Name: 发光法的分类检测细菌病原体的记者噬菌体 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 31 s
Description: 学习使用基因工程报告噬菌体检测鼠疫耶尔森菌Yersinia pestis的发光法。该方法通过细菌荧光素酶基因luxAB产生生物发光信号，可在数分钟内快速识别病原体，适用于生物安全检测和临床诊断。

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本研究由美国国立卫生研究院的小企业创新研究计划（NIAID，1R43AI082698-01）和美国农业部国家食品与农业研究所（NIFA，2009-33610-20028）资助。

1. Y. pestis 平板接种
<ol>
	<li>划线 Y. pestis A1122（BeiResources # NR15）菌种接种至Luria-Bertani（LB）琼脂（Miller）培养基。采用无菌操作技术，所有步骤均需在无菌条件下进行 Y. pestis 在II类A型生物安全柜中进行操作。 Y. pestis A1122 是一种生物安全等级（BSL）2 级的豁免选定试剂菌株。它缺失了 75 kb 的低钙反应（Lcr）毒力质粒以及 pgm 毒力所必需的基因位点。培养 Y. pestis 在 28°C 在静态温控空气培养箱中培养48小时。细胞的生长速率 Y. pestis 代时较长，为1.25小时 9.</li>
</ol>
2. Y. pestis 液体培养基接种
<ol>
	<li>使用无菌金属接种环，将单个 Y. pestis 菌落转移至含有 2 mL LB 肉汤的无菌 17 x 100 mm 培养管中。选择大小均一、形态典型且与其他菌落明显分离的菌落。短暂涡旋混匀后，于 28°C 摇床培养箱（225 rpm）中培养约 20 小时。</li>
</ol>
3. Y. pestis 菌体复苏、报告噬菌体添加及生物发光检测
<ol>
<li>将过夜培养的 Y. pestis 菌液按1:20比例稀释至新鲜LB肉汤中（例如，将500 μL菌液加入9.5 mL培养基），置于50 mL Falcon管中，于28°C、225 rpm振荡培养，直至600 nm处光密度（A600）达到0.2（约5小时）。建议使用处于活跃生长期的菌体进行检测，因为噬菌体诱导产生生物发光反应的能力与宿主细菌的活力和适应性密切相关。然而，已有研究表明，该检测系统也可兼容生长周期各阶段收获的菌体7。</li>
<li>通过配制2%正癸醛溶液，制备生物发光反应所需的底物。将200 μL正癸醛与9.8 mL LB肉汤混合，剧烈涡旋5秒。用2 mL 2%正癸醛溶液预填充微孔板发光仪的注射器。预先设定发光仪自动向每孔注入67 μL正癸醛溶液，并立即读取样品发光信号10秒。</li>
<li>将LB肉汤按每份1 mL分装至3支培养管中。向每管中加入20 μL报告噬菌体储备液（储备液浓度为5 × 109斑块形成单位[PFU]/mL）；仅含噬菌体与培养基的样品作为阴性对照。在无Y. pestis菌体存在时，加入报告噬菌体不应引发生物发光反应。</li>
<li>将步骤3.1中培养的Y. pestis菌液按每份1 mL分装至6支培养管中。向其中3管加入20 μL报告噬菌体储备液（检测培养物）。剩余3管作为“仅菌体”阴性对照（背景自发生物发光）。短暂涡旋混匀各培养物后，从每份样品中取200 μL（用于0时间点读数），加入白色96孔微孔板中。将剩余培养物置于28°C、225 rpm振荡培养。</li>
<li>使用微孔板发光仪测定0时间点样品的生物发光值（相对光单位，RLU）。</li>
<li>在加入报告噬菌体后的10、20、30、40、50和60分钟，分别从各样品中取200 μL，测定其生物发光值。若存在Y. pestis菌体，报告噬菌体会特异性结合菌体，注入其DNA，并利用宿主的转录与翻译系统表达luxAB报告基因（图1）。</li>
<li>信号强度及响应时间与菌体数量成正比。在高浓度菌体（105–108 CFU/mL）条件下，与对照相比，RLU值在20分钟内应出现显著升高；在较低菌体浓度（102–104 CFU/mL）条件下，RLU值的显著升高应在40–60分钟内显现。</li>
<li>另可采用快速检测方法：无需进行Y. pestis扩增培养，可直接从新鲜培养的平板上挑取单菌落，加入含报告噬菌体的200 μL LB肉汤中，于1.5 mL离心管中涡旋混匀。将菌体/噬菌体混合液加入微孔板孔中，于28°C孵育，并在60分钟后（仅单时间点）测定其生物发光值。</li>
</ol>
4. 代表性结果：
图2展示了报告噬菌体介导检测Y. pestis的典型时间过程实验。阴性对照组包括：1）仅含噬菌体（无细胞）或2）仅含细胞（无噬菌体），在60分钟孵育期间其生物发光水平基本维持在约20 RLU（基础值因 luminometer 而异）。相比之下，检测样本（报告噬菌体与细胞）在加入噬菌体后15分钟即可观察到生物发光信号的明显上升。信号强度应在60分钟内持续稳定增强。若孵育时间过长（超过80分钟），由于噬菌体介导的宿主细胞裂解，信号将从峰值开始下降。在37°C孵育条件下也可获得类似结果，尽管Y. pestis生长的最适温度为28°C9。
<img src="/files/ftp_upload/2740/2740fig2.jpg" alt="细菌感染动力学；柱状图；噬菌体-细胞相互作用检测；相对光单位（RLU）" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 图2. 噬菌体介导的Y. pestis生物发光检测。 在0时刻将报告噬菌体与细胞混合，在28°C下孵育，并随时间监测生物发光信号（RLU）。15分钟内即可观察到RLU显著增加（* 学生t检验，p&lt;0.05）。

