CdSe quantum dot nanocomposites using microtubules and kinesin motor proteins.</a> Nano Lett. 4 (5), 817-817 (2004).</li>
<li>Coy, D. L., Wagenbach, M., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinesin+takes+one+8-nm+step+for+each+ATP+that+it+hydrolyzes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Kinesin takes one 8-nm step for each ATP that it hydrolyzes.</a> J. Biol. Chem. 274 (6), 3667-3667 (1999).</li>
<li>Katira, P., Agarwal, A., Fischer, T., Chen, H. -Y., Jiang, X., Lahann, J., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+performance+of+protein-resisting+surfaces+at+ultra-low+protein+coverages+using+kinesin+motor+proteins+as+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Materials%22%5BJournal%5D)">Quantifying the performance of protein-resisting surfaces at ultra-low protein coverages using kinesin motor proteins as probes.</a> Advanced Materials. 19, 3171-3171 (2007).</li>
<li>Vigers, G. P. A., Coue, M., McIntosh, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+Microtubules+Break+Up+Under+Illumination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent Microtubules Break Up Under Illumination.</a> J. Cell Biol. 107, 1011-1011 (1988).</li>
<li>Brunner, C., Hess, H., Ernst, K. -H., Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lifetime+of+biomolecules+in+hybrid+nanodevices%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Lifetime of biomolecules in hybrid nanodevices.</a> Nanotechnology. 15 (10), S540-S540 (2004).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

经过少量修改后，多种研究团队已成功采用本方案构建基于驱动蛋白-微管的运动性检测体系。最终运动溶液中的 10 mM DTT 可替换为 0.5% β-巯基乙醇。标准溶液（BRB80AF、KIN20 和 MT1000）若存放超过 2 小时则不应使用。任何含有紫杉醇的溶液，尤其是含有微管的溶液，切勿置于冰上。流动池过度暴露于紫外激发光下会导致功能组分（微管和驱动蛋白）发生光损伤8。若流动池中含有高氧扩散性的聚合物（如聚苯乙烯纳米微球），该效应尤为显著9。

<table><tbody><tr><td>腺苷-5&amp;rsquo;-三磷酸 (ATP)</td><td>Invitrogen</td><td>A1049</td><td></td></tr><tr><td>生物素标记微管蛋白</td><td>Cytoskeleton, Inc.</td><td>T333</td><td></td></tr><tr><td>酪蛋白</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-0376</td><td></td></tr><tr><td>过氧化氢酶</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-9322</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-葡萄糖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-7528</td><td></td></tr><tr><td>二甲基亚砜 (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-8779</td><td></td></tr><tr><td>二硫苏糖醇 (DTT)</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0610</td><td></td></tr><tr><td>乙二醇双(2-氨基&amp;#8211;乙基醚)-&lt;em&gt;N,N,N&amp;#8242;,N&amp;#8242;&lt;/em&gt;-四乙酸 (EGTA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E-4378</td><td></td></tr><tr><td>FluoSpheres 生物素化微球，40 nm，黄绿色荧光 (505/515)</td><td>Invitrogen</td><td>F-8766</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖氧化酶</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-7016</td><td></td></tr><tr><td>鸟苷-5&amp;rsquo;-三磷酸 (GTP)</td><td>Roche Group</td><td>106399</td><td></td></tr><tr><td>氯化镁 (MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>63069</td><td></td></tr><tr><td>紫杉醇 (Paclitaxel, Taxol)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1912</td><td></td></tr><tr><td>1,4-哌嗪二乙磺酸，哌嗪-1,4-双(2-乙磺酸)，哌嗪-N,N&amp;#8242;-双(2-乙磺酸) (PIPES)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6757</td><td></td></tr><tr><td>氢氧化钾 (KOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6310</td><td></td></tr><tr><td>氢氧化钠 (NaOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>480878</td><td></td></tr><tr><td>链霉亲和素 Alexa Fluor 568 偶联物</td><td>Invitrogen</td><td>S11226</td><td></td></tr></tbody></table>

