Name: 人外周血NK细胞的扩展，纯化和功能评估 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-02T17:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 44 s
Description: 学习人外周血NK细胞的体外扩增与纯化方法，利用人工抗原呈递细胞和IL-2培养基实现高效扩增。该方法可在21天内获得高纯度功能性NK细胞，适用于肿瘤免疫治疗研究。

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作者感谢 Laurence Cooper、Harjeet Singh 和 Lenka Hurton 在构建初始的 K562 aAPC 和 mIL21 融合载体方面所做的工作。
本工作的经费由德克萨斯大学MD安德森癌症中心医师科学家项目、圣·巴尔德里克基金会以及朋友城传奇组织提供。

1. 从血沉棕黄层中分离外周血单个核细胞
通过Ficoll-Paque密度梯度离心法从健康供体白细胞单采术获得的血沉棕黄层样品中分离外周血单个核细胞（PBMC）。
<ol>
<li>Ficoll-Paque 离心操作按照制造商提供的方案进行，仅作少量修改。</li>
<li>向正常供体血库的血沉棕黄层中加入 PBS，调整终体积至 140 mL（典型的血沉棕黄层体积为 40–70 mL）。</li>
<li>将35 mL的血沉棕黄层样本叠加在15 mL的Ficoll-Paque上（共4管）。</li>
<li>400 × g 离心 20 分钟，不启用刹车。</li>
<li>从Ficoll-Paque与血浆界面处回收PBMCs，不要丢弃Ficoll-Paque底部的红细胞。</li>
<li>用 PBS 洗涤 PBMCs 三次，每次以 400g 离心 10 分钟。</li>
<li>此阶段可直接使用PBMCs进行NK细胞扩增，或通过RosetteSep法分离NK细胞（第4节）</li>
<li>剩余的PBMC可置于含10% DMSO的FBS中，于液氮中冻存。</li>
<li>吸弃Ficoll，将第5步得到的红细胞收集至两个50 mL离心管中，用PBS洗涤三次（加至50 mL刻度线），每次均吸除上清液，吸取时贴近红细胞层表面以去除粒细胞。</li>
<li>红细胞可立即用于RosetteSep法纯化NK细胞（参见 第4节) 或以等体积的 Alsever 溶液保存于 4°C 以备后续使用（红细胞最多可保存4周）。 </li>
</ol>
2. NK 细胞扩增
可使用外周血单个核细胞（PBMC）或纯化的自然杀伤细胞（NK细胞）启动NK细胞扩增。用于扩增的PBMC数量可根据三周扩增结束后所需的NK细胞数量进行调整，详见代表性结果部分。（见注释1）

