Name: 评估气孔反应活细菌细胞，采用全叶成像 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-10-02T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: 了解全叶成像技术评估植物气孔对活细菌的反应，使用荧光显微镜实时观察保卫细胞运动。该方法减少叶片损伤，适用于研究植物与病原菌的早期互作机制。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本研究得到了美国国立卫生研究院的资助以及德克萨斯大学阿灵顿分校为MM设立的资金支持。

1. 植物培养与细菌制备
<ol>
 <li>开始本实验时，将拟南芥（Arabidopsis）种子播种于体积比为1:1:1的培养基混合物中（Redi-earth plug and seedling mix、Sun Gro）、细蛭石和珍珠岩。</li>
 <li>将植株置于生长室中培养（22°C，每日光照12小时，光照强度为100 μmol/mm2/sec，相对湿度为65±5%），根据需要进行浇水。植株在4–6周后即可使用，此时应具有开花前充分展开的幼嫩叶片。</li>
 <li>实验开始前两天准备细菌培养物。从甘油保存液中取假单胞菌（Pseudomonas syringae）在改良LB培养基（10 g/L胰蛋白胨、5 g/L酵母提取物、5 g/L NaCl，pH 7.0，1.5%琼脂）上划线培养，并在28°C下培养24小时。使用新鲜培养物制备接种液，且每次均须从甘油保存液开始接种培养平板，因为细菌在连续传代后毒力会下降。</li>
 <li>用平板上生长的细菌接种10 mL液体培养物于50 mL锥形瓶中，培养基为P. syringae专用培养基。在28°C下剧烈振荡培养过夜，直至其在600 nm处的光密度（OD）达到0.8至1.0之间。</li>
 <li>测定600 nm处的OD值，并在1360 ×g下离心10分钟收集菌体。将菌体沉淀重悬于蒸馏水中，调节最终OD值为0.2。此OD值对应菌液浓度为108菌落形成单位（CFU）/mL。待细菌准备就绪后，即可进行叶片处理并开展检测。</li>
</ol>
2. 叶片染色及与细菌共孵育
<ol>
 <li>为了对叶片进行染色，首先配制 20 μM 的碘化丙啶（propidium iodide，PI）水溶液。每次染色 3 片小叶片，10 mL 溶液即足够。</li>
 <li>从生长室中取出植物，用镊子取下 3 片幼嫩且完全展开的叶片。将整片叶片浸入 PI 溶液中 5 分钟，随后取出叶片，并用蒸馏水短暂冲洗。</li>
 <li>接着将一片叶片下表面朝下放置在显微镜载玻片上，用锋利的剃刀刀片避开主脉将叶片切成四部分，使叶片平整地贴附在载玻片上。</li>
 <li>为使细菌与叶片共孵育，将 300 μL 细菌悬浮液加至载玻片上的叶片碎片下方，确保叶片下表面与接种液充分接触。</li>
 <li>将样品置于与植物培养条件相同的环境中孵育。当需要在显微镜下观察时，将叶片碎片转移至新的载玻片，下表面朝上。注意封片时无需使用盖玻片。同一叶片样品可在孵育期间多次成像，可根据研究目的设置相应的时间序列观察。</li>
</ol>
3. 显微镜观察、测量与数据分析
<ol>
 <li>此处使用激光扫描共聚焦显微镜（LSM 510 Meta，Carl Zeiss Inc.）观察叶片。观察叶片的下表面，检测PI的荧光（激发波长453 nm，发射波长543 nm和620 nm）。</li>
 <li>利用相同的叶片样品，随时间采集气孔的图像，并保存图像用于测量气孔孔径的宽度。</li>
 <li>使用LSM图像浏览器，在每个时间点对每种处理至少测量60个气孔的气孔孔径宽度。</li>
 <li>计算气孔孔径宽度的平均值和标准误差。结果的统计学显著性可采用双尾、成对Student t检验进行计算。</li>
</ol>
4. 细菌孵育后气孔反应的代表性图像
<ol>
 <li>这是一张典型的激光扫描共聚焦显微镜明场下（使用20倍物镜）观察的拟南芥（Arabidopsis）叶片表面的显微图像（图1）。</li>
 <li>碘化丙啶可染色活细胞的细胞壁，从而增强保卫细胞的可见性，并有助于识别未受损的细胞以进行数据采集（图2）。这些显微图像中可观察到一系列气孔孔径的开张状态，从完全闭合的气孔到充分开放的气孔均有呈现。</li>
 <li>完全闭合的气孔可通过保卫细胞的形态进行识别（图3），其孔径宽度被定义为0 μm。</li>
 <li>对于开放的气孔（图4），其孔径宽度通过在气孔孔口最宽处绘制一条直线进行测量。</li>
 <li>这些是本气孔开闭实验的典型结果。将拟南芥（Arabidopis）叶片在黑暗条件下与三种不同菌株的丁香假单胞菌（Pseudomonas syringae）共孵育。只有Pst DC3000菌株能够打开在黑暗中闭合的气孔，该结果基于每种细菌菌株随机选取的60个气孔的孔径宽度测量得出（图5）。</li>
</ol>
<img src="/files/ftp_upload/2185/2185fig1.jpg" alt="细胞微结构，显微镜图像，细胞形态学，生物学研究，结构分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1. 一个表面的显微照片 拟南芥 叶片 使用20倍物镜在激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）下观察叶片表面的一个视野。请注意，与经碘化丙啶染色辅助的荧光观察视野（图2）相比，气孔开度在此处并不明显。
<img src="/files/ftp_upload/2185/2185fig2.jpg" alt="植物细胞的荧光显微镜图像；红色为叶绿体，可见被标记的保卫细胞。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 图2. 碘化丙啶染色后表面的显微照片 拟南芥 叶片 使用20倍物镜在激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）下观察叶片表面的一个视野。注意气孔孔径开度的差异。黄色箭头指向完全关闭的气孔，绿色箭头指向充分开放的气孔。
<img src="/files/ftp_upload/2185/2185fig3.jpg" alt="荧光显微镜图像、细胞结构、高亮区域、光学分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 图3. 通过保卫细胞的形态及细胞间开口判断完全闭合的气孔。 开口宽度视为 0 μm。
<img src="/files/ftp_upload/2185/2185fig4.jpg" alt="偏振光显微镜；双折射分析；微尺度测量；光学性质。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图4"> 图4. 显示气孔开口宽度（μm）的开放气孔。 测量通过共聚焦激光扫描显微镜（LSCM）浏览器进行，基于穿过气孔孔口最宽区域的直线完成。
<img src="/files/ftp_upload/2185/2185fig5.jpg" alt="不同时间点气孔开度（µm）的柱状图，DC3000处理组显示增加幅度最大。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图5"> 图5. 气孔孔径的 拟南芥 与三种菌株共同孵育的叶片 Pseudomonas syringae pv. 番茄DC3118、DB29 和 DC3000。 实验期间植物保持在黑暗条件下。结果以均值（n=50–70）±标准误表示。统计学显著性通过双尾Student t检验确定。本实验重复三次，结果一致。

