机械破碎单条线虫以评估宿主-细菌相互作用的变异性

0 次观看5:09 分钟 • October 30th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

以年龄匹配、无菌、 freshly killed 且角质层已通透化的成年 C. elegans 蠕虫开始,将其悬浮于缓冲液中。

这些蠕虫的肠道中感染了细菌。

取一个深孔板,其中含有悬浮于缓冲液中的研磨颗粒,将单个线虫转移至每个孔中。

用封板膜和盖子盖住板。

将培养板置于低温环境中孵育,以防止组织破碎过程中过热。

按下盖子以密封各孔。

使用组织破碎仪,机械振荡培养板。研磨颗粒可破坏线虫组织,释放肠道细菌。

轻敲培养板并离心,使内容物沉淀至管底。

混匀内容物以均匀分散细菌,然后将其转移至新的孔中。

用缓冲液对细菌悬液进行系列稀释。

将稀释液接种至琼脂平板上,培养以形成菌落。

计数菌落以量化不同蠕虫个体间肠道细菌载量的差异。

为准备对线虫进行机械破碎,需获取一个无菌的2毫升深孔96孔板以及一个硅胶板盖。

使用无菌药勺将少量无菌36格碳化硅颗粒加入每个孔中,使颗粒恰好覆盖孔底。向每个孔中加入180微升M9线虫缓冲液。标记列和行,然后用硅胶板盖轻轻覆盖微孔板。

接下来,将已透化的线虫转移至一个盛有 M9TX-01 的小型培养皿中,液体深度约为一厘米。在体视显微镜下,用移液器吸取 20 微升体积的单个线虫,并将其转移至 96 孔板的各个孔中。若线虫粘附在移液器尖端无法排出,可从培养皿的空白区域吸取 20 微升 M9TX-01,再将其释放回培养皿中,以清除残留线虫。待所有线虫转移完毕后,用一张柔性封板膜覆盖 96 孔板,确保带纸衬的一面朝下,紧密覆盖样品孔。

将硅胶密封垫轻轻放置在柔性密封膜上方,不要将盖子压入孔中。将板置于4°C环境中30至60分钟,以防止在裂解过程中过热。冷却板后,用力将硅胶密封垫压入各孔中以实现密封。

然后将培养板固定在组织破碎仪中。以30赫兹的频率振荡培养板1分钟。随后将培养板旋转180度,再次振荡1分钟。

轻敲板子底部两到三次,以震落柔性封板膜上的任何颗粒物。在2,400 × g条件下离心2分钟,使样品沉降至孔底。随后移除硅胶盖,并撕去封板膜。

为制备线虫消化液的十倍系列稀释液,在96孔板的B至D行各孔中加入180微升1× PBS。使用设定为200微升的多通道移液器,通过反复吸液缓慢混匀线虫消化液。将尽可能多的液体转移至含有PBS的96孔板A行各孔中。

使用多通道移液器,从最上方一行吸取 20 微升液体并加入 B 行,随后混匀。重复此步骤,将 B 行液体转移至 C 行,再将 C 行液体转移至 D 行,以获得 1000 倍稀释。对于单菌定植线虫的细菌定量,取每种稀释液 10 至 20 微升涂布于固体琼脂平板上。对于多物种定植,取每种稀释液 100 微升涂布于直径 10 厘米的琼脂平板上。

08:19

利用纳米流体技术对单个及批量 C. elegans 样本进行高通量定量 RT-PCR

相关视频

0 观看次数

09:47

选择性清洗野生 Caenorhabditis 线虫以富集肠道微生物组细菌

相关视频

0 观看次数

11:40

高通量筛选影响微生物分离物 秀丽隐杆线虫 健康

相关视频

0 观看次数

03:22

评估无菌 C. elegans 中的肠道细菌定植

相关视频

0 观看次数

02:45

高通量荧光检测法研究微生物-线虫相互作用

相关视频

0 观看次数

02:05

使用 C. elegans 液体毒性检测法评估细菌毒力

相关视频

0 观看次数

04:15

利用阿米巴作为宿主系统检测细菌毒力

相关视频

0 观看次数

11:18

由细菌病原体不同程度定植的 C. elegans 的自动化分离

相关视频

0 观看次数

11:58

秀丽隐杆线虫——一种多功能的模式生物 体内 研究宿主-微生物相互作用的模型

相关视频

0 观看次数

09:00

用于纵向成像的微流控平台 秀丽隐杆线虫

相关视频

0 观看次数

最后更新:15 八月 2026