Name: 变化在大鼠乳腺形态和患乳腺癌的风险 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-10-16T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: 学习大鼠乳腺解剖与整体装片制备技术，通过分析乳腺形态学特征预测乳腺癌风险。本方法可评估发育期饮食干预对乳腺终端芽和腺泡芽分化的影响。

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美国国家癌症研究所（U54 CA00100970）、美国国家癌症研究所（1 R03 CA150040-01）、美国癌症协会（116602-PF-09-018-01-CNE）

1. 腹部乳腺的摘除及整体装片的制备
<ol>
 <li>根据IACUC指南实施动物安乐死。用针从腿部将动物仰卧固定，或用胶带将四肢固定于操作板上，然后用乙醇（EtOH）润湿皮肤。用镊子轻轻提起皮肤，再用锐利的剪刀从第5对乳头之间开始沿中线向前剪至颈部，切开皮肤。从中线处向后肢做倒Y字形切口。若需同时采集胸部乳腺组织，则从中线第2对乳头之间向前后肢方向均做Y字形切口。</li>
 <li>沿倒Y形切口的一侧用剪刀剪开皮肤，暴露腹部第4对乳腺；乳腺附着于皮肤。用针将皮肤固定在解剖板表面，以完全暴露乳腺。每次操作一侧及一个腺体。</li>
 <li>从靠近乳头的近端区域开始，使用锋利的剪刀和/或解剖刀，将乳腺从皮肤上仔细分离，并向动物脊柱方向的腺体远端延伸操作。（此过程可能需要数分钟，尤其是在较年长的大鼠中。）</li>
 <li>立即将分离的腺体组织铺展到适当标记的玻璃载片上（使用合适的永久性记号笔和/或钻石刻写笔），并根据其原始大小和形状小心铺开组织 原位 载玻片必须大于腺体。将腺体铺展到载玻片上后，静置于桌面上一段时间，使腺体黏附在载玻片上，但切勿使其干燥。</li>
 <li>将载玻片放入含有卡诺固定液（75% 冰醋酸，25% 无水乙醇=EtOH）的染色缸中，在室温（RT）下于通风橱内固定2天或更长时间。载玻片也可在固定液中保存更长时间。</li>
 <li>在室温下用70% EtOH洗涤载玻片1小时。</li>
 <li>在室温下用蒸馏水冲洗30分钟。</li>
 <li>用卡红明矾染液染色 *) 2 天或更长时间（直至观察到淋巴结已完全着色；可通过观察玻片背面判断）。</li>
 <li>依次用浓度递增的乙醇洗涤，每步1小时：70% -&gt; 95% -&gt; 100%。在纯乙醇中完成最后一次洗涤后，将腺体放入二甲苯中，在室温下的通风橱中静置至少2天。此最后一步为乳腺组织的透明处理，即去除乳腺脂肪垫中的脂质，从而提高组织透明度。腺体脂肪含量越高，所需透明时间越长。</li>
 <li>使用封片剂（如 Permount）和盖玻片进行封片。将载玻片充分干燥（数天）后，再在体视显微镜下观察。 胭脂红铝染色： 将1 g卡明（Sigma C1022）和2.5 g硫酸铝钾（Sigma A7167）加入500 mL蒸馏水中，煮沸20分钟。用水调节最终体积至500 mL。过滤后冷藏保存。该溶液可使用数月，当颜色变浅时弃用。</li>
</ol>
2. 乳腺全组织制片形态学分析
根据以下终点分析乳腺全组织切片的形态学特征，并将结果与乳腺癌风险相关联。
<ol>
 <li>出生后第21天（青春期前）乳腺全组织制片：
 <ul>
 <li>上皮生长：
 <ul>
 <li>使用直尺测量乳头至乳腺上皮树末端的距离（单位：毫米）</li>
 </ul>
 </li>
 <li>恶性转化潜能：
 <ul>
 <li>在光学显微镜下计数末端芽（TEB）的数量。TEB是仅位于乳腺上皮树远端的最大球状结构</li>
 </ul>
 </li>
 <li>分化程度：
 <ul>
 <li>AB1（腺泡芽）评分（0–5分）。腺泡芽分布于整个上皮组织中。</li>
 <li>AB2评分（0–5分）</li>
 </ul>
 </li>
 </ul>
 全组织制片在光学显微镜下进行评分。AB1与AB2的评分值相加，得到最终的分化评分。</li>
 <li>出生后第50天（青春期后）乳腺全组织制片：
 <ul>
 <li>上皮生长：
 <ul>
 <li>使用直尺测量淋巴结至乳腺上皮树末端的距离（单位：毫米）。</li>
 <li>使用直尺测量乳腺上皮树顶端至脂肪垫末端的距离。</li>
 </ul>
 </li>
 <li>恶性转化潜能：
 <ul>
 <li>在光学显微镜下计数TEB的数量</li>
 </ul>
 </li>
 <li>分化程度：
 <ul>
 <li>AB1评分（0–5分）</li>
 <li>AB2评分（0–5分）</li>
 <li>小叶评分（0–5分）</li>
 </ul>
 </li>
 </ul>
 