刺激 1
第0天
<ol>
<li>每扩增 5×106 个 PBMC，需计数并使用 γ 射线照射仪在 100 Gy 条件下照射 10×106 个 K562 Cl9 mIL21 细胞。</li>
<li>照射后，用 PBS 洗涤细胞，并重悬于 NK 细胞扩增培养基（NKEM）中。</li>
<li>将 5×106 个 PBMC 与 10×106 个经照射的 K562 Cl9 mIL21 细胞（按 1:2 比例）接种于 T75 培养瓶中的 40 mL NKEM 培养基中，直立放置于 37°C、5% CO2 的培养箱中培养。</li>
</ol>
第3天和第5天
<ol start="4">
<li>以 400g 离心 5 分钟收集细胞，更换一半培养基为新鲜的 NKEM（按全培养基体积添加新鲜 IL2），并继续培养。</li>
</ol>
刺激 2
第7天
<ol>
<li>在培养一周结束时，计数培养物中的细胞数量。</li>
<li>留出 5×105 个细胞用于流式细胞术表型分析（见注释2）。</li>
<li>对于每 5×106 个需要重新刺激的细胞，计数并使用γ射线辐照仪在 100 Gy 条件下辐照 5×106 个 K562 Cl9 mIL21 细胞。</li>
<li>加入等数量的辐照 K562 Cl9 mIL21 细胞（1:1 比例），并重悬于 NKEM 中，总体细胞密度为 2.5×105 个细胞/mL（见注释3）。</li>
<li>将细胞接种至 T75 培养瓶中（每瓶最大体积为 50 mL）。</li>
</ol>
第10天和第12天
<ol start="6">
<li>计数细胞数量。</li>
<li>根据细胞数量，用新鲜的NKEM完全更换培养基（见注释3）。</li>
</ol>
第14天
<ol start="8">
<li>扩增两周后，对培养物中的细胞数量进行计数。</li>
<li>留出 5×105 个细胞用于流式细胞术表型分析（见注释2）。</li>
<li>若扩增起始于外周血单个核细胞（PBMCs），可在扩增的此阶段使用 RosetteSep 纯化方案对自然杀伤细胞（NK 细胞）进行纯化（参见第四部分）。若扩增起始于已纯化的 NK 细胞，则直接进行第三次刺激。</li>
<li>纯化后，留出 5×105 个细胞用于流式细胞术表型分析，以验证 NK 细胞的纯度（同第8步）。</li>
<li>使用所有纯化的 NK 细胞进行第三次刺激（见注释4）。</li>
</ol>
刺激 3
<ol>
<li>根据细胞数量，将NK细胞与经照射的K562 Cl9 mIL21（1:1比例）重悬于NKEM中（见注释3）。</li>
</ol>
第17天和第19天
<ol start="2">
<li>计数细胞数量。</li>
<li>根据细胞数量更换新鲜的NKEM培养基（参见注释3）。</li>
</ol>
第21天
<ol start="4">
<li>扩增三周后，计数培养物中的细胞数量。</li>
<li>取 1×106 个细胞用于流式细胞术分析，进行完整的自然杀伤细胞表型抗体组合检测（见表1）。</li>
<li>将细胞冻存于含10% DMSO的FBS中，每管最多冻存 5×107 个细胞，以备后续使用。</li>
</ol>
3. NK细胞杀伤活性检测
<ol>
<li>在进行细胞毒实验前一天，将NK细胞冻存管解冻，并接种于NKEM培养基中，以供细胞恢复。</li>
<li>每次使用单一靶细胞系进行NK细胞毒实验时，需要6×105个NK细胞和3×105个靶细胞（见注释5）。</li>
<li>通过将Calcein-AM（DMSO中储存液浓度为1 mg/mL）稀释于NKEM中，制备CAM培养基（见注释6）。</li>
<li>将106个靶细胞重悬于1 mL CAM培养基中（见注释7）。</li>
<li>在37 °C孵育1小时，期间偶尔轻轻振荡。</li>
