白血病细胞亚细胞组分的制备:一种从白血病细胞制备细胞组分与核组分的方法

0 次观看4:25 分钟 • April 30th, 2023

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在白血病细胞中,某些大分子(如部分肿瘤抑制蛋白)在细胞核与细胞质之间的转运受到异常调控。这些蛋白的错误定位使其失去活性,导致白血病细胞不受控制地增殖。我们可通过制备白血病细胞的细胞质和细胞核组分,来确定这些蛋白的异常定位情况。

首先取所需体积的白血病细胞于微量离心管中,离心以形成细胞沉淀。将沉淀重悬于低渗裂解缓冲液中,然后加入所需浓度的去污剂。低渗裂解缓冲液可使细胞吸水膨胀并破坏细胞质膜,而核膜保持完整,从而分离出胞质组分。去污剂有助于从胞质细胞器中提取蛋白质。

将裂解后的细胞悬液离心,并将上清液转移至新的离心管中。上清液含有细胞的胞质组分。为制备核组分,用完全裂解缓冲液重悬剩余的沉淀,并加入去垢剂。离心后,将存在于上清液中的核组分收集至微量离心管中。将胞质组分和核组分于-80摄氏度保存,以备后续分析。在以下实验方案中,我们将演示如何从白血病细胞中制备亚细胞组分。

刺激和/或药物处理孵育完成后,将细胞转移至分别标记的1.5毫升微量离心管中,在4摄氏度下以200 × g离心5分钟,形成细胞沉淀。弃去上清液后,用1毫升预冷的含磷酸酶抑制剂的PBS重悬细胞沉淀。在4摄氏度下以200 × g离心5分钟。移除上清液,并将所得全细胞提取物沉淀置于冰上,用于后续实验操作。

为制备细胞质组分,用50微升1×低渗缓冲液轻轻重悬细胞沉淀。将细胞置于冰上孵育15分钟,使其充分膨胀。在通过去垢剂梯度实验确定特定细胞类型所需的最佳去垢剂浓度后,向每个样品中加入0.8至2.5微升去垢剂,并在最高转速下涡旋振荡10秒。

为验证细胞裂解,需在加入去垢剂前后,于相差显微镜下观察细胞。所有细胞均具有致密且呈深色的细胞核,其周围为呈亮环状的细胞质。裂解完成后,在 4 摄氏度条件下,以 14,000 ×g 离心 30 秒。小心操作,避免扰动沉淀,将上清液转移至预冷并标记好的微量离心管中,并将此细胞质组分于 -80 摄氏度保存,直至进一步分析。

确保完全去除细胞质组分,以防止对细胞核组分造成污染。

向含有核组分的剩余沉淀中加入50 µL完整裂解缓冲液,通过上下吹打重悬。为溶解与核膜相关的蛋白质,加入2.5 µL去垢剂,最高速涡旋振荡10秒,冰上孵育30分钟。最高速涡旋振荡30秒后离心。然后将上清液转移至预冷并标记的微量离心管中,将此核组分于-80°C保存,直至进一步分析。

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最后更新:15 八月 2026