<ol><li>Brooks, D. M., Hernandez-Guzman, G., Kloek, A. P., Alarcon-Chaidez, F., Sreedharan, A., Rangaswamy, V., Penaloza-Vazquez, A., Bender, C. L., Kunkel, B. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+well-defined+series+of+coronatine+biosynthetic+mutants+of+Pseudomonas+syringae+pv.+tomato+DC3000%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Plant-Microbe+Interact%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a well-defined series of coronatine biosynthetic mutants of Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000.</a> Mol Plant-Microbe Interact. 17, 162-174 (2004).</li>
<li>Katagiri, F., Thilmony, R., He, S. Y. The Arabidopsis thaliana-Pseudomonas syringae interaction. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKatagiri%2C+F+%22The+Arabidopsis+Book%22">The Arabidopsis Book</a>. Somerville, C. R., Meyerowitz, E. M. , American Society of Plant Biologists. Rockville, MD. (2002).</li>
<li>Ma, S. W., Morris, V. L., Cuppels, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+DNA+region+required+for+production+of+the+phytotoxin+coronatine+by+Pseudomonas+syringae+pv.+tomato%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Plant-Microbe+Interact%22%5BJournal%5D)">Characterization of a DNA region required for production of the phytotoxin coronatine by Pseudomonas syringae pv. tomato.</a> Mol Plant-Microbe Interact. 4, 69-74 (1991).</li>
<li>Melotto, M., Underwood, W., Koczan, J., Nomura, K., He, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant+stomata+function+in+innate+immunity+against+bacterial+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Plant stomata function in innate immunity against bacterial invasion.</a> Cell. 126, 969-980 (2006).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

