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— 肿瘤的化疗通常靶向高度增殖的细胞,从而留下一小部分干细胞群体,导致肿瘤复发。这些干细胞被称为侧群细胞。由于侧群细胞缺乏特异性细胞标志物,我们采用染料外排实验将其从其他肿瘤细胞中分离出来。
首先,将 Hoechst 染料加入分离的斑马鱼肿瘤细胞中。Hoechst 可进入细胞核并结合 DNA 小沟中富含 A-T 的区域。侧群细胞表面具有较高浓度的 ABC 转运蛋白,导致染料迅速外排至细胞外,表现出低荧光信号。
取另一管经 Hoechst 处理的肿瘤细胞,并向其中加入维拉帕米。此管作为对照,因为维拉帕米可阻断 ABC 转运蛋白,导致 Hoechst 外排减少,从而增加侧群细胞中的荧光强度。
将对照组和样品细胞在避光条件下孵育。接着,用碘化丙啶对细胞进行复染,该染料仅进入死细胞的细胞核,并嵌入DNA碱基之间,使死细胞呈现红色。最后,使用荧光激活细胞分选仪对细胞进行分选。在以下实验方案中,我们将从斑马鱼中分离肿瘤细胞的侧群细胞。
— 细胞染色前,将Hoechst染料用无核酸酶的水稀释,配制成1毫克/毫升的工作液。将配好的溶液用铝箔包裹后于4摄氏度保存;然后将49.1毫克维拉帕米溶解于1毫升DMSO中,配制成100微摩尔的抑制剂溶液。
接下来,通过向FACS管中加入2.5微升DMSO、15微升浓度为1毫克/毫升的Hoechst染料以及10的6次方个肿瘤细胞,并用FBS/PBS补至终体积为1毫升,来制备样品。
为制备对照组,加入FBS/PBS、2.5微升100毫摩尔的维拉帕米、15微升1毫克/毫升的Hoechst染料。加入10的6次方个肿瘤细胞,终体积为1毫升。
将样品和对照组在28摄氏度的水浴中避光孵育120分钟。孵育结束后,立即将细胞置于冰上,并保持避光。
在 300 × g、4 °C 条件下离心细胞 6 分钟。然后弃去上清液,并用 1 mL FBS/PBS 重悬细胞进行洗涤。再次于 300 × g、4 °C 离心 6 分钟。
待细胞离心成团后,吸除上清液,并将细胞重悬于1毫升FBS/PBS中。样品置于4摄氏度保存,直至进行细胞分选。细胞分选前15分钟,向每1毫升细胞悬液中加入2微升浓度为1毫克/毫升的碘化丙啶储备液。随后,充分涡旋混匀样品。
使用荧光激活细胞分选仪分析染色的斑马鱼T-ALL细胞悬液。采用紫外激光激发Hoechst染料,同时使用488纳米激光检测碘化丙啶或GFP阳性T-ALL细胞。
— 不同细胞类型所需的细胞数量、染料浓度、孵育温度和孵育时间可能需要优化,这些条件的任何改变都可能显著影响检测结果。