 全组织制片在光学显微镜下进行评分。分化程度将通过两种方式评估。首先，将AB1、AB2和小叶的评分值相加，得到最终的分化评分。此外，还将计算小叶评分与（AB1 + AB2）评分之比。腺泡芽（ABs）可分化为小叶，该比值越高，表明腺体分化程度越高。</li>
</ol>
3. 大鼠的触诊与乳腺肿瘤测量及其与乳腺形态学的相关性
<ol>
<li>开始此操作时，用手掌覆盖大鼠背部，食指置于头部后方，拇指和中指分别置于对侧腋下，握住大鼠全身。将大鼠翻转至仰卧位，触诊以检测是否存在乳腺肿瘤；可触及的肿瘤应感觉像一个“肿块”。</li>
<li>接下来使用游标卡尺测量肿瘤的宽度、长度和高度。利用椭球体公式计算肿瘤体积：体积 = 1/6πabc，其中“a”代表宽度，“b”代表长度，“c”代表高度。</li>
<li>每周手动记录肿瘤的位置和大小于实验记录本中。这些数据后续将被录入电子表格。</li>
</ol>
4. 代表性结果
仔细解剖乳腺脂肪垫并将其处理成整体封片，可评估乳腺的发育状态。若每一步操作均正确，乳腺上皮树状结构将清晰可见于脂肪垫内，从而易于确定末端芽的数量，并计算腺泡芽和小叶的密度。制备整体封片时的常见失误包括未能完整解剖整个脂肪垫、固定不充分以及透明不彻底。
乳腺形态学评估可提供有关可能发展为乳腺肿瘤的结构数量（末端膨大体，TEBs）、上皮结构的分化程度（腺泡芽和小叶）以及生长程度（导管延伸）的信息。必须将TEBs与终末端区分开来；后者位于上皮组织远端，位置与TEBs相似，但体积小于TEBs，且不会发展为恶性肿瘤。终末端也可见于上皮树状结构内部。
<img src="/files/ftp_upload/2260/2260fig1.jpg" alt="染色植物细胞玻片的显微镜图像；细胞结构，生物学教育研究。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1：制备良好的乳腺全组织装片的代表性结果。 腺体的所有组分均已正确解剖，且胭脂红染色效果理想。
<img src="/files/ftp_upload/2260/2260fig2.jpg" alt="显示细胞染色技术的组织学切片；用于结构分析的显微镜图像。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 图 2：乳腺全组织制片制备不良的代表性结果。 该腺体虽已正确解剖（远端部分缺失），但未充分拉伸，且脱脂过程未完全完成。

