0 次观看 • 7:31 分钟 • April 30th, 2023
首先,取适量浓度的熔融琼脂糖置于锥形管中,加入一定量的温热培养基,轻轻颠倒混匀。将此混合液加入六孔板的每个孔中,使其凝固,即形成底层。接着,用目标化合物处理癌细胞,并加入所需浓度的琼脂糖。
现在,将含有每毫升所需细胞数量的混合液加入每个孔中。此为含细胞层。待培养基凝固后,将培养板在37摄氏度下孵育一周。通过将琼脂糖加入培养基中制备饲养层,并向该混合物中添加目标化合物。轻轻将此饲养层加入每个孔中,待其凝固后,将培养板在37摄氏度下孵育。
每周重复此喂养步骤,以新鲜培养基补充细胞,直至形成克隆。若待测化合物具有抑制致瘤性的功能,则会抑制细胞生长,导致孔中形成的克隆数量较少。在以下实验方案中,我们将进行软琼脂 琼脂 通过菌落形成实验研究PADI抑制剂对乳腺癌细胞致瘤性的影响。
开始此操作前,先配制3%的2-羟乙基琼脂糖。取一个洁净干燥的100毫升玻璃瓶,加入0.9克2-羟乙基琼脂糖,随后加入30毫升蒸馏水。将混合物放入微波炉加热15秒,并轻轻摇晃。重复此步骤,直至琼脂糖粉末完全溶解。接着,将含有溶液的瓶子进行高压灭菌15分钟。
将琼脂糖溶液冷却至室温后再进行后续操作。将数个5毫升和10毫升移液器置于37摄氏度培养箱中预热,以防止操作过程中琼脂糖在移液器内凝固。将预先配制的3% 2-羟乙基琼脂糖溶液瓶盖稍松开,先在微波炉中加热15秒,然后轻轻旋转混匀,再加热15秒。
摇动琼脂糖溶液时需小心,因为溶液暴露在空气中会上升并可能溢出。如果瓶中仍有未溶解的凝胶残留物,可再用微波炉加热数秒。在后续步骤中,将装有琼脂糖溶液的瓶子置于45摄氏度水浴中,以防止琼脂糖溶液过早凝固。
接着,使用预热的移液管将12毫升温热的培养基转移至一个无菌的50毫升锥形管中。立即加入3毫升3%琼脂糖溶液,并轻轻颠倒锥形管,使琼脂糖与培养基充分混匀。然后,将2毫升该混合液轻柔地加入六孔细胞培养板的每孔中,避免产生任何气泡。将六孔细胞培养板水平放置于4°C条件下孵育1小时,使混合液充分凝固。
待混合物凝固后,将培养皿放入37摄氏度的培养箱中孵育30分钟。底层现已准备就绪,可供使用。
该实验步骤的一个难点在于,确保所有细胞均匀分布,并且在将融化的琼脂糖凝胶加入各孔之前不会过早凝固,以保证在加入液体琼脂糖凝胶前细胞已充分混匀于培养基中。此外,移液器需提前预热,以避免操作过程中溶液因温度下降而凝固。
为制备含细胞的层,首先用胰蛋白酶消化MCF10DCIS细胞,并将其稀释至细胞浓度为每毫升40,000个细胞。然后使用预热的移液器吸取8毫升培养基,转移至无菌的50毫升锥形管中。立即向锥形管中加入2毫升3%琼脂糖溶液,并轻轻颠倒混匀,使琼脂糖与培养基充分混合。注意避免产生气泡。
接下来,取两毫升细胞,加入二甲基亚砜(DMSO)中浓度为2微摩尔的BB-chlor-amidine进行处理,或仅加入DMSO作为对照。处理后,将细胞与0.6%琼脂糖按1:1比例混合,使BB-chlor-amidine的终浓度为1微摩尔。然后取一毫升细胞-琼脂糖混合液,轻轻加入六孔培养板的底层中。
将六孔培养板水平放置在4°C的平坦表面上,至少静置15分钟,使顶层凝固。混合物凝固后,将培养板放入37°C培养箱中培养一周,然后添加饲养层。开始制备饲养层时,先将预先配制的3% 2-羟乙基琼脂糖溶液如前所述进行微波加热,并将琼脂糖溶液瓶置于45°C水浴中平衡。
将1毫升3%的琼脂糖溶液与9毫升温热培养基加入50毫升锥形管中,轻轻颠倒混匀,使琼脂糖与培养基充分混合。避免产生气泡。用BB-氯-脒处理混合物后,轻轻将1毫升混合物加入六孔培养板的每个孔中,每个孔均含有底层和软层。然后将六孔培养板水平放置于4°C的平面上至少15分钟,使混合物凝固。
待饲养层凝固后,将培养板放入37摄氏度的培养箱中。每周重复一次该饲养操作,通过在现有饲养层上覆盖1毫升0.3%琼脂糖培养基处理溶液,为细胞补充新鲜培养基,直至观察到克隆形成。
本文详细介绍了一种进行软琼脂集落形成实验的方案,用于评估PADI抑制剂对乳腺癌细胞致瘤性的影响。该方法包括将经处理的癌细胞与琼脂糖分层铺板,并进行培养以观察集落的形成。
软琼脂克隆形成实验为评估新化合物对癌细胞增殖及转化潜能的影响提供了一个可靠的体外平台。该方法可对肿瘤发生能力进行定量评估,有助于肿瘤药物研发早期阶段的靶点验证和机制性风险排除。其良好的可重复性和定量输出结果使其成为化合物筛选决策和推进具有预测性信心的候选化合物的关键工具。
该检测位于肿瘤学项目早期发现、先导物识别和临床前验证的交汇点。
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最后更新:29 八月 2026