<ol><li>Darling, R. G., Catlett, C. L., Huebner, K. D., Jarrett, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Threats+in+bioterrorism.+I%3A+CDC+category+A+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Emerg+Med+Clin+North+Am%22%5BJournal%5D)">Threats in bioterrorism. I: CDC category A agents.</a> Emerg Med Clin North Am. 20, 273-309 (2002).</li>
<li>Chu, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChu%2C+MC+%22Laboratory+manual+of+plague+diagnostic+tests.%22">Laboratory manual of plague diagnostic tests.</a>. , Centers for Disease Control and Prevention. Atlanta. (2000).</li>
<li>, (1999).</li>
<li>Inglesby, T. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anthrax+as+a+biological+weapon%2C+2002%3A+updated+recommendations+for+management%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Anthrax as a biological weapon, 2002: updated recommendations for management.</a> JAMA. 287, 2236-2252 (2002).</li>
<li>Schuch, R., Fischetti, V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detailed+genomic+analysis+of+the+Wbeta+and+gamma+phages+infecting+Bacillus+anthracis%3A+implications+for+evolution+of+environmental+fitness+and+antibiotic+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Detailed genomic analysis of the Wbeta and gamma phages infecting Bacillus anthracis: implications for evolution of environmental fitness and antibiotic resistance.</a> J Bacteriol. 188, 3037-3051 (2006).</li>
<li>Garcia, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genome+sequence+of+Yersinia+pestis+bacteriophage+phiA1122+reveals+an+intimate+history+with+the+coliphage+T3+and+T7+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">The genome sequence of Yersinia pestis bacteriophage phiA1122 reveals an intimate history with the coliphage T3 and T7 genomes.</a> J Bacteriol. 185, 5248-5262 (2003).</li>
<li>Schofield, D. A., Molineux, I. J., Westwater, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+bioluminescent+phage+for+detection+of+Yersinia+pestis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Diagnostic bioluminescent phage for detection of Yersinia pestis.</a> Journal of Clinical Microbiology. 47, 3887-3894 (2009).</li>
<li>Schofield, D. A., Westwater, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phage-mediated+bioluminescent+detection+of+Bacillus+anthracis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Phage-mediated bioluminescent detection of Bacillus anthracis.</a> Journal of Applied Microbiology. 107, 468-478 (2009).</li>
<li>Chu, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChu%2C+MC+%22CDC%3A+Basic+laboratory+protocols+for+the+presumptive+identification+of+Yersinia+pestis%22">CDC: Basic laboratory protocols for the presumptive identification of Yersinia pestis</a>. , Centers for Disease Control and Prevention. 1-19 (2001).</li>
<li>Gunnison, J. B., Larson, A., Lazarus, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+differentiation+between+Pasteurella+pestis+and+Pasteurella+pseudotuberculosis+by+action+of+bacteriophage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Rapid differentiation between Pasteurella pestis and Pasteurella pseudotuberculosis by action of bacteriophage.</a> J Infect Dis. 88, 254-255 (1951).</li>
<li>Lazarus, A. S., Gunnison, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Action+of+Pasteurella+pestis+Bacteriophage+on+Strains+of+Pasteurella%2C+Salmonella%2C+and+Shigella%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">The Action of Pasteurella pestis Bacteriophage on Strains of Pasteurella, Salmonella, and Shigella.</a> J Bacteriol. 53, 705-714 (1947).</li>
<li>Sergueev, K. V., He, Y., Borschel, R. H., Nikolich, M. P., Filippov, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+sensitive+detection+of+Yersinia+pestis+using+amplification+of+plague+diagnostic+bacteriophages+monitored+by+real-time+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Rapid and sensitive detection of Yersinia pestis using amplification of plague diagnostic bacteriophages monitored by real-time PCR.</a> PLoS One. 5, e11337-e11337 (2010).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