<ol><li>Rasmussen, S. B., Young, L. J. T., Smith, G. H. Preparing mammary gland whole mounts form mice. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRasmussen%2C+SB+%22Methods+in+Mammary+Gland+Biology+and+Breast+Cancer+Research%22">Methods in Mammary Gland Biology and Breast Cancer Research</a>. Ip, M. M., Asch, B. B. , Kluwer Academic / Plenum Publishers. New York. 75-85 (2000).</li>
<li>Consensus statements from Mammary Gland Whole Mount Round Robin meeting. Oakland, CA, , (2009).</li>
<li>Hilakivi-Clarke, L., Clarke, R., Onojafe, I., Raygada, M., Cho, E., &amp, L. ippman, E, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+maternal+diet+high+in+n-6+polyunsaturated+fats+alters+mammary+gland+development%2C+puberty+onset%2C+and+breast+cancer+risk+among+female+rat+offspring%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">A maternal diet high in n-6 polyunsaturated fats alters mammary gland development, puberty onset, and breast cancer risk among female rat offspring.</a> Proc Natl Acad Sci. 94, 9372-9377 (1997).</li>
<li>Russo, I. H., Russo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammary+gland+neoplasia+in+long-term+rodent+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Health+Perspect%22%5BJournal%5D)">Mammary gland neoplasia in long-term rodent studies.</a> Environ. Health Perspect. 104 (9), 938-967 (1996).</li>
<li>Hilakivi-Clarke, L., de Assis, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+origins+of+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22TRENDS+in+Endocrinol+and+Metabol%22%5BJournal%5D)">Fetal origins of breast cancer.</a> TRENDS in Endocrinol and Metabol. 17 (9), 340-348 (2006).</li>
<li>Hilakivi-Clarke, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutritional+modulation+of+terminal+end+buds%3A+its+relevance+to+breast+cancer+prevention%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Cancer+Drug+Targets%22%5BJournal%5D)">Nutritional modulation of terminal end buds: its relevance to breast cancer prevention.</a> Curr Cancer Drug Targets. 7 (4), 465-474 (2007).</li>
<li>Silva Idos, S., De Stavola, B., Mccormack, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collaborative+Group+On+Pre-Natal+Risk+Factors+And+Subsequent+Risk+Of+Breast+Cancer.+Birth+size+and+breast+cancer+risk%3A+re-analysis+of+individual+participant+data+from+32+studies%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+Medicine%22%5BJournal%5D)">Collaborative Group On Pre-Natal Risk Factors And Subsequent Risk Of Breast Cancer. Birth size and breast cancer risk: re-analysis of individual participant data from 32 studies.</a> PloS Medicine. 5, e193-e193 (2008).</li>
<li>Warri, A., Saarinen, N. M., Makela, S., Hilakivi-Clarke, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+early+life+genistein+exposures+in+modifying+breast+cancer+risk%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">The role of early life genistein exposures in modifying breast cancer risk.</a> Br J Cancer. 98, 1485-1493 (2008).</li>
<li>Russo, J., Hu, Y. F., Yang, X., Russo, I. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental%2C+cellular%2C+and+molecular+basis+of+human+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Natl+Cancer+Inst+Monogr%22%5BJournal%5D)">Developmental, cellular, and molecular basis of human breast cancer.</a> J Natl Cancer Inst Monogr. , 17-37 (2000).</li>
<li>Oza, A. M., Boyd, N. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammographic+parenchymal+patterns%3A+A+marker+of+breast+cancer+risk%5BTitle%5D)+AND+%22Epidemiological+Reviews%22%5BJournal%5D)">Mammographic parenchymal patterns: A marker of breast cancer risk.</a> Epidemiological Reviews. 15, 196-208 (1993).</li>
</ol>

未声明利益冲突。

评估乳腺形态学终点及上皮树的生长可用于预测生命早期饮食干预或其他可改变 在子宫内 或青春期前的激素环境，会影响日后乳腺癌的风险。由于人类乳腺癌起源于类似于大鼠末端导管小叶单元（TDLUs）的乳腺结构，该技术可用于评估生命早期暴露因素对乳腺癌风险的潜在影响。此外，在女性中，乳腺X线密度增高会使乳腺癌风险增加4至6倍，而通过对乳腺上皮树的生长情况进行评估，可识别决定乳腺X线密度的因素以及能够降低该密度的干预因素。为获得上述信息，应完整解剖乳腺组织，并将其适当延展后固定于载玻片上，以便在显微镜下观察其所有结构成分。同时，采用适当的卡红染色及二甲苯脱脂处理，可制备出适用于乳腺癌风险评估的完整乳腺组织铺片标本。