我们介绍了一种直接的方法，用于在完整叶片组织中测量气孔开度，从而便于轻松评估气孔对不同处理的响应。
尽管我们使用拟南芥/丁香假单胞菌（Arabidopsis/Pseudomonas syringae）这一模式系统展示了实验结果，但完整的叶片气孔测定法原则上可适用于任何植物-细菌组合。该实验方案可轻松修改，以适应其他植物和细菌病原体的生长需求。其基本原理和操作流程保持不变。此外，该方法可能有助于研究人员在维持叶片自然环境的条件下，研究保卫细胞对活体微生物以及其他刺激物和化学试剂所产生的功能响应。
由于叶片较厚且表面不平整，对完整叶片进行成像可能较为困难。通过去除叶片的主脉使其在载玻片上平整展开，并结合共聚焦显微镜技术，可缓解这一问题。然而，也可使用其他类型的荧光显微镜获取叶片表面的高分辨率图像。

<table><tbody><tr><td>碘化丙啶</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4864</td><td></td></tr><tr><td>胰蛋白胨</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1421-1</td><td></td></tr><tr><td>酵母提取物</td><td>Difco Laboratories</td><td>0127-01-7</td><td></td></tr><tr><td>氯化钠</td><td>VWR international</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>琼脂</td><td>Bio Express</td><td>J637-2500G</td><td></td></tr><tr><td>植物生长箱</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>摇床培养箱</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>激光扫描共聚焦显微镜</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

利用全叶片成像技术评估活体细菌细胞诱导的气孔响应

Assessing Stomatal Response to Live Bacterial Cells using Whole Leaf Imaging

气孔是植物表皮上自然形成的开孔，负责植物内部与外界环境之间的气体交换。气孔由一对保卫细胞构成，这些细胞能够响应多种外界因素（包括光照强度、二氧化碳浓度和相对湿度（RH））而关闭气孔孔口。气孔孔口也是病原体侵入叶片的主要途径，是病害发生的关键步骤。最近的研究揭示，在拟南芥（Arabidopsis）植物中，气孔关闭能有效抑制细菌性病害的发展，这是植物先天免疫的重要组成部分。此前，我们曾使用表皮条来评估保卫细胞对活细菌的反应（Melotto et al. 2006）；然而，同时维持植物表皮条和细菌细胞处于适宜环境条件一直具有挑战性。在电生理实验中，可通过MES缓冲液（10 mM KCl，25 mM MES-KOH，pH 6.15）使叶片表皮保持存活和健康状态；但该缓冲液不适合用于制备细菌悬浮液。另一方面，细菌可在水中保持活性，但水环境无法长期维持表皮条的存活。当表皮条漂浮在水面上时，暴露于空气中的表皮细胞在4小时内即会干燥，从而限制了实验操作的时间窗口。一种理想的评估特定刺激对保卫细胞影响的方法，应尽可能减少对气孔生理及植物自然环境的干扰。因此，我们开发了一种新的方法，用于评估保卫细胞对活细菌的反应，该方法极大减少了对叶片的损伤和操作，旨在提供一种易于重复且可靠的气孔检测方法。该方案基于用碘化丙啶（propidium iodide, PI）对完整叶片进行染色，随后将染色叶片与细菌悬浮液共孵育，并在激光扫描共聚焦显微镜下观察叶片。最终，该方法允许在接近植物遭受病原体侵袭的自然条件下，对同一活体叶片样本进行长时间的连续观察。