<li>将NK细胞重悬至1×106个细胞/mL，并向U型底96孔板中对应图1所示10:1效靶比（E:T）的3个孔中，每孔加入200 μL NK细胞悬液（见注释8）。</li>
<li>除“最大释放”孔外，向其余所有孔中加入100 μL完全培养基。</li>
<li>向“最大释放”孔中加入100 μL 2% Triton X-100。</li>
<li>通过每次转移100 μL细胞悬液，对NK细胞进行连续稀释以获得后续5个效靶比（E:T），每次稀释后充分混匀。从最后一个孔（效靶比为0.3125:1）中弃去100 μL。</li>
<li>Calcein标记1小时后，用NKEM洗涤靶细胞两次，每次以1200 rpm离心5分钟（见注释9）。</li>
<li>重新计数靶细胞，并将其重悬至1×105个细胞/mL。</li>
<li>向每孔加入100 μL靶细胞悬液（每孔含1×104个细胞）。以100×g离心1分钟，以促进细胞接触。</li>
<li>在37 °C、5% CO2条件下孵育4小时。</li>
<li>用100 μL移液器轻轻吹打混匀，使释放的Calcein均匀悬浮，然后以100×g离心5分钟使细胞沉淀。小心吸取100 μL上清液转移至新板，避免产生气泡。如有气泡形成，可用细针刺破。</li>
<li>使用荧光酶标仪读板（激发波长485 nm，发射波长530 nm）。推荐采用底部读数模式。</li>
<li>根据公式计算特异性裂解率：[(实验释放值－自发释放值) / (最大释放值－自发释放值)] × 100。</li>
</ol>
4. 采用 RosetteSep 法纯化 NK 细胞
<ol>
<li>取红细胞数量为外周血单个核细胞或扩增细胞数量的100倍，加入50 mL离心管中（红细胞:外周血单个核细胞 = 100:1）。</li>
<li>若使用新鲜红细胞，请直接进行下一步；若红细胞保存在Alsever溶液中，则计数红细胞数量，并用含2% FBS的PBS洗涤适量（100倍过量）的红细胞，共洗涤三次，每次以1200 rpm离心10分钟。</li>
<li>将步骤1.7中的红细胞与PBMCs或步骤2.10中扩增的细胞在PBS + 2% FBS中混合，调整终体积为每5×10⁶个细胞1 mL7 PBMC 或扩增细胞的</li>
<li>添加 1μL 每1×10使用RosetteSep人NK细胞富集试剂盒6 PBMC 或扩增细胞的</li>
<li>充分混匀，室温孵育20分钟，每5分钟轻柔混匀一次。</li>
<li>加入等体积的 PBS + 2% FBS，轻轻混匀后缓慢铺加于 Ficoll-Paque 液面上方。</li>
<li>重复第 I 节中所述用于分离 PBMC 的 Ficoll-Paque 离心步骤。</li>
<li>计数纯化后回收的NK细胞，并留出5×10⁵个细胞用于流式细胞术检测NK细胞纯度（步骤8）。</li>
</ol>
5. 注意事项
注意 1. 自然杀伤细胞（NK 细胞）可直接从外周血单个核细胞（PBMC）中扩增，也可从 RosetteSep 纯化的 NK 细胞中扩增。我们发现两种方法的扩增效率相似，但某些供体的 NK 细胞数量极低，可能导致在扩增前通过 RosetteSep 法纯化时存在困难。
注意 2. 我们在扩增过程中常规使用 CD56-FITC、CD16-PE 和 CD3-PE-Cy5 进行表型分析，将 NK 细胞定义为 CD3 阴性且 CD16 或 CD56 阳性的细胞。
注意 3. 每次更换培养基或进行刺激时，将细胞重悬于 2.5 × 105/mL 的浓度，以确保在扩增高峰期每毫升的 PBMC/NK 细胞数量保持在 200 万或以下。这将防止营养物质耗尽，并有助于实现最大化的扩增和细胞存活。
注意 4. NK 细胞的扩增效率因供体而异，在第 1 或第 2 次刺激结束时，可根据实验需求将部分细胞冻存，另一部分继续扩增。我们此前成功使用冻存细胞在后续时间进行扩增。