<table><tbody><tr><td>冰醋酸</td><td>电子显微镜科学公司</td><td>AX0073-9</td><td>Carnoy&amp;rsquo;s固定剂</td></tr><tr><td>无水乙醇</td><td>Waner-Graham 公司</td><td>64-17-5</td><td>Carnoy&amp;rsquo;s固定剂</td></tr><tr><td>胭脂红</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1022</td><td>茜素红溶液</td></tr><tr><td>硫酸铝钾</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7167</td><td>茜素红溶液</td></tr></tbody></table>

大鼠乳腺形态学变化与乳腺癌风险

Changes in Mammary Gland Morphology and Breast Cancer Risk in Rats

在乳腺癌的啮齿类动物模型研究中表明，生命早期暴露于饮食/激素因素 在子宫内 青春期和青春期阶段，乳腺经历广泛的建模与重塑，这会改变机体对致癌物诱导的乳腺肿瘤的易感性。人类中也观察到类似现象：例如，出生体重较高会增加日后发生乳腺癌的风险，而儿童期摄入大豆则可降低乳腺癌风险。人们认为，这些产前和产后的饮食改变可诱导乳腺发生持久的形态学变化，从而影响个体一生中乳腺癌的发生风险。这些形态学变化很可能反映了表观遗传学修饰，例如DNA甲基化、组蛋白修饰以及miRNA表达的改变，进而影响基因的转录。本文阐述了如何通过乳腺形态学变化来预测大鼠乳腺癌的发生风险。本实验方案详细描述了如何解剖并取出大鼠腹部乳腺组织，以及如何制备乳腺全组织装片。同时介绍了如何根据三个终点指标（末端芽数量、上皮延伸程度和分化状态）分析乳腺形态学特征，并利用所得数据预测乳腺癌发生风险。

本实验方案描述了如何解剖大鼠腹部乳腺组织并制备乳腺全组织切片，同时介绍了如何利用三个终点指标（末端芽数量、上皮延伸程度及分化状态）分析乳腺形态，并利用这些结果预测经饮食干预后的大鼠乳腺癌发病风险 在子宫内 或在青春期前。