驱动蛋白动力分子穿梭车的货物装载

Cargo Loading onto Kinesin Powered Molecular Shuttles

细胞已经进化出复杂的分子机制，例如驱动蛋白马达蛋白和微管丝状结构，以支持细胞内物质的主动运输。驱动蛋白的尾部结构域可结合多种货物，而其头部结构域则利用储存在ATP分子中的化学能，沿微管晶格逐步移动。这些长而刚性的微管为细胞内长距离运输提供了轨道。
这些分子马达和微丝也可用作微加工合成环境中分子穿梭系统的组分1。在一种常用设计中，驱动蛋白马达通过其尾部锚定在轨道表面，而经过功能化的微管则作为由这些马达推动的运载元件。这些穿梭系统可通过生物素与链霉亲和素之间强效且特异性的结合来装载货物。关键组分（生物素化微管蛋白、链霉亲和素和生物素化货物）均可从商业途径获得。
在经典倒置运动性实验2的基础上，本文详细描述了分子穿梭装置的构建。将驱动蛋白马达蛋白吸附到预先涂有酪蛋白的表面；微管由生物素标记的微管蛋白聚合而成，附着于驱动蛋白后，再用罗丹明标记的链霉亲和素进行包被。通过将ATP浓度维持在未达到饱和的水平，使微管滑行速度达到适合装载货物的最佳状态3。最后，加入生物素化且荧光素标记的纳米微球作为货物。当滑行的微管与附着在表面的纳米微球发生碰撞时，纳米微球便会附着到微管上。
该方案可轻松修改，用于装载多种货物，例如生物素标记的DNA4、量子点5，或通过生物素标记的抗体装载多种抗原4-6。

由功能化微管在表面附着的驱动蛋白马达上滑行所构成的分子穿梭系统，可作为一种纳米级运输系统。本文描述了一种典型穿梭系统的组装方法。

细胞已经进化出复杂的分子机制，例如驱动蛋白马达蛋白和微管纤维，以支持活跃的细胞内运输。

本实验的总体目标是将纳米球装载到在激酶马达蛋白包被的表面上滑行的微管上。首先，用酪蛋白溶液包被玻璃流动池的表面；其次，将驱动蛋白马达蛋白吸附到流动池表面。该实验步骤的第三步是加入微管。最后一步是加入链霉亲和素分子，这些分子将与微管结合，然后加入纳米微球。纳米微球会结合到流动池表面，随后可被微管捕获。最终，可以通过荧光显微镜观察到纳米球如何被微管捕获并沿表面进行运输。大家好，我是来自佛罗里达大学材料科学与工程系Henry Hess博士实验室的Elaine Jen Smith。今天我们将向您展示一种倒置运动性测定实验的操作流程。我们在实验室中采用此方法研究货物在微管上的装载以及分子穿梭的运动。现在让我们开始。在开始此操作之前，按照本视频文字部分所述，新鲜配制所有储备溶液。配制好储备液后，开始进行微管制备：将25微升生长溶液加入0.65毫升的微量离心管中。然后将6.25微升生长溶液加入20微克冻干的生物素化微管蛋白中。涡旋混匀溶液，并将其置于37摄氏度水浴中孵育30分钟以促进聚合。孵育结束后，用紫杉醇缓冲液将溶液稀释100倍，并轻轻涡旋混匀。该溶液用于稳定微管。将此溶液标记为 empty 100，并在室温下保存。接着，用抗淬灭缓冲液将 MT 100 进行十倍稀释，并将此溶液标记为 MT 1000。然后通过将驱动蛋白溶液在TP缓冲液中稀释20倍来制备驱动蛋白马达。将该溶液标记为kinase in 20，并置于冰上保存。最后，配制链霉亲和素和纳米球溶液。首先，将 Alexa Fluor 568 标记的链霉亲和素加入抗荧光缓冲液（Antifa Buffer）中，使其浓度达到 100 纳摩尔。将该溶液标记为 STV 100；然后将纳米球在抗荧光缓冲液中稀释 5,000 倍，并将此混合液标记为 NS 5,000。将这两种溶液均置于冰上保存。在完成货物装载实验的溶液配制后，使用载玻片和由双面胶带隔开的盖玻片构建一个流动池。首先，在载玻片边缘粘贴两条双面胶带，两条胶带之间留出约一厘米的间隙。然后将盖玻片覆盖在胶带上。使用镊子的平边对盖玻片施加压力，以形成密封。构建的流动池长约2厘米，宽约1厘米，高约100微米，体积约为20微升。开始倒置实验装置的组装。将移液器吸头置于盖玻片与载玻片之间。然后向流动池中注入 0.5 毫克/毫升的酪蛋白溶液。该涂层可使驱动蛋白在吸附后保持其功能活性。等待五分钟，使酪蛋白溶液充分包被。接着，通过移液枪将激酶溶液引入流动池中，使其吸附驱动蛋白。加样时，将移液枪尖置于盖玻片与载玻片之间，从一侧注入溶液，同时从另一侧用吸水纸引流，以实现溶液的置换。用滤纸，使激酶吸收5分钟。接着，通过移液将MT 1000溶液加入流动池中，引入微管。待微管附着于激酶分子马达后，静置5分钟，使微管沉降并结合到激酶分子马达上。通过将 STV 100 溶液引入流动池，用荧光标记的链

