循环肿瘤细胞免疫荧光检测:一种表征循环肿瘤细胞的技术

0 次观看4:05 分钟 • April 30th, 2023

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— 首先,使用抗结合溶液将分离得到的循环肿瘤细胞(CTCs)稀释至所需浓度,该溶液可保护细胞免受流体剪切力和压力损伤。接着,将聚赖氨酸包被的显微镜载玻片与细胞离心过滤卡组装成细胞离心管组件。将细胞悬液转移至该组件的加样口,随后进行细胞离心。

离心力将细胞浓缩并沉积到载玻片上的圆形区域,形成单层细胞。使用硅胶隔离器分离出细胞沉积的区域。待其干燥后,用多聚甲醛固定细胞。接着,将细胞与含有易结合细胞表面非特异性结合位点蛋白的合适封闭液共同孵育。

现在,使用感兴趣的荧光标记抗体溶液对细胞进行标记。荧光素标记的抗体可识别并结合细胞表面的特定靶分子。洗涤样本以去除未结合的抗体。加入封片液以制备用于成像的样本。

使用荧光显微镜检测与循环肿瘤细胞(CTCs)上靶标抗原结合的抗体-荧光染料偶联物所发射的荧光信号。在本实验方案中,我们将对非小细胞肺癌患者样本中的循环肿瘤细胞进行免疫荧光检测。

— 进行免疫荧光染色时,使用血细胞计数板对细胞进行计数,并将富集后的样本用0.2%抗结合溶液稀释至每100微升含1×10⁵个细胞。接着,取一支浸有50微升抗结合溶液的棉签涂抹样本室边缘,使其湿润,然后将一张多聚赖氨酸包被的玻片放入样本室中。

关闭样本室,用移液器吸取结合液并上下吹打三次,使微量移液器吸头充分涂布结合液,然后用剩余的100微升上清液重新悬浮样本。将细胞悬液转移至样本室,放入专用离心机中,在低加速度条件下以每分钟400转离心4分钟。

离心结束后,在沉淀区域周围放置一个硅胶隔离器,并将载玻片置于生物安全柜中干燥2分钟。然后,在室温下用100 µL的4%多聚甲醛固定细胞涂片样本10分钟,随后在室温下每次用200 µL PBS洗涤2分钟,共洗涤3次。

最后一次洗涤后,在室温下用封闭剂孵育30分钟,以阻断任何非特异性结合,随后加入100微升目标抗体溶液进行标记。将标记好的载玻片置于100毫米×15毫升的培养皿中,载玻片下方垫一张用2毫升无菌水润湿的吸水纸,将培养皿盖好,于4摄氏度避光过夜孵育。

第二天早晨,按照所示方法用 PBS 清洗样本三次,然后加入 10 µL 适当的封片溶液和盖玻片封片。接着用透明指甲油密封盖玻片。

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最后更新:1 八月 2026