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— 首先将薄层组织切片置于氨水溶液中,以实现温和的抗原修复。将切片转移至多聚赖氨酸包被的载玻片上。带负电荷的细胞会与带正电荷的多聚赖氨酸结合。接着加入过氧化氢,以阻断内源性过氧化物酶活性。用Tris缓冲盐溶液(TBS)清洗载玻片。
TBS 通过破坏蛋白质交联,促进抗体对抗原的接触。用封闭液洗涤切片,以减少非特异性抗体结合。加入一抗孵育过夜。一抗与其存在于细胞表面的特异性抗原结合。用 TBS 洗涤玻片。
加入与一抗Fc区域结合的生物素标记的二抗。用链霉亲和素-生物素过氧化物酶复合物洗涤切片。接着,向组织中加入过氧化物酶的显色底物。过氧化物酶将显色剂转化为有色的不溶性产物。
用苏木精溶液对组织进行复染。苏木精可与细胞的酸性组分结合,使其呈现蓝色。在光学显微镜下观察组织。抗原呈红色,而由于苏木精染色,细胞呈蓝色。在以下实验方案中,我们将进行免疫组织化学染色,以鉴定支气管内活检样本中的CD45和CD1a细胞。
– 在切片包埋的活检组织之前,仔细调整切片机刀架的角度,使刀片与组织块表面完全贴合。然后,使用镊子将每份支气管内活检样本至少切下两片厚度为 2 µm 的切片,并立即转移至含 0.05% 氨水的蒸馏水溶液中。45 至 90 秒后,用多聚-L-赖氨酸包被的载玻片逐个捞取展开的组织切片,并静置干燥至少 1 小时。
切片干燥后,根据实验需要对载玻片进行标记,并在每个样本周围绘制疏水屏障。接着,向切片上加入1毫升新配制的过氧化物酶阻断液。30分钟后,移除过氧化物酶阻断液,用TBS缓冲液洗涤切片三次,每次5分钟。然后吸去TBS,加入1% BSA封闭液,室温孵育30分钟,以阻断非特异性抗体结合。
孵育结束后,加入用TBS稀释的目标一抗,盖上盖玻片,于室温下避光孵育过夜。次日早晨,用TBS洗涤载玻片三次,然后加入目标二抗,室温孵育两小时。孵育结束后,再用新鲜TBS洗涤三次,随后将样品置于新鲜配制的链霉亲和素-生物素过氧化物酶复合物溶液中,室温孵育两小时,最后再进行三次TBS洗涤。
然后用新鲜配制的AEC过氧化物酶底物溶液处理载片20至30分钟。当染色强度达到理想程度时,将载片在流动的自来水下冲洗5分钟,随后用滤过的Mayer氏苏木精溶液对切片进行复染。2分钟后,再次将载片在流动的自来水下冲洗5分钟,然后沥干载片,并用永久性水溶性封片剂覆盖切片,将样本置于80°C的烘干箱中干燥。
待其冷却后,使用 DPX 封片剂和盖玻片封片,并在光学显微镜下以 40 倍放大倍数进行观察分析。