注意 5. 为留出误差空间，我们建议在 700 µL NKEM 中重悬至少 7×105 个 NK 细胞，并在 4 mL NKEM 中重悬 4×105 个经钙黄绿素-AM 染色的靶细胞，用于建立细胞毒性实验。若使用多通道移液器接种靶细胞，根据培养基容器的大小，可能需要更高体积的细胞悬液（最多可达 6×105 个细胞于 6 mL 中）。此外，推荐的 NK 细胞数量是针对本方案中所示的效靶比（E:T）设定的；若使用更高的效靶比，应相应增加每毫升中的 NK 细胞数量（例如，对于 40:1 的 E:T 比例，使用 4×106 个细胞/mL）
注意 6. 我们建议针对所选的目标细胞系进行初步的Calcein-AM负载滴定实验，使用以下稀释比例：1:500、1:400、1:300、1:200 和 1:100，以获得最大释放与自发释放之间的最佳差异。
注意 7. 使用贴壁细胞系作为靶细胞时，首先使用非酶解细胞解离缓冲液制备单细胞悬液。若进行抗体依赖性细胞介导的细胞毒性（ADCC）实验，需在CAM培养基中制备一份靶细胞的平行管。
注意 8. 若进行抗体依赖性细胞介导的细胞毒性（ADCC）实验，将相同的自然杀伤（NK）细胞加入3个对应于ADCC的效靶比（E:T）为10:1的孔中。对其他供体重复该操作。对其他靶细胞也重复该操作。
注意 9. 如果进行 ADCC 实验，在钙黄绿素负载 45 分钟后，加入 10 µg 针对靶细胞、可诱导 ADCC 的特异性抗体。再孵育 15 分钟后，用完全培养基将靶细胞洗涤两次，每次以 1200 rpm 离心 5 分钟。将细胞重悬于完全培养基中，浓度为 1×105 个细胞/mL，并继续执行后续实验步骤。
6. 代表性结果
<img src="/files/ftp_upload/2540/2540fig2.jpg" alt="扩增倍数数据图；单个供体分析；带误差线的点图。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 
图2. 当按照上述方案，以5x10⁶个PBMCs作为起始材料进行扩增时，典型的NK细胞产量范围为1x10⁸9 至 1010 细胞（存在供体依赖性变异）。该图显示了与原始产品中存在的NK细胞相比，NK细胞的扩增倍数（n=19，中位数±四分位距）。
<img src="/files/ftp_upload/2540/2540fig3.jpg" alt="流式细胞术散点图显示细胞表面标志物，扩增前及扩增后第21天分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Figure 3"> 
图3. 扩增后的NK细胞表达多种NK细胞受体，与未扩增的原代NK细胞相比基本相似，仅少数例外（CD11b、CD160和CD244）。
<img src="/files/ftp_upload/2540/2540fig4.jpg" alt="通过CD3、CD16标记和RosetteSep方法展示PBMCs和扩增的NK细胞的流式细胞术图谱" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图4"> 
图4. 从血沉棕黄层中回收PBMCs的结果因供体而异，回收数量范围为300×106至800×106。NK细胞可能占PBMCs的2%–18%。采用RosetteSep法对扩增后的细胞进行纯化时，第14天纯NK细胞的回收率为40–70%。按照推荐的扩增与纯化方案操作，可获得纯度达99%的NK细胞。
<img src="/files/ftp_upload/2540/2540fig5.jpg" alt="AML细胞裂解与效靶比的关系；AML10与AML13比较图；细胞毒性分析；NK细胞。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图5"> 
图5. 扩增后的NK细胞对多种肿瘤细胞系（包括神经母细胞瘤、急性髓系白血病（AML）、骨肉瘤和黑色素瘤）表现出细胞毒性（代表性AML杀伤效果以特异性裂解百分比表示）。

