Name: ReAsH / FLASH标签和图像分析Tetracysteine传感器蛋白在细胞中 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-31T12:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 19 s
Description: 学习使用双砷染料FlAsH和ReAsH标记活细胞中的四半胱氨酸标签蛋白，并通过共聚焦显微镜和ImageJ软件进行定量结合分析。该方法可用于研究蛋白质构象变化。

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本工作由澳大利亚国家健康与医学研究理事会（NHMRC）项目资助，资助对象为 DMH 和 TDM。DMH 是由 Miegunyah 信托基金资助的 Grimwade 学者。

1. 使用 ReAsH/FlAsH 标记细胞的准备
<ol>
	<li>采用针对目标细胞系的标准细胞培养方法，在活细胞成像载玻片中直接培养贴壁细胞，以备转染。</li>
	<li>根据所选的转染方法，将含有TC标签目标基因的质粒转染至细胞中。</li>
</ol>
需要注意的是，应使用阳性和阴性对照来评估与TC标签特异性结合的程度，并在采集共聚焦显微图像时评估各荧光通道间的串色情况。因此，对于双色实验（例如FlAsH/Cherry、ReAsH/CFP或ReAsH/GFP组合），需确保准备单色样品（例如仅表达荧光蛋白的样品，或尽可能使用与FlAsH/ReAsH结合的TC标签蛋白但不带荧光蛋白的样品）
<ol start="3">
	<li>转染后一至两天，用 300 μL 预热至 37 °C 的 HBSS 轻柔冲洗细胞。</li>
	<li>用含有 1 μM FlAsH（或 ReAsH）和 10 μM 1,2-乙二硫醇（EDT）的 300 μL 预热 HBSS 轻柔浸没细胞。</li>
</ol>
在加入FlAsH/ReAsH之前，必须先加入EDT，并在即将加入细胞前配制缓冲液。在组织培养孵育箱中精确孵育30分钟，温度为37 °C。根据我们的经验，孵育时间延长会显著增加背景荧光。新的构建体也应优化标记时间和FlAsH/ReAsH浓度（0.5–2 μM）。
<ol start="5">
	<li>轻轻吸去细胞中的标记液，然后加入 300 μL 预热的 HBSS + 250 μM 2,3-二巯基丙醇（BAL），在 37 °C 下孵育 15 分钟。</li>
	<li>轻轻吸去洗涤液，加入 300 μL 预热的 HBSS 替代。</li>
</ol>
此洗涤步骤后，可用多聚甲醛固定细胞（使用3.2%溶液固定15分钟），但我们发现这会增加双砷染料的非特异性荧光。因此，我们通常在室温下对活细胞进行成像。（注意：标记前固定细胞会阻止双砷染料的结合。）
2. 在共聚焦显微镜下成像细胞
<ol>
	<li>在共聚焦显微镜上设置各个荧光染料的成像参数（见表1），并确保各通道之间几乎没有串色。可通过对照样品中每种荧光染料在不同荧光采集设置下的信号情况进行检查来实现。调整发射波长范围有助于最小化串色（尽管这可能同时降低信噪比）。</li>
	<li>同时调整光电倍增管设置，使样品中的最强荧光信号不会导致探测器饱和（可使用Leica SP2共聚焦显微镜的Q-LUT模式检测）。一旦确定最佳成像参数，在所有样品间均不得更改任何设置。</li>
	<li>我们通常使用的其他设置（尽管可进一步优化）包括：扫描速率为200 Hz，采集4次线平均，针孔直径为1个艾里单位。如果信噪比存在问题，可适当扩大针孔直径，但可能会导致一定程度的成像分辨率损失。</li>
	<li>尽可能以12位（或更高）格式采集共聚焦图像。12位格式相比8位格式能为每个像素强度捕获更宽的动态范围值（分别为0–4095与0–255）。这对于确保记录最丰富的数据集至关重要，从而最大化定量数据分析的质量。</li>
	<li>对所有样品均需采集荧光蛋白通道（Cherry、GFP或CFP）以及双砷染料通道（FlAsH或ReAsH）的图像。</li>
</ol>
3. 数据分析
<ol>
	<li>在您的计算机上安装 ImageJ 软件8。<a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></li>
	<li>确保您的 ImageJ 版本包含以下插件：
		<ul>
			<li><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/file-opener.html">http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/file-opener.html</a></li>
			<li><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/image_correlator.html">http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/image_correlator.html</a></li>
			<li><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/lut-editor.html">http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/lut-editor.html</a></li>
		</ul>
	</li>
	<li>打开 ImageJ，如果使用的是早于 v1.32c 的版本，请点击以下选项以启用同时打开多个图像的功能（可通过按住 Control 键并点击不同文件实现）： 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step1.jpg" alt="ImageJ 软件界面；设置数据导出的输入/输出选项；工作流程配置示意图。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"></li>
	<li>在 ImageJ 中打开感兴趣的图像。 
	ImageJ 将自动为每幅图像单独定义屏幕上显示的最大和最小像素强度。由于不同图像的像素强度不同，这意味着所显示的图像在视觉上不可直接比较。</li>
