2007年7月4日
本视频介绍了一种从冈比亚按蚊细胞系中纯化沃尔巴克氏体(Wolbachia pipientis)的方法,并随后在无细胞培养基中培养该内共生菌。同时演示了检测该细菌活力的实验方法。
我叫Courtney Ston。我在约翰·霍普金斯大学布隆伯格公共卫生学院Jason Rascon博士的实验室工作。今天我们将从培养的昆虫细胞中进行细菌纯化。
实际上,这是一个非常直接的步骤。我们首先收获细胞,然后利用玻璃珠裂解法物理破坏真核宿主细胞的细胞膜。接着,通过差速离心将细菌与宿主细胞碎片分离开来。
然后我们采用一系列过滤步骤,进一步去除宿主细胞颗粒,最终仅保留纯化的细菌沉淀。这实际上是主要要求之一。这是一个细胞培养操作台,用于保持所有操作的无菌状态,因为细胞培养非常容易受到污染。
我们还需要细胞培养基以及细胞本身,并将它们培养在塑料培养瓶中。此外,还需要直径为3毫米的玻璃珠、50毫升的锥形管,以及一台能够进行高速离心的离心机,大约需要18,000 ×g 的离心力来沉淀细菌,同时也需要能够以约3,000 ×g 或2,500 ×g 离心力沉淀宿主细胞。因此,我们首先要从培养的细胞开始操作。
它们已经长好了,对吧?这些是 T75 培养瓶,每瓶中加入了 15 ml 培养基,和我们自己的一样。
首先,我们将破坏细胞层,并将其收集到一个 50 ml 离心管中。只需在细胞层上反复刮擦,即可使所有细胞脱离并悬浮于培养基中。待细胞完全进入培养基后,用移液器将细胞悬液转移至 50 ml 无菌锥形离心管中。
现在向这两种细胞悬液中加入3毫米的玻璃珠。这些玻璃珠已经过高压灭菌,实际上可以重复使用。使用后可用次氯酸钠溶液清洗并浸泡,然后再次高压灭菌,即可重新使用。
倾倒时需注意,不要让玻璃B瓶的瓶口接触到离心管的管口。每个离心管中加入约五毫升刻度线量的玻璃珠。接下来的步骤是通过物理方式破碎酵母细胞,使细菌释放到悬浮液中。
因此,我们使用涡旋振荡器,将其调至最高转速,涡旋5分钟。现在,我们将细胞与3毫米玻璃珠一起在涡旋振荡器上处理5分钟,然后用干净的移液枪将上清液转移至一个新的无菌50 mL离心管中。我们将收集新制备的悬液,该悬液包含释放出的细菌以及溶液和完整的细胞碎片。
接下来,我们将进行低速离心步骤,以便将大部分物质沉淀下来,而使细菌保留在上清液中。我们将使用离心机,在2,500 ×g 条件下离心10分钟。同时,我们将在4°C条件下进行离心,以利于沉淀物在管底的聚集。
然后将其放入此处,确保平衡后关闭,离心10分钟。现在我已经离心了含有宿主细胞碎片以及纯化细菌的上清液,离心条件为2,500 ×g,10分钟。
如您所见,我的离心管底部有一个沉淀,其中含有真核细胞碎片。我新释放出的细菌仍存在于上清液中,因为离心力不足以使它们同时沉淀下来。因此,接下来我将移走上清液,并通过一个5微米的滤膜进行过滤。
这是一个5 µm的滤器,可适配任意类型的注射器。我即将使用一支30 ml的注射器,首先将活塞向上拉起,然后在不接触滤器本身(尤其是下方这部分)的情况下,确保其保持无菌状态。通过旋转拧紧的方式将注射器与滤器连接,随后轻轻下压活塞,使上清液透过滤器进入收集管中。
不要用力过猛,否则可能会压坏滤膜,导致其无法继续使用。如果发现需要施加很大压力才能过滤,就需要取下滤膜并更换新的,因为这表明滤膜已被大量细胞碎片堵塞。此时,根据样本体积,为了获得更纯净的细菌培养物,我们通常会采用另一种附加方法:向高速离心管中加入已过滤除菌的 250 毫摩尔蔗糖溶液。
将瓶子装至至少80%满。我们通常会将其装至瓶颈处。这些离心管必须装得如此之满,以防止在高速离心机中发生内爆。
现在,我们将把上清液放入高速离心机中,在18,000 ×g条件下离心,以收集纯化后的细菌。因此,我们必须确保离心管已对称平衡放置,然后关闭离心机,设定离心时间为10分钟。