该方法展示了报告噬菌体快速检测鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）的能力，因为报告噬菌体在加入噬菌体后20分钟内即可对培养的鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）细胞产生生物发光信号响应。该报告噬菌体还能够在临床样本基质中直接检测鼠疫耶尔森菌（Y. pestis），无需预先进行分离和后续培养7。与通常需要48小时才能完成的标准噬菌体裂解试验相比，该方法显著缩短了检测时间。
既往研究表明，野生型ΦA1122噬菌体能够裂解几乎所有天然的Y. pestis分离株，并且对Y. pestis具有“特异性”6,10,11；然而，某些Y. pseudotuberculosis菌株在温度高于20°C时培养已被证实对ΦA1122敏感6,10,12。这种温度敏感性差异易感性的原因尚不明确，但可能与细胞表面结构/成分的温度依赖性变化有关。因此，报告噬菌体检测系统的一个潜在局限性是可能与近缘物种Y. pseudotuberculos...

<table><tbody><tr><td>Difco LB 琼脂，Miller</td><td>VWR international</td><td>90003-346</td><td></td></tr><tr><td>Difco LB 肉汤，Miller</td><td>VWR international</td><td>90003-350</td><td></td></tr><tr><td>17 x 100 mm 培养管</td><td>USA Scientific, Inc.</td><td>1485-0810</td><td></td></tr><tr><td>n-癸醛</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D7384</td><td></td></tr><tr><td>Veritas 微孔板发光仪</td><td>Turner Biosystems</td><td>9100-001</td><td></td></tr><tr><td>Microlite 96 孔微量滴定板</td><td>VWR international</td><td>62402-984</td><td></td></tr></tbody></table>

用于检测a类细菌病原体的“生物发光”报告噬菌体

'Bioluminescent' Reporter Phage for the Detection of Category A Bacterial Pathogens