<ol><li>McKenna, D. H. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Good+manufacturing+practices+production+of+natural+killer+cells+for+immunotherapy%3A+a+six-year+single-institution+experience%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Good manufacturing practices production of natural killer cells for immunotherapy: a six-year single-institution experience.</a> Transfusion. 47, 520-520 (2007).</li>
<li>Koehl, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ex+vivo+expansion+of+highly+purified+NK+cells+for+immunotherapy+after+haploidentical+stem+cell+transplantation+in+children%5BTitle%5D)+AND+%22Klinische+Padiatrie%22%5BJournal%5D)">ex vivo expansion of highly purified NK cells for immunotherapy after haploidentical stem cell transplantation in children.</a> Klinische Padiatrie. 217, 345-345 (2005).</li>
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<li>Fujisaki, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replicative+potential+of+human+natural+killer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Replicative potential of human natural killer cells.</a> Br J Haematol. 145, 606-606 (2009).</li>
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</ol>

未声明任何利益冲突。

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_step">NK细胞扩增与激活培养基（NKEM）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>90% RPMI 1640</td><td>Cellgro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10% 胎牛血清</td><td>Gibco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1× 青霉素/链霉素</td><td>Cellgro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1× L-谷氨酰胺</td><td>Gibco</td><td></td><td>使用前对培养基进行过滤除菌。</td></tr><tr><td>50 U/mL IL2</td><td>Proleukin, Novartis Vaccines and Diagnostics, Inc)</td><td></td><td>由200 IU/&amp;mu;L的储备液稀释而成。每次使用前将IL2加入所需体积的培养基中。</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_step">PBMC与NK细胞分离&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>Ficoll-Paque</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alsever's溶液</td><td>Sigma)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RosetteSep人NK细胞富集混合液</td><td>Stemcell Technologies)</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_step">NK细胞细胞毒性检测&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>Calcein-AM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_step">抗体&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p class=&quot;jove_content">用于NK细胞表型分析的抗体列表如下表所示：&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第1管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：同型对照FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>555748</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：同型对照FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>555749</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：同型对照FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>557224</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：同型对照FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340442</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：80</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第2管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：CD56 FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340410</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：NKp30 PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>558407</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：NKp44 PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>558563</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：NKp46 PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>557991</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD3 PE-Cy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555341</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD16 Alexa 647</td><td>BD Pharmingen</td><td>557710</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：70</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第3管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：CD56 FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340410</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：KIR2DL1 PE</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>FAB1844P</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：KIR2DL2/3 PE</td><td> Miltenyi Biotec</td><td>130-092-618</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：KIR3DL1 PE</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>FAB12251P</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD3 PE-Cy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555341</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：NKG2D APC</td><td>BD Pharmingen</td><td>558071</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：70</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第4管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：CD56 FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340410</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD11b PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>555388</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD3 PE-Cy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555341</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD27 APC</td><td>BD Pharmingen</td><td>558664</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：80</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第5管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：CD56 FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340410</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD266（DNAM-1）PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>559789</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD3 PE-Cy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555341</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD160 Alexa647</td><td>eBiosciences</td><td>51-1609-42</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：80</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;p&gt;第6管：（总体积100）&lt;/p&gt;</td></tr><tr><td>抗体：CD56 FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>340410</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD244（2B4）PE</td><td>BD Pharmingen</td><td>550816</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD3 PE-Cy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555341</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：CD197（CCR7）APC</td><td>eBiosciences</td><td>17-1979-42</td><td>体积：5</td></tr><tr><td>抗体：FACS缓冲液</td><td>BD Pharmingen</td><td></td><td>体积：80</td></tr></tbody></table>

人外周血自然杀伤细胞的扩增、纯化及功能评估

Expansion, Purification, and Functional Assessment of Human Peripheral Blood NK Cells 

自然杀伤（NK）细胞在针对多种感染性微生物和肿瘤的免疫监视中发挥重要作用。NK细胞的可获得性有限，且扩增能力受限 体外 限制了自然杀伤细胞免疫疗法的发展。本文描述了一种高效扩增大量功能性自然杀伤细胞的方法 离体 使用表达膜结合型IL21的K562细胞作为人工抗原呈递细胞（aAPC）。
迄今为止，自然杀伤细胞（NK细胞）的过继疗法所使用的细胞产品，均通过供体的稳态白细胞分离术获得，随后进行T细胞耗竭或NK细胞的阳性筛选。该产品通常在IL-2中激活过夜，次日即予以输注1。由于外周血中NK细胞频率较低，在临床试验中所输送的NK细胞数量相对较少。
NK细胞无法扩增 体外 一直是获得足够细胞数量以实现最佳临床效果的限制因素。仅通过高剂量IL-2已实现自然杀伤细胞（NK细胞）的一定程度扩增（在1-2周内扩增5-10倍）。 2自体T细胞的活化可介导NK细胞扩增，可能也是通过局部细胞因子的释放实现的 3. 间充质基质细胞或人工抗原呈递细胞（aAPCs）可支持外周血和脐血来源的自然杀伤细胞的扩增 4使用抗体包被的磁珠联合激活NKp46和CD2目前已被用于NK细胞扩增（Miltenyi Biotec，Auburn CA），可在21天内实现约100倍的扩增。
使用aAPC扩增或激活的NK细胞的临床试验正在进行中，其中一项试验采用白血病细胞系CTV-1来启动和激活NK细胞5 无明显扩增。第二项试验利用EBV-LCL进行NK细胞扩增，在21天内实现平均490倍的扩增6第三种方法利用经4-1BBL（CD137L）和膜结合型IL-15（mIL-15）转导的基于K562的aAPC7，可在21天内实现平均自然杀伤细胞扩增277倍。尽管如此，使用K562-41BBL-mIL15 aAPC扩增的自然杀伤细胞具有高度细胞毒性 体外 和 体内 与未扩增的NK细胞相比，其增殖因端粒缩短导致的衰老而受限，并参与抗体依赖性细胞介导的细胞毒作用（ADCC）8最近有报道称，使用表达 MICA、4-1BBL 和 IL15 的 K562 细胞可实现 NK 细胞扩增 350 倍9.
本文所述的NK细胞扩增方法可在无衰老的情况下实现NK细胞的快速增殖，在21天内中位扩增倍数达到21,000倍。

