2010年9月6日
在本方案中,我们描述了一种研究胶质细胞异质性对轴突生长影响的新方法 体外 共培养系统。将大鼠皮层胶质细胞培养至汇合后,与高度纯化的大鼠背根神经节神经元进行共培养。在同一培养体系中直接比较不同胶质细胞对神经元黏附和轴突生长的影响。该方法为直接研究胶质细胞异质性对神经元黏附和轴突生长的影响提供了新途径。
本实验的总体目标是研究胶质细胞异质性对背根神经节(DRG)轴突生长和细胞去极化的影响。首先,从新生大鼠大脑皮层中分离胶质细胞以实现该目标。实验的第二步是培养并纯化大鼠胚胎背根神经节(DRG)神经元。
该实验步骤的第三步是将纯化的背根神经节(DRG)神经元添加到胶质细胞上。实验步骤的最后一步是观察细胞轴突的外显子生长,并进行细胞染色和定量分析。最终可获得实验结果。
通过延时记录和免疫荧光显微镜观察,该实验表明背根神经节神经元的生长受到异质性胶质细胞的影响。大家好,我来自加州大学河滨分校神经病学系的神经影像实验室。今天我们将向您展示一种新的体外培养方法,用于研究胶质细胞对神经元生长的异源性影响。
在我们的实验室中,我们采用这种新方法研究神经元与胶质细胞之间的相互作用。现在开始进行实验研究。为了建立胶质细胞与背根神经节神经元(DRG)的共培养体系,我们首先在组织培养罩内进行胶质细胞的培养:将已预先灭菌的24孔培养板底部铺上无菌圆形玻璃盖玻片,然后将这些盖玻片置于6孔培养板的孔中,用多聚赖氨酸包被,并在室温下孵育2小时。
用蒸馏水将盖玻片和培养板清洗两次,然后自然晾干。随后,分别向每个24孔板或6孔板中加入200微升或2毫升含10%胎牛血清(FBS)的DCO2修饰的伊格尔培养基(DMEM)。次日,在37°C、5%二氧化碳条件下孵育培养板。
对正压流解剖罩进行灭菌。打开紫外灯照射20分钟,然后用70%乙醇喷洒罩内所有表面,静置15分钟后方可使用。取两至六日龄、通过低温麻醉的两隻大鼠幼崽头部开始实验。
然后用手术剪在枕骨大孔基底部剪断头部。使用虹膜剪沿矢状缝切开颅骨,并剥离颅骨。取出前脑,放入预冷的Leibovitz L-15培养基中,并对第二个头部重复上述操作。
然后在体视显微镜下操作,小心去除覆盖在脑组织上的硬脑膜、软脑膜以及血管,分离出皮层,并用 L-15 培养基多次洗涤。
使用显微手术剪将皮层切成小块。然后在含有0.125%胰蛋白酶和EDTA的L-15培养基中,37摄氏度孵育15分钟。接着,将组织块转移至含有20毫升含20%胎牛血清(FBS)的DMEM的50毫升离心管中。
加入DS,使其终浓度为10微克/毫升。然后使用火焰抛光的巴斯德吸管轻轻吹打组织悬液约20次,以分离细胞。最后用含10% FBS的DMEM洗涤细胞一次,并用血细胞计数板测定细胞数量。
然后以每平方厘米5,000至10,000个细胞的密度接种细胞,并在37°C和5%二氧化碳条件下培养。每周更换两次培养基,以分离、纯化和培养背根神经节(DRGs)。首先,按照之前的方法准备24孔板,孔内放置经多聚赖氨酸包被的玻璃盖玻片。
向每个盖玻片中加入 100 微升 NVF 培养基,于次日在 37 摄氏度条件下孵育培养板。按之前方法对正压流超净台进行灭菌。随后,在体视显微镜下,从经二氧化碳安乐死的妊娠大鼠子宫中分离出 E12 至 E15 大鼠胚胎并开始操作。
分离带有相连背根神经节的脊髓,并转移至含有冷的Leibovitz L-15培养基的35毫米培养皿中。使用显微外科镊子,在不损伤背根神经节的前提下,从脊髓上小心解剖分离相连的背根神经节,并在冷的L-15培养基中切断相连的轴突。