我们已开发出一种简单且可重复的实验方案，用于检测气孔对活细菌的响应。与先前报道的表皮撕片法相比，该方法最大限度地减少了对叶片的损伤和操作。

气孔是植物表皮上自然形成的开口，负责植物内部与外界环境之间的气体交换。它们由一对保卫细胞构成……

在此实验中，利用叶片成像技术检测保卫细胞对活体细菌细胞刺激的响应。首先，从甘油保存菌种中复苏培养细菌，并制备接种物。随后，采集健康的幼嫩叶片，并用碘化丙啶染色。将染色后的叶片切割，叶片小片置于细菌悬浮液表面进行孵育。最后在显微镜下观察叶片表面，可测量气孔开度。利用荧光显微镜获得的结果显示，气孔开度会响应细菌而发生变化。与现有方法（如使用表皮剥离）相比，该方法的主要优势在于与细菌接触的叶片保持完整，从而模拟了细菌侵入叶片的自然条件。开始本实验时，将拟南芥种子播种于体积比为1:1:1的培养基、蛭石和珍珠岩的混合物中，在光照培养箱中培养植株，并根据需要浇水。在抽薹前，当植株长出幼嫩且完全展开的叶片时，约4至6周后即可用于实验。实验开始前两天，准备细菌划线培养：将保存在甘油中的丁香假单胞菌（Pseudomonas syringae）接种到改良的LB培养基上，在28摄氏度下培养24小时。使用新鲜培养物制备接种物，并始终从甘油菌种开始接种培养平板。由于细菌在连续传代后毒力会下降，因此应使用平板上生长的细菌接种一管10毫升的假单胞菌液体培养基。将培养物置于50毫升锥形瓶中，在28摄氏度下剧烈振荡培养过夜，直至其在600纳米处的光密度（OD）达到0.8至1.0之间。在600 nm处测定OD值，并在1,360 × g条件下离心10分钟收集细胞。将细胞重悬于蒸馏水中，使最终OD值为0.2。该OD值对应每毫升含10^8个菌落形成单位。细菌准备好后，继续准备叶片并进行染色实验。首先，将碘化丙啶（propidium iodide，简称 PI）溶于水中，配制成 20 微摩尔的溶液。每次染色三片小型叶片，10 毫升溶液即足够使用。从生长室中取出植株，用镊子取下三片幼嫩且完全展开的叶片。将整片叶片浸入PI溶液中5分钟。随后取出叶片，用蒸馏水短暂冲洗。接下来，将一片叶片下表面朝下放置在显微镜载玻片上。用锋利的剃刀刀片将叶片切成四块，避开主脉，使叶片能够平铺在载玻片上，以便与细菌共孵育。在载玻片上的叶片碎片下方加入300 µL细菌悬浮液，确保叶片的下表面与接种液充分接触。将样品置于与植物生长时相同的环境条件下进行孵育。当需要在显微镜下观察叶片时，将叶片片段转移至新的载玻片上，使下表皮朝上。注意：制片时无需使用盖玻片。同一片叶片样品可在孵育过程中进行多次成像，可根据研究目的设置相应的时间序列。此处使用激光扫描共聚焦显微镜观察叶片，利用相同的叶片样品检测碘化丙啶（PI）的荧光信号以观察叶片下表面，并随时间推移采集气孔图像。保存图像用于测量气孔开口的宽度。在每个时间点，每种处理至少测量60个气孔的气孔开度宽度。使用LSM图像浏览器，计算气孔开度宽度的平均值和标准误。可采用双尾配对t检验计算结果的统计学显著性。此处 t 检验是一张典型的在激光扫描共聚焦显微镜下观察的拟南芥叶片表面的显微图像。在明场视野中，碘化丙啶对活细胞的细胞壁进行染色，从而增强保卫细胞的可见性，并有助于识别未受损的细胞。在这些显微图像中，可以观察到一系列气孔孔径开度，从完全关闭的气孔到完全张开的气孔均有呈现。完全闭合的气孔通过保卫细胞的形状来识别。开放气孔的孔径宽度被视为零微米。所示孔径宽度是通过在气孔孔隙最宽处绘制一条直线进行测量的。以下是活体叶片接种实验的典型结果。将拟南芥叶片在黑暗条件下与三种不同菌株的假单胞菌（Pseudomonas syringae）共同孵育，只有Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000菌株能够打开黑暗中的气孔，该结果通过每种细菌菌株随机选取60个气孔测量其孔径宽度得出。该技术为植物-细菌互作领域的研究人员探索植物物种对病原体早期响应的机制提供了途径。