Yersinia pestis 和 Bacillus anthracis 属于A类细菌病原体，分别为鼠疫和炭疽的致病菌1。尽管这两种疾病在自然界中的发生率目前相对较低，但恐怖组织将这些病原体用作生物武器的可能性是真实存在的。由于这些疾病具有固有的传染性、快速的临床进程以及高死亡率，迅速发现疫情暴发至关重要。因此，必须采用能够实现快速检测与诊断的技术方法，以确保及时实施公共卫生措施并启动危机管理机制。
重组报告噬菌体可能为检测提供一种快速且特异的方法 Y. pestis 和 B. anthracis 美国疾病控制与预防中心目前采用经典的噬菌体裂解试验来确证这些细菌病原体 2-4这些检测方法利用了天然存在的噬菌体，这些噬菌体对其特定的细菌宿主具有专一性和裂解性。在特定噬菌体存在下对培养的细菌进行过夜培养后，噬菌斑（细菌裂解区域）的形成可作为细菌靶标的阳性鉴定依据。尽管这些检测方法具有良好的可靠性，但仍存在三个局限性：1）需在实验室中进行；2）需要从可疑样本中分离并培养细菌；3）完成检测需耗时24–36小时。为解决这些问题，研究人员通过将 Vibrio harveyi luxAB 基因组中的基因 Y. pestis 和 B. anthracis 特异性噬菌体 5-8. 所得结果 luxAB 报告噬菌体能够通过快速（数分钟内）且灵敏地赋予受体细胞生物发光表型，从而特异性地检测其目标。重要的是，该检测既可在培养的受体细胞中实现，也可在模拟感染的临床样本中完成。 7.
为演示目的，本文描述了利用噬菌体检测已知目标的方法 Y. pestis 使用以下方法分离 luxAB 由美国疾病控制与预防中心（CDC）鼠疫诊断噬菌体ΦA1122构建的报告噬菌体 6,7 （图1）。一种类似的方法，经微小修改（例如培养温度和培养基的改变），可用于检测 B. anthracis 使用以下方法分离菌株 B. anthracis 报告噬菌体 Wβ::luxAB 8. 该方法描述了通过噬菌体介导将生物发光表型转导至培养物中的过程 Y. pestis 使用微量板发光仪对后续的细胞进行测量。与传统的噬菌体裂解实验相比，该方法的主要优势在于操作简便、结果快速，以及能够在96孔微量板中同时检测多个样品。
<img alt="Y. pestis 基因编辑示意图，显示 luxAB 噬菌体整合及发光过程。" src="/files/ftp_upload/2740/2740fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 
图 1. 检测示意图。 将噬菌体与样品混合，噬菌体感染细胞，表达 luxAB，细胞产生生物发光。无需样品前处理；将噬菌体与细胞混合后直接检测发光信号。

一种用于鉴定优先级细菌病原体的简单方法是使用基因工程改造的报告噬菌体。这些报告噬菌体对其特定宿主菌种具有专一性，能够迅速将生物发光信号转导至宿主细胞。本文描述了利用报告噬菌体检测Yersinia pestis的方法。

用于检测A类细菌病原体的“生物发光”报告噬菌体

鼠疫耶尔森菌（Yersinia pestis）和炭疽杆菌（Bacillus anthracis）属于A类细菌病原体，分别为鼠疫和炭疽的致病菌1。...