通常,当从一条脊髓中分离出全部背根神经节(DRG)时,可获得20至30个DRG。将所有分离的DRG置于含0.125%胰蛋白酶和EDTA的溶液中,在37摄氏度、5%二氧化碳条件下孵育20分钟,然后用含20%胎牛血清(FBS)的DMEM培养基洗涤细胞一次,接着加入DNA酶,并使用火焰抛光的巴斯德移液管反复吹打数次,以形成均匀的细胞悬液(如胶质细胞处理所示)。再用MBF培养基进行第二次洗涤,计数细胞后,将细胞以每孔5,000个的密度接种至24孔板中预先准备好的盖玻片上,过夜孵育以纯化背根神经节神经元。
接种后18至24小时。72小时后,更换为含有20 µM 5-氟-2-脱氧尿苷的Neurobasal培养基。之后每次更换一半培养基,使用不含FUDR的Neurobasal培养基。
每隔一天更换一次培养基。胶质细胞接种后约20天,将生长至融合状态,并在与神经元共培养前24小时准备好两种细胞类型。
将胶质细胞培养基更换为MBF培养基。按照先前所述方法制备纯化的背根神经节(DRGs)单细胞悬液。测定细胞密度。
然后将神经元以每平方厘米500个细胞的密度接种到胶质细胞上。可使用图像分析软件和针对特定细胞类型的免疫化学方法,在不同时间点分析神经元存活及胶质细胞上的神经突生长情况。以下是胶质细胞和背根神经节(DRG)神经元分别培养以及共培养的示例:共培养20天后,胶质细胞达到汇合状态。
在培养过程中,通过相差显微镜观察发现,不同胶质细胞亚群形成 distinct 的生长模式和形态。并通过免疫细胞化学证实,GFAP 阳性的星形胶质细胞占培养细胞总数的 90% 以上。
采用我们使用氟尿苷(FUDR)处理72小时的方法,背根神经节(DRG)神经元的纯度在六天内可高达99%,并在神经元与胶质细胞的共培养体系中表现出其独特的形态特征,神经突生长密集。在接种后四小时内,DRG神经元即可在胶质细胞上迅速贴附并启动神经突生长;而神经元的贴附与神经突延伸过程受到胶质细胞亚群的影响,形成可在相差显微镜下清晰识别的特定生长模式亚结构。接下来,我将通过免疫细胞化学方法,向您展示如何将DRG神经元与不同类型的胶质细胞共培养,以研究胶质细胞异质性对神经突生长的影响。
进行本实验操作时,非常重要的一点是必须轻柔处理组织,并始终将细胞置于培养基中。切勿将其暴露于空气中,以免细胞干燥。就是这样。
感谢观看,祝您的实验顺利。
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本实验方案描述了一种利用体外共培养系统研究胶质细胞异质性对轴突生长影响的方法。将大鼠大脑皮层胶质细胞与纯化的大鼠背根神经节神经元进行共培养,以比较其对神经元黏附和轴突生长的作用。
理解胶质细胞的异质性对于降低神经治疗靶点验证的风险至关重要,因为星形胶质细胞亚群对轴突生长和神经元行为具有不同的影响。该共培养方法可实现对胶质细胞-神经元相互作用的机制性筛选,通过识别支持性或抑制性微环境,提高早期发现阶段的预测可信度。该方法为评估胶质细胞异质性如何影响再生潜能提供了与疾病相关的体系,有助于指导中枢神经系统修复和神经退行性疾病项目的研发决策。
该方法可整合到从靶点验证到先导化合物鉴定的整个发现流程中,其中胶质细胞-神经元相互作用的数据可揭示化合物在与疾病相关的体系中对轴突生长的影响。