cargo-loading-onto-kinesin-powered-molecular-shuttles

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

货物装载到驱动蛋白供电分子梭

单分子显微镜技术为核转运过程提供了新的见解。...

单分子成像技术观察核转运

囊泡或细胞器等货物的细胞内运输由分子马达蛋白沿极性微管进行。本方案描述了神经元内单个货物颗粒运输方向性与其相关马达蛋白的种类和相对含量之间的关联分析方法。...

利用“货物定位图谱”分析法表征运动性轴突运输货物上分子马达的组成

本文介绍了一种鉴定驱动蛋白-1（Kinesin-1）货物分子的实验方案。驱动蛋白-1重链（KIF5B）的一种无马达功能突变体会在细胞质中形成聚集体，并诱导其货物分子共同聚集。通过荧光显微镜可同时检测到这两类聚集体。该策略同样可用于鉴定其他马达蛋白的货物分子。...

利用荧光显微镜鉴定驱动蛋白-1的货物分子

我们提出一种构建分子穿梭装置的方案，其中表面附着的驱动蛋白马达推动带有染料标记的微管。驱动蛋白与表面之间的弱相互作用使其能够可逆地附着于表面，从而形成一种纳米尺度系统，该系统在保持功能完整性的同时，展现出组分的动态组装与解聚行为。...

组装由可逆附着驱动蛋白驱动的分子穿梭器

本实验方案的目的是在DNA折纸纳米结构上组装分子马达的集合体，并利用全内反射荧光显微镜观察该集合体的运动行为。...

在DNA折纸纳米结构上构建动力蛋白与驱动蛋白马达复合体用于单分子观测

双向有丝分裂驱动蛋白-5 Cin8 在运动过程中会聚集形成不断分裂和融合的簇状结构。聚集形成簇状结构还会改变 Cin8 的运动速度和方向性。本文介绍了一种利用纯化的 Cin8-GFP 进行运动性检测的实验方案，以及对 Cin8...

来自 S. cerevisiae 细胞的双向驱动蛋白-5 Cin8 单分子及分子簇的运动特性

本研究详细描述了利用Sf9-杆状病毒表达系统纯化驱动蛋白-3家族成员KIF1A(1-393LZ)的方法。体外对这些纯化的马达蛋白进行单分子及多马达滑动分析，结果显示其运动特性...

单分子分析Sf9纯化的超进程性驱动蛋白-3家族马达

本文介绍了一种新的体外培养系统，可同时对四条肌腱进行加载培养。...

离体肌腱的机械加载

钙是神经系统中一种普遍存在的信号分子，对于触发神经递质释放和突触强度的改变至关重要。本文中，我们演示了一种将Ca2+指示剂载入果蝇神经末梢的技术。同时，我们还展示了所需装置的制作过程，并强调了该技术成功实施的关键要点。...

用钙离子指示剂加载果蝇神经末梢

本文报道了通过定向分子进化技术生成Tre重组酶的方法。Tre重组酶可识别HIV-1前病毒LTR序列中预先设定的目标序列，从而实现前病毒从感染的人类细胞中的切除与根除。尽管定向分子进化技术仍处于初期阶段，但它将有助于创建定制化的酶类，作为分子手术和分子医学的研究工具。...

Tre重组酶的分子进化

了解驱动蛋白驱动的分子梭系统组装方法，用于纳米级货物运输研究。本实验展示如何将纳米球装载到微管上，并利用荧光显微镜观察运输过程，为神经科学与生物物理学研究提供可重复的高效技术方案。

驱动蛋白动力分子穿梭车的货物装载

探索更多视频