鼠疫耶尔森菌（Yersinia pestis）和炭疽杆菌（Bacillus anthracis）属于A类细菌性病原体，分别为鼠疫和炭疽病的致病因子。尽管这两种疾病在自然界中的发生率目前已相对罕见，但恐怖组织将这些病原体用作生物武器的可能性确实存在。本视频演示了一种检测和鉴定鼠疫耶尔森菌的方法。首先，将微生物在农业平板和液体培养基中进行培养。接着，向培养物中加入针对鼠疫耶尔森菌的特异性报告pH。该报告pH在其基因组中携带编码细菌荧光素酶的基因luxAB。如果存在鼠疫耶尔森菌（Yersinia pestis）细胞，报告噬菌体会特异性地结合到细胞上，注入其携带 luxAB 基因的重组DNA，并利用宿主的转录和翻译机制来转录和翻译 luxAB 报告基因。获得的结果显示样本获得了生物发光表型，表明未知微生物已被明确鉴定为鼠疫耶尔森菌。与传统噬菌体裂解实验等现有方法相比，该技术的主要优势在于检测和鉴定鼠疫耶尔森菌所需时间仅为数分钟，而非数天。该方法可用于快速鉴定，检测鼠疫耶尔森菌的存在，既可使用分离培养物，也可直接用于复杂的临床或环境样本。该技术的应用意义延伸至鼠疫的诊断，因为若未在症状出现后的最初24小时内进行治疗，该疾病通常具有致命性。因此，及时鉴定鼠疫耶尔森菌对获得良好预后至关重要。由于噬菌体几乎存在于所有细菌物种中，该方法有望被改造并应用于任何在医学、环境或农业领域具有重要意义的耶尔森菌物种。A 1122 是一种生物安全二级排除的特定病原体菌株。它缺乏75千碱基的Perlo钙反应或LCR毒力质粒以及毒力所必需的PGM位点。在II级A型生物安全柜中，采用无菌技术划线接种鼠疫耶尔森菌A 1122，开始本实验操作。如图所示，将菌种接种于LB琼脂平板上。将平板倒置，于28摄氏度的静止恒温空气培养箱中培养48小时。鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）生长缓慢，经过两天后其世代时间为1.25小时。使用无菌金属接种环挑取一个鼠疫耶尔森菌（Yersinia pestis）单菌落。选择大小均一、具有其他菌落代表性特征且与培养皿上其他菌落明显分离的菌落。将该菌落转移至一支无菌的17 mm × 100 mm培养管中，管内含有2 mL LB肉汤培养基。盖上离心管，短暂涡旋振荡，然后置于摇床培养箱中，在 28 摄氏度、225 RPM 条件下振荡培养约 20 小时。本实验建议使用处于活跃生长期的细胞进行检测。由于噬菌体的转导能力与宿主细菌的活力和适应性相关，因此生物发光反应可反映宿主细菌的活性与生理状态。然而，检测系统已被证明可与生长周期各个阶段收获的细胞兼容。培养20小时后，在50毫升锥形管中将鼠疫耶尔森菌培养物按1比20稀释，即加入500微升菌液至10毫升LB肉汤中。将培养物重新置于28摄氏度的摇床培养箱中。培养菌液至其在600纳米处的光密度达到0.2。此过程大约需要五小时，以生成生物发光反应底物。通过将200微升N-癸醛与9.8毫升LB肉汤混合，配制2% N-癸醛溶液。剧烈涡旋5秒。接下来，为微孔板发光仪的注射器进行预冲洗。将注射器管路的一端放入含有13毫升2%次氯酸钠溶液的试管中，另一端放入废液容器中。使用设备软件，指示仪器用两毫升的癸醛溶液对注射管线进行预冲洗。完成操作后，管路中应充满底物，将注射管末端放回原定位置，准备向孔中注射。接下来，指示化学发光仪自动向每块微孔板注入67微升的deel溶液。随即立即测量发光强度，持续10秒。接下来，为每个样品准备三个平行样，为每种条件标记三根培养管。此处除待测样品外，还将制备仅含培养基的对照组和仅含细胞的对照组。因此，需要九支试管来制备仅含噬菌体的对照样品，将1毫升的LB肉汤分别加入三支培养管中。向每支试管中加入20微升报告噬菌体，其储存液浓度为每毫升5 × 10⁹斑块形成单位（PFU/mL）。在没有鼠疫耶尔森菌细胞的情况下，加入报告噬菌体不应引发生物发光反应。接下来，为准备测试样品，将一毫升等分试样的鼠疫耶尔森菌培养物分装到三个培养管中。向其中三个培养物中各加入20微升的报告噬菌体储备液。通过短暂涡旋振荡混合培养物，以单独制备细胞。