在乳腺癌的啮齿类动物模型研究中表明，生命早期（如子宫内和青春期）暴露于饮食或激素因素，此时乳腺处于发育阶段……

本实验的总体目标是展示如何解剖并制备乳腺腺泡整体封片，以及如何分析其形态以预测乳腺癌风险。该目标通过以下步骤实现：首先解剖大鼠腹部的乳腺组织，然后从已解剖的腺体中制备乳腺腺泡整体封片，最后对乳腺腺体进行形态学分析。通过孔板观察形态学变化。该实验步骤的最后一步是触诊大鼠以检测记忆肿瘤，并以毫米为单位测量肿瘤体积。使用游标卡尺，最终可获得结果，通过识别记忆组织、家巢板中的结构，并在显微镜下计数或评分其数量，从而显示记忆腺形态学的变化。该方法有助于回答生命早期暴露与乳腺癌研究领域中的关键问题，例如发育期间的饮食或环境暴露如何影响青春期后乳腺分化，进而影响个体一生中患乳腺癌的风险。该技术的意义还延伸至乳腺癌预防领域。例如，我们可以研究发育过程中所接触的环境和饮食因素，并观察乳腺组织发生的变化，判断这些变化是否与乳腺癌风险的升高或降低相关。演示肿瘤触诊操作的将是动物技术人员兼动物共享资源管理者Idli Cruz。开始进行摘除记忆腺的操作时，首先使用针将已处死的动物仰卧固定在操作台表面的四肢部位，然后用乙醇将皮肤擦拭湿润。用镊子轻轻提起皮肤，使用锐利的剪刀从第五对乳头之间开始沿中线向颈部方向做一纵行切口。然后从该中线切口向后肢方向做一倒Y形切口。用剪刀沿倒Y形切口的一侧将皮肤剪开，以暴露附着在皮肤上的腹部第四记忆腺。用针将皮肤固定在解剖板表面，完全暴露该腺体。接着，使用锋利的剪刀将记忆腺从皮肤上仔细分离下来。从靠近乳头的近端区域开始，向腺体远端即动物脊柱方向进行操作。一旦唾液腺被分离，应立即将其展开并置于载玻片上，以制备整体封片。载玻片必须大于腺体，并使用永久性记号笔或金刚石笔进行适当标记。小心地将腺体展开，使其保持在C2中原始的大小和形状。将腺体铺展到载玻片上后，静置于实验台约30分钟，使腺体粘附在载玻片上，但避免其干燥。接着，将载玻片放入盛有car noise固定液的容器中，在通风橱内室温条件下固定至少两天或更长时间。随后在室温下用70%乙醇洗涤载玻片一小时。将玻片用蒸馏水在室温下冲洗 30 分钟。接着，用卡红明矾染液对腺体染色两天或更长时间。当检查玻片背面并观察到淋巴结已完全着色时，即完成染色。将玻片依次浸入浓度递增的乙醇中洗涤，每种浓度各一小时。起始用70%乙醇，随后用95%乙醇，最后用100%乙醇。为获得适合形态学分析的技术质量良好的乳腺全组织铺片，两个步骤至关重要：完整腺体的解剖以及乳腺脂肪垫的脂质溶解。将腺体置于二甲苯中以去除脂质并增加透明度。该透明过程将耗时两天或更长时间，具体取决于腺体的大小以及脂肪含量。在无水乙醇的最后一次洗涤后，将切片放入二甲苯中。将腺体置于二甲苯中，在室温下至少放置两天。待组织完全透明后，用盖玻片封片。使用如Permount等封片介质，将载玻片在通风橱中干燥数天，然后在体视显微镜下观察。根据三个终点指标分析记忆腺泡封片的形态：上皮伸长、末端芽数量及分化程度。然后将结果与记忆癌症风险进行关联。我们将首先演示对青春期前年龄记忆腺体整体装片的分析，以评估上皮的延伸情况。使用直尺测量从乳头到上皮树末端的毫米距离。第二个终点指标即终末芽（T Bs）的数量，反映了恶性转化的潜力。在光学显微镜下计数终末芽（tbs）的数量，终末芽是最大的浆状结构，仅位于乳腺上皮树远端；该指标用于评估第三个终点，即分化程度。同时在光学显微镜下检查整体封片样本。通过评估分布在上皮中的腺泡芽来测量分化程度。指定为AB1和AB2的两种腺泡芽，根据其在腺体中的丰度，分别给予0到5的评分。然后将AB1和AB2的评分相加，得到最终的分化评分。青春期后H记忆腺体全 mount 的形态学分析与青春期前H记忆腺体全 mount 的分析相似，但存在以下差异。为观察上皮延伸情况，首先使用直尺测量从淋巴结到上皮树末端的毫米距离；其次，测量从上皮树顶端到脂肪垫末端的距离。同样以毫米为单位进行分化分析。在青春期后人记忆腺体组织切片中，除腺泡芽外，还需在光学显微镜下对小叶进行0至5级评分。该评分反映腺体中小叶的丰富程度。随后通过两种方式评估分化情况。首先，将 AB 一、AB 二和 LOEs 的评分值相加，得到最终的分化评分。其次，计算 LOEs 评分与 AB 一加 AB 二评分的比值。由于ABS可区分两种LOE，腺体分化程度越高，LOE与abs的比值也越高。开始此操作时，用手掌覆盖大鼠背部，食指置于头部后方，拇指和中指置于对侧腋下，抓握整个身体固定大鼠。将大鼠翻转至仰卧位，进行触诊以检测是否存在既往肿瘤；可触及的肿瘤应呈结节状。接下来，使用游标卡尺测量肿瘤的宽度、长度和高度。利用椭球公式计算肿瘤体积。体积等于六分之一πABC，其中A为宽度，B为长度，C为高度。每周手动记录肿瘤的位置和大小于实验记录本中。该数据将在样本被正确解剖和处理后，转录至电子表格中。记忆腺体孔插片应确保所有组件均清晰可见，如此示例所示。相比之下，这是一个制备不佳的乳腺组织全 mount 的示例。该腺体未被正确解剖，因为远端部分缺失。此外，腺体未被适当拉伸，且未发生扩张。完全展示。以下是记忆腺形态变化可预测记忆癌风险的代表性结果。在暴露于致癌物DMBA的大鼠中，当计数末端N芽或TBS数量时，与对照组相比，处理组在21天时的TBS数量更高。这些乳腺腺体形态学的改变与治疗组大鼠相比对照组具有更高比例的记忆性肿瘤相关。如本图所示。在进行该操作时，重要的是要记住完整解剖整个乳腺腺体，并去除所有脂肪组织，以确保乳腺腺体结构的良好可视化。观看本视频后，您应能充分理解如何解剖和制备乳腺组织全厚片，以及如何分析其形态学特征以预测乳腺癌风险。