assessing-stomatal-response-to-live-bacterial-cells-using-whole-leaf

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

评估气孔反应活细菌细胞，采用全叶成像

我们介绍了全氟十氢化萘作为浸润性封片介质的使用方法。这是一种简单的方法，可最大限度地减少生理影响，从而改善拟南芥（Arabidopsis...

一种简单的成像方法 拟南芥 使用全氟十氢萘作为浸润性成像介质的叶片成像

来源：Lee, H. et. al., 利用分裂绿色荧光蛋白系统可视化细菌感染过程中递送的效应蛋白。J. Vis. Exp.

监测植物细胞中的细菌感染与效应蛋白递送

病原菌生长的定量分析是表征多种Arabidopsis thaliana（以下简称：拟南芥）免疫反应的有力工具。本文所述方法提供了一种优化的注射浸润实验，用于定量测定丁香假单胞菌致病变种（Pseudomonas syringae pv. maculicola）ES4326...

利用细菌叶片浸润实验精细表征植物防御反应 拟南芥-丁香假单胞菌 病理系统

本文描述了研究叶绿体基质管（stromules）动态的实验方案，基质管是自叶绿体表面延伸出的充满基质的管状结构。...

利用荧光显微镜观察链管频率

我们报道了一种简单且通用的方法，可用于对拟南芥（Arabidopsis...

一种通用的封片方法 拟南芥 用于活体时间序列成像的叶片

本文介绍了一种水培植物生长检测方法，用于量化物种的存在并可视化细菌在植物根部初始定植期间以及转移到不同生长环境后的空间分布情况。...

监测细菌定植与维持 拟南芥 漂浮式水培系统中的根系

本实验方案描述了一种方法，可用于对在植物质外体中生长的Pseudomonas...

单细胞表达分析 Pseudomonas syringae 植物组织中的基因

本文介绍了几种常用的研究质膜受体激酶膜运输事件的方法。文稿中描述了详细的实验方案，包括植物材料准备、药物处理以及共聚焦成像设置。...

基于图像的方法研究气孔谱系细胞中的膜运输事件

本文介绍一种简单的方法，用于直接观察和自动测量细菌侵染下拟南芥（Arabidopsis...

气孔响应的直接观察与自动测量 Pseudomonas syringae pv. 番茄 DC3000 在 拟南芥

本方案描述了一种高通量方法，可用于同一样本中植物离子渗漏、过氧化物酶活性和胼胝质生成的评估。...

利用高通量方法评估叶片对微生物次级代谢产物的响应

本实验方案介绍了一种利用表皮撕片、透明化技术及人工智能辅助图像分析，对两个不同物种的气孔和表皮性状进行比较研究的方法。其目标是实现对气孔功能相关细胞结构的高通量、可重复定量分析，以服务于农业应用及广泛的植物学研究。...

利用表皮撕取、透明化处理及基于人工智能的图像分析表征气孔与表皮性状

了解全叶成像技术评估植物气孔对活细菌的反应，使用荧光显微镜实时观察保卫细胞运动。该方法减少叶片损伤，适用于研究植物与病原菌的早期互作机制。

利用全叶片成像技术评估活体细菌细胞诱导的气孔响应

探索更多视频