本文介绍一种高效扩增和纯化大量人自然杀伤（NK）细胞并评估其功能的方法。

自然杀伤（NK）细胞在针对多种感染性微生物和肿瘤的免疫监视中发挥重要作用。由于……可获得性有限

本实验的总体目标是快速扩增大量人自然杀伤（NK）细胞。首先从血沉棕黄层或全血样本中分离外周血单个核细胞（pbmc）或NK细胞，然后将pbmc与人工抗原呈递细胞在NK细胞扩增培养基中进行共培养。在培养基中添加IL-2，可维持NK细胞培养三周，期间每周使用aAPCs进行刺激，并注意将NK细胞数量控制在每毫升培养液不超过1×10⁶个。最后通过非放射性细胞毒实验验证扩增后NK细胞的功能活性。采用此扩增方案，通常在21天结束时可获得中位数达21,000倍的NK细胞扩增产量，这些细胞对多种肿瘤具有高细胞毒活性，该结果已通过钙释放实验确认。这种医学方法有助于回答自然杀伤细胞（NK细胞）生物学领域的一个关键问题，因为历史上获取大量NK细胞非常困难。该技术对人类癌症的免疫治疗具有重要意义，因为生成足够数量的NK细胞用于此类治疗在历史上一直极具挑战性。演示该技术的将是本实验室的高级研究助理Cecily，她将从健康供体获取外周血单个核细胞（P BMCs）血液。通常以血库的血沉棕黄层作为来源。首先，加入PBS将血沉棕黄层的体积调整至140毫升。然后，将35毫升样品叠加于15毫升Fial PA上，进行梯度分离离心，离心条件为400 ×g，20分钟。不要中断操作。仔细从菲科帕（Ficoll-Paque）血浆界面处回收外周血单个核细胞（PBMCs），并将红细胞（RBCs）管留置备用。用磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤PBMCs三次，每次以400 ×g离心10分钟。使用该部分外周血单个核细胞用于自然杀伤细胞扩增。现在返回梯度离心管，吸除上清液。将红细胞转移至两个50毫升离心管中，用PBS洗涤至50毫升刻度线处。离心后，通过刮取红细胞层顶部去除上清液，以去除粒细胞。进行三次洗涤后，将红细胞重悬于等体积的else's溶液中，并在4°C下保存，最长可保存一个月。该红细胞组分可用于在扩增两周后进行NK细胞的花环分离纯化。为了在体外高效扩增功能性NK细胞，使用表达膜结合型IL-21的K562克隆9细胞（下文简称K562细胞）。使用九克隆IL-21作为人工抗原呈递细胞，首先计数外周血单个核细胞（PBMC），并计算出每5×10⁶个细胞所需的体积，用于自然杀伤（NK）细胞扩增。针对每5×10⁶个PBMC，照射10×10⁶个K562九克隆IL-21细胞。使用γ射线照射仪以100 Gy剂量进行照射，照射后的细胞也可冻存以备将来使用。随后用PBS洗涤预先照射的细胞，并将其重悬于NK细胞扩增培养基中。现在将照射过的细胞与PBMC按2:1的比例加入40毫升NK细胞扩增培养基中，将T75培养瓶直立放置于37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中。在第3天，通过400 × g离心5分钟收集活化的细胞，更换一半培养基为新鲜的NKEM，并继续培养。在第5天重复换液操作。一周结束时，计数细胞，留出5 × 10⁵个细胞用于流式细胞术表型分析，并进行第二次刺激计数，同时将K562细胞按1:1比例进行照射。克隆九个IL-21细胞以扩增其细胞，然后将细胞加入NK细胞扩增培养基中，终浓度为每毫升2.5×10⁵个细胞。