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科研

JoVE Journal

Biology

生物学

变化在大鼠乳腺形态和患乳腺癌的风险

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本文所述的间接免疫荧光实验方案可用于检测和定位小鼠乳腺组织中的蛋白质。文中提供了完整的实验方法，包括乳腺组织样本的制备、免疫组织化学染色、荧光显微镜下组织切片的成像，以及图像的重建。...

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通过门静脉注射将乳腺肿瘤细胞递送至小鼠肝脏的手术方法已建立。该模型可在完全免疫功能正常的宿主体内研究肝转移的晚期阶段，包括肿瘤细胞的外渗、定植、存活以及在肝脏内的转移性增殖。...

一种用于研究乳腺癌肝转移的门静脉注射模型

啮齿类动物乳腺发育通常通过描述性评估或测量基本物理特征来进行评价。分支密度是乳腺发育的一个指标，但难以进行客观量化。本方案描述了一种可靠的方法，用于定量评估乳腺腺体的分支特征。...

使用Sholl分析法对大鼠乳腺全组织切片中的分支密度进行定量

我们建立了一种方法，可成功地将原本以整体封片方式固定的乳腺组织进行取材、处理、切片和染色，用于组织病理学评估。该方法可能促进在生殖和发育毒性试验指南研究中对乳腺腺体整体封片的采集与评估。...

切片乳腺组织整体标本以识别病灶

本文介绍了一种分离完整小鼠乳腺组织以研究细胞外基质（ECM）表达及导管形态的实验方案。从小鼠第4对腹部乳腺中获取8至10周龄未产雌性小鼠的乳腺组织，经中性缓冲甲醛固定后进行切片，并采用免疫组织化学方法对细胞外基质蛋白进行染色。...

完整小鼠乳腺腺体的分离及其细胞外基质表达与腺体形态学分析

本实验方案旨在介绍一种基于将表达Cre的腺病毒通过导管内注射至小鼠乳腺中来建立乳腺癌模型的新方法。该方法能够以时间可控的方式，在特定细胞类型和器官中特异性调控致癌事件。...

通过向小鼠乳腺导管内注射表达Cre的腺病毒建立乳腺癌模型

本文介绍了一种移植方法，可将供体大鼠乳腺上皮细胞移植至受体动物的肩胛间白色脂肪垫中。该方法可用于研究宿主和/或供体对乳腺上皮发育的影响，且无需预先清除内源细胞，从而扩展了该技术的应用范围。...

大鼠乳腺上皮细胞移植至肩胛间白色脂肪垫

源自患者的异种移植（PDX）模型和可移植的基因工程小鼠模型能够真实地模拟人类疾病，是基础和转化性乳腺癌研究的首选模型。本文描述了一种将乳腺肿瘤组织片段原位移植至乳腺脂肪垫以研究肿瘤生物学特性并评估药物反应的方法。...

原位移植乳腺肿瘤作为乳腺癌的临床前模型

本文描述了一种将化学消融溶液递送至大鼠乳腺导管树以进行影像引导下乳腺癌预防治疗的方法。通过直接将导管插入乳头开口并灌注基于70%乙醇的消融溶液，可靶向乳腺上皮细胞，同时最大程度减少对周围组织的损伤。...

X射线成像观察乙醇基导管内消融治疗预防大鼠模型乳腺癌

学习大鼠乳腺解剖与整体装片制备技术，通过分析乳腺形态学特征预测乳腺癌风险。本方法可评估发育期饮食干预对乳腺终端芽和腺泡芽分化的影响。

大鼠乳腺形态学变化与乳腺癌风险

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