阴性对照用于确定背景自发光，需将一毫升等分试样的鼠疫耶尔森菌培养物分配至另外三个培养管中。样品制备完成后，从每种培养物中转移200 µL至白色96孔微孔板的各孔中，用于零时读数。将每种培养物的剩余部分置于28摄氏度的摇床中，使用微孔板发光仪测量时间，并对生物发光或相对光单位进行空白校正。取200微升各培养物，使用微孔板发光仪在20、30、40和60分钟时进行生物发光检测。加入报告噬菌体以加速检测过程，无需鼠疫耶尔森菌扩增，从新鲜培养的平板上挑取单菌落转移至含有200微升LB培养基（含报告噬菌体）的微量离心管中。通过涡旋振荡混匀样品，然后将细胞与噬菌体混合物分配至微孔板的孔中。将微孔板在28摄氏度下孵育60分钟。然后读取样品的生物发光信号。本视频中展示的检测方法可检测鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）细胞的存在，具体原理已在引言部分说明。当存在鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）时，报告噬菌体将结合到细胞上的特异性受体，注入其DNA，并利用宿主的转录和翻译系统来转录和翻译luxE报告基因。信号强度及信号响应时间与细胞数量成正比，在细胞浓度较高时（每毫升10⁵至10⁸ CFU）尤为明显。与对照组相比，在较低的细胞浓度下（每毫升 10² 至 10⁴ CFU），20 分钟内应可明显观察到 RLU 的显著增加。RLU 的显著增加应在 40 至 60 分钟内显现。此处展示的是报告噬菌体介导检测鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）的一个代表性时间进程实验，时间为零时。将报告噬菌体与细胞混合后，在28摄氏度下孵育，并随时间监测生物发光RLU值。12分钟内即可观察到RLU值上升，差异具有统计学显著性（P值小于0.05）。噬菌体单独或细胞单独的阴性对照组在60分钟孵育期间的生物发光基线水平约为20 RLU。需注意，基线水平因 luminometer 仪器而异。相比之下，在加入噬菌体 12 分钟后，测试样品的报告噬菌细胞的生物发光信号明显增强。信号强度应在 50 分钟内持续上升，尽管此处未显示；然而，若孵育时间超过 80 分钟，由于噬菌体介导的宿主细胞裂解，信号将从峰值开始下降。在 37 摄氏度的孵育温度下也可获得类似结果，尽管鼠疫耶尔森菌（Y. pestis）生长的最适温度为 28 摄氏度。观看本视频后，您应能充分理解如何利用重组报告系统进行检测。一旦掌握了鼠疫耶尔森菌（Yersinia pestis）的鉴定方法，使用S型金黄色菌落作为初始接种物，该技术可在30分钟内完成。在实验室中进行该操作并使用噬菌体时，需特别注意，噬菌体极易污染细菌储备培养物，因此应尽量减少污染的可能性。使用一次性塑料制品和移液器吸头，并定期更换手套。报告基因引发Blum反应的能力与细胞的适应性相关。因此，在鉴定出Yesenia Pesta后，可利用该报告基因测定分离株的抗生素敏感性。例如，将耶氏菌（Yesenia pesta）细胞与抑制浓度的抗生素共同孵育后，这些细胞将无法产生生物发光信号，或其产生生物发光信号的能力将受到严重抑制。相反，具有抗生素抗性的耶氏菌（Yesenia pesta）细胞则不会受到抗生素存在的影响，能够产生与未受抑制细胞相似的生物发光反应。因此，可快速确定该病原体对抗生素的敏感性谱型。为了说明目的，我们使用了一种减毒的耶氏菌鼠疫菌株。在本实验中，耶氏菌病原体属于细菌性病原体类别。当使用经检测含有鼠疫耶尔森菌（Yesenia Pestis）的样本进行此技术操作时，必须遵循适当的生物安全和生物危害防护措施。

bioluminescent-reporter-phage-for-detection-category-bacterial

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

“发光法”的分类检测细菌病原体的记者噬菌体

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