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以年龄匹配、无菌、 freshly killed 且角质层已通透化的成年 C. elegans 蠕虫开始,将其悬浮于缓冲液中。
这些蠕虫的肠道中感染了细菌。
取一个深孔板,其中含有悬浮于缓冲液中的研磨颗粒,将单个线虫转移至每个孔中。
用封板膜和盖子盖住板。
将培养板置于低温环境中孵育,以防止组织破碎过程中过热。
按下盖子以密封各孔。
使用组织破碎仪,机械振荡培养板。研磨颗粒可破坏线虫组织,释放肠道细菌。
轻敲培养板并离心,使内容物沉淀至管底。
混匀内容物以均匀分散细菌,然后将其转移至新的孔中。
用缓冲液对细菌悬液进行系列稀释。
将稀释液接种至琼脂平板上,培养以形成菌落。
计数菌落以量化不同蠕虫个体间肠道细菌载量的差异。
为准备对线虫进行机械破碎,需获取一个无菌的2毫升深孔96孔板以及一个硅胶板盖。
使用无菌药勺将少量无菌36格碳化硅颗粒加入每个孔中,使颗粒恰好覆盖孔底。向每个孔中加入180微升M9线虫缓冲液。标记列和行,然后用硅胶板盖轻轻覆盖微孔板。
接下来,将已透化的线虫转移至一个盛有 M9TX-01 的小型培养皿中,液体深度约为一厘米。在体视显微镜下,用移液器吸取 20 微升体积的单个线虫,并将其转移至 96 孔板的各个孔中。若线虫粘附在移液器尖端无法排出,可从培养皿的空白区域吸取 20 微升 M9TX-01,再将其释放回培养皿中,以清除残留线虫。待所有线虫转移完毕后,用一张柔性封板膜覆盖 96 孔板,确保带纸衬的一面朝下,紧密覆盖样品孔。
将硅胶密封垫轻轻放置在柔性密封膜上方,不要将盖子压入孔中。将板置于4°C环境中30至60分钟,以防止在裂解过程中过热。冷却板后,用力将硅胶密封垫压入各孔中以实现密封。
然后将培养板固定在组织破碎仪中。以30赫兹的频率振荡培养板1分钟。随后将培养板旋转180度,再次振荡1分钟。
轻敲板子底部两到三次,以震落柔性封板膜上的任何颗粒物。在2,400 × g条件下离心2分钟,使样品沉降至孔底。随后移除硅胶盖,并撕去封板膜。
为制备线虫消化液的十倍系列稀释液,在96孔板的B至D行各孔中加入180微升1× PBS。使用设定为200微升的多通道移液器,通过反复吸液缓慢混匀线虫消化液。将尽可能多的液体转移至含有PBS的96孔板A行各孔中。
使用多通道移液器,从最上方一行吸取 20 微升液体并加入 B 行,随后混匀。重复此步骤,将 B 行液体转移至 C 行,再将 C 行液体转移至 D 行,以获得 1000 倍稀释。对于单菌定植线虫的细菌定量,取每种稀释液 10 至 20 微升涂布于固体琼脂平板上。对于多物种定植,取每种稀释液 100 微升涂布于直径 10 厘米的琼脂平板上。