将细胞置于T75培养瓶中，在扩增第10天和第12天继续以每毫升2.5×10⁵个细胞的密度在NK细胞扩增培养基中传代培养。在扩增第14天，再次对细胞进行计数，并通过流式细胞术对部分样本进行表型分析。使用玫瑰花结分离法（rosette SEP）纯化该源自PBMC的细胞扩增产物，并通过流式细胞术表型分析验证NK细胞的纯度。对纯化的NK细胞使用经辐照的K562克隆9.21细胞以1:1的比例进行第三次刺激。最后在第21天，采用完整的表型抗体组合通过流式细胞术分析扩增后的NK细胞。将细胞冻存于含10% DMSO的FBS中，每管细胞密度最高不超过5 × 10⁷个细胞。细胞毒性实验可使用新鲜或冻存的NK细胞。若使用冻存NK细胞，需在实验当天先将细胞冻存管解冻，接种于NKEM培养基中，恢复培养24小时。取1 × 10⁶个靶细胞重悬于1 mL含钙的NKEM培养基中，于37°C孵育1小时，期间偶尔振荡。在U型底96孔板中，每孔加入200 µL浓度为1 × 10⁶个细胞/mL的NK细胞，设三个复孔，并按所示进行细胞系列稀释。钙负载一小时后，用NK细胞扩增培养基将靶细胞洗涤两次，每次以400 ×g离心五分钟。重新计数靶细胞，并重悬于浓度为1 × 10⁵个细胞/毫升的培养基中。向96孔板的每孔加入100微升靶细胞，以100 ×g离心一分钟以启动细胞接触，随后在37°C、5% CO₂条件下孵育四小时。为了均匀悬浮释放的钙，将细胞沉淀轻轻吹打混匀，在100 ×g条件下离心5分钟，然后小心吸取100微升上清液转移至新的平底96孔板中，注意避免产生气泡；如有必要，可用细针刺破可能形成的气泡。使用荧光酶标仪读板，设置激发滤光片为485纳米，发射滤光片为530纳米。计算特异性裂解百分比。通常，从富集血层（buffy coat）中分离出的 5 × 10⁶ 个 PBMC 扩增后可获得 1 × 10⁹ 至 10¹⁰ 个 NK 细胞。扩增后的 NK 细胞表达多种 NK 细胞受体，其表达水平与富集血层中的未扩增原代 NK 细胞相当。NK细胞可能占第14天外周血单个核细胞（pbmc）的2%至18%。通过Rosette SEP法纯化扩增的细胞，可在NK细胞纯度达到99%（由CD3指示）的条件下，回收培养物中40%至70%的NK细胞。CD56阴性但扩增后的NK细胞对多种肿瘤细胞系表现出细胞毒性，包括神经母细胞瘤、急性髓系白血病（AML）、骨肉瘤和黑色素瘤。此处代表性 A ML 杀伤效应以特异性裂解百分比表示。实时 BIOT 视频展示了自然杀伤细胞对负载钙黄绿素的神经母细胞瘤细胞系 CHP 134 的杀伤过程。在此操作之后，还可进行其他方法，例如分析 NK 细胞的细胞因子产生，或在动物肿瘤模型中进行过继性转移实验，以进一步探究 NK 细胞功能的相关问题。观看本视频后，您应能充分了解如何扩增和纯化大量自然杀伤细胞（NK细胞）。该过程可直接从外周血单个核细胞开始，随后纯化NK细胞；也可先通过花环法纯化NK细胞，再启动扩增。在实验初期，一份典型的血沉棕黄层可获得1500万至4000万个NK细胞，所有这些细胞均可用于通过本方法所述方案扩增出数量极多的NK细胞。

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Immunology and Infection

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