我们倾向于在 10 摄氏度或更低的温度下进行此操作,此处已设定相应温度。对于该离心机的特定转子,其角速度为每分钟 12.5 转。我们有转换图表可供参考,因此其离心力约为 18,670 ×g。现在我们已完成高速离心操作,以沉淀纯化后的细菌。
现在可以看到,我们的高速离心管底部已经有了一个良好的细菌沉淀。接下来,我们需要将上清液全部移除,并放入液体废液容器中。此时,我们需要重新悬浮我们的细菌。
我将用两毫升的培养基重悬菌体,培养基为添加了10%热灭活胎牛血清的Schneider昆虫培养基。通过反复吹打,使菌体沉淀完全重悬于溶液中,直至所有细菌重新进入悬浮状态。现在细菌已重新悬浮,我们将再进行一步纯化操作,以彻底去除任何可能存在的宿主细胞碎片。
因此,我们将使用一个2.7微米的滤膜。我喜欢用5微米滤膜的塑料外壳作为支撑架。这样我们可以吸取溶液,将注射器拧到2.7微米滤膜上,然后将滤过的溶液收集到长期保存管中。
与使用其他滤器类似,只需轻轻按压推杆即可。现在,我们已获得纯化细菌的溶液。接下来,我将向您展示如何进行活性检测。
我们使用 Molecular Probes 公司的背光活死菌活力检测试剂盒。该试剂盒包含两种染料:碘化丙啶和细胞核染料碘化丙啶。碘化丙啶呈红色荧光,仅对细胞膜不完整的细菌进行染色,而细胞核染料可对所有细菌进行染色。
因此,当你使用配备荧光光学系统的显微镜观察这些细菌时,所有细菌都会发出绿色荧光,而其中一部分——即死亡的细菌——会发出红色荧光。我们从纯化后的样品中取出少量等分试样,在本例中我将仅取10 µL,足以制作一张载玻片样本即可。然后我将把它分装到另外两个中。
然后加入另外两种染料,只需将一微升碘化丙啶和细胞色素的混合物加入细菌悬液中。随后可将样品在避光条件下孵育15分钟。但我们发现,实际上可直接进行封片并立即观察,即可获得实验结果。
好的,现在我将使用背光生命-死亡染色法对载玻片上的细菌染色样本进行观察。先将染液滴加到载玻片上,盖上盖玻片,然后进行观察。我将使用红绿混合滤光片,以便评估细菌的存活率。
因此,当我打开快门时,我看到的细菌大致只是微小的光点。但我观察到,大约有90%到95%的细菌呈绿色,而只有大约5%呈红色。这说明我们的细菌存活率非常高,对吧?
以上我已为您演示了从培养的昆虫细胞中纯化具有活性的 Akia 的全过程。该方案包括通过物理方法裂解真核宿主细胞,随后采用差速离心法分离纯化细菌,并通过一系列过滤步骤,彻底去除所有宿主细胞组分,以确保所获得细菌的纯度。接着,我们介绍了活/死细菌染色检测法,该方法利用两种染料对细菌的活性进行评估。
现在,您可以将纯化后的细菌用于多种实验,包括感染其他培养的细胞系统,以增强对特定系统的感染效果。您也可以利用这些活的纯化细菌进行代谢研究或多种其他研究。
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本视频介绍了一种从冈比亚按蚊细胞系中纯化沃尔巴克氏体(Wolbachia pipientis)并将其在无细胞培养基中进行培养的方法。同时演示了检测该细菌活力的实验方法。
在无细胞培养基中纯化并评估沃尔巴克氏体(Wolbachia)的活性,可实现对这种内共生菌生物学的可控性研究,有助于媒介传播疾病研究中的早期发现和靶点验证。该实验流程提供了一种标准化方法,用于制备适用于后续实验的具有活性的胞外沃尔巴克氏体,从而提高宿主-微生物相互作用研究的预测可靠性。该方法通过可重复地制备用于感染、代谢和遗传学研究的生物材料,支持科研项目中的决策分析。
该方法通过实现对沃尔巴克氏体(Wolbachia)的制备及其感染、代谢和遗传研究中的活力评估,融入了从发现到临床前研究的连续过程。