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— 从含有理想细胞密度的白血病细胞悬液开始。离心后将细胞重悬于含血清的培养基中。添加血清可促进细胞持续生长,并推动细胞进入不同的细胞周期时相。将细胞稀释于溴脱氧尿苷(BrdU)标记溶液中,并在生理条件下培养所需的时间。
处于合成期(S期)的细胞会摄取BrdU——一种胸腺嘧啶类似物——在DNA复制过程中取代胸腺嘧啶。离心细胞以去除多余的BrdU,并将细胞重悬于适当的培养基中。将细胞转移至多孔板中。在生理条件下培养细胞,孵育不同时间。
在不同时间点,细胞会依次经过 S 期的剩余阶段、G2 期、有丝分裂期以及 G1 期,并进入下一个细胞周期,从而可据此估算细胞增殖情况。通过抗体染色标记 BrdU 与荧光染料偶联的抗体,并利用流式细胞术检测细胞增殖。
在流式细胞仪内,荧光染料吸收激光能量并发生荧光。增殖细胞的数量与所观察到的荧光强度直接相关。在本示例方案中,我们将演示对急性淋巴细胞白血病细胞进行脉冲标记。
— 本实验方案使用急性淋巴细胞白血病细胞系 NALM6,但也可应用于任何非贴壁细胞系。将 NALM6 细胞在 T-75 培养瓶中,用完全 RPMI 培养基于 37 摄氏度、5% 二氧化碳空气环境中培养。收集细胞并进行细胞计数后,将细胞重悬于完全 RPMI 培养基中,浓度为每毫升 2 × 10⁶ 个细胞。
用BrdU完全RPMI将细胞按1比2稀释,使最终细胞浓度达到1 × 10⁶ 个细胞/毫升。操作BrdU时需谨慎,因其具有潜在的致突变性和致畸性。在37°C、5% CO₂条件下孵育45分钟。
接着,用完全RPMI培养基将细胞按1:10的比例稀释。以150 × g离心5分钟,小心弃去所有上清液。用少量完全RPMI培养基重悬细胞,进行细胞计数,并将细胞浓度调整至1 × 10⁶ 个细胞/毫升。将1毫升细胞悬液移入48孔板的每个孔中。
向任何未使用的孔中加入1毫升DPBS,以获得更可重复的实验结果。根据实验设计所需检测的指标,在37°C、5%二氧化碳空气环境中孵育至预定时间点。孵育结束后,将所有细胞转移至FACS管中。
用1毫升体积的PBS依次冲洗每个孔,最终总体积为5毫升。在150 × g 条件下离心5分钟,并小心吸去所有上清液。细胞现在已准备好进行染色,应立即进行。如果需要进行表面染色,应在固定前立即进行。