	<li>为确保所有已打开的图像处于相同的显示尺度，您可以手动设定要查看的上下像素强度值（这不会像某些其他软件那样改变图像的实际数据内容）。这些值可在以下菜单中设置： 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step2.jpg" alt="ImageJ 软件界面；亮度/对比度调整，直方图；图像处理设置。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"></li>
	<li>另一种方法是使用图像堆栈（stack），将所有图像合并为一个文件，并自动将堆栈中的所有图像（用于查看）缩放到同一尺度。处理数据最简便的方式是将每个通道转换为堆栈。因此，对于荧光蛋白通道，应如图所示将所有图像转换为堆栈。您可以通过将标题中包含相同名称（例如“ch00”）的所有图像堆叠起来，轻松选择一个通道。 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step3.jpg" alt="ImageJ 软件界面；图像堆叠操作说明；过程菜单；工具窗口；教育用途。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 3"></li>
	<li>现在将所有已打开的图像转换为 8 位格式以进行分析。这会将显示范围实际重缩放为 0–255 范围（即定义 8 位图像）。 
	重要：切勿覆盖原始的 12 位（或更高）格式文件，否则将丢失信息内容。请注意，某些软件包仅能显示 8 位图像，因此该格式在制作图表等方面非常有用。 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step4.jpg" alt="ImageJ 软件截图，展示用于数字图像处理的图像类型转换菜单。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 4"></li>
	<li>使用“另存为…”选项，将副本保存到名为“8-bit converted”的新文件夹中。</li>
	<li>检查双砷染料在整个图像中结合程度的一种方法是进行像素强度相关性图分析。该图将一个通道中的每个像素值与第二个通道中对应位置的像素值进行对比。因此，如果结合程度高，则 CFP 荧光信号强的位置，ReAsH 荧光信号也应较强。</li>
	<li>为分析像素共相关性，请确保 8 位的 ReAsH 和 Cerulean/GFP 图像已在 ImageJ 中打开。</li>
	<li>按如下所示打开“Image Correlator”插件。将“Image1”选择为 ReAsH 或 FlAsH 堆栈，将“Image2”选择为荧光蛋白堆栈。 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step5.jpg" alt="图像相关性分析方法，菜单选择，软件界面，图像分析设置。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 5"></li>
	<li>生成的堆栈可能不显示任何详细信息——这是正常现象。将该堆栈保存到名为“Scatterplots”的新文件夹中，并使用与其对应的样本相同的文件名（例如“FlAsH-cherry correlation plot”）。</li>
	<li>为有意义地查看数据，您可以选择以下两种方式之一。首先将数据转换为对数格式，然后按如下方式视觉上重新缩放数据： 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step6.jpg" alt="ImageJ 软件过程菜单；相关性图与亮度控制窗口；数据分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 6"></li>
	<li>或者，您也可以视觉上重新缩放数据，仅显示低值范围（例如 1–255），并使用特殊 LUT 显示数据。LUT（查找表）表示为图像中每个像素值分配颜色的颜色表。 这可用于为图像定义伪彩色方案，在突出图像中某些特征时非常有用。要创建自定义 LUT，请点击“LUT editor”并新建一个如图所示的 LUT（可保存并在以后使用）。 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step7.jpg" alt="ImageJ LUT 编辑过程；示意图展示颜色菜单导航及用于自定义的 LUT 编辑器。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 7"></li>
	<li>将亮度/对比度范围设置为 0–255（如上文步骤 13 所述）。为将屏幕上显示的图像“固定”下来，可将图像转换为 RGB 格式，该格式为每个像素的红、绿、蓝三种颜色分别保存一个 8 位值。 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step8.jpg" alt="ImageJ 软件界面，RGB 颜色选择的菜单导航，图像分析工具。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 8"> 
	要将图像复制并粘贴到其他程序中，请首先打开 8 位或 16 位图像。如上文步骤 14 所述，为图像分配一个 LUT 颜色方案。对于 CFP，请如下所述分配“Cyan”LUT… 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step9.jpg" alt="ImageJ 菜单，展示用于图像分析的颜色查找表选择。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 9"></li>
	<li>选择图像后，通过以下操作将其复制到剪贴板： 
	<img src="/files/ftp_upload/2857/2857step10.jpg" alt="ImageJ 菜单界面，展示用于分析和图像编辑的数据复制过程。" data-altupdatedat="1788235205000"></li>
</ol>
4. 代表性结果：
使用双砷染料对细胞进行标记的成功与否取决于几个关键参数。首先，染料标记的时间至关重要。我们发现，过长的标记时间（超过30分钟）会导致非特异性背景染色水平显著升高。图1显示了此前描述的野生型亨廷顿蛋白片段（25Q）与CFP衍生物Cerulean融合，并在其上携带TC标签的典型结果 7该样品用ReAsH染色30分钟，未携带TC标签的样品背景信号极低。我们发现，使用多聚甲醛固定细胞会增加背景信号，而使用甲醇固定则会消除荧光蛋白标签的荧光。因此，在条件允许的情况下，我们优先对活细胞进行成像。还需注意的是，使用双砷染料标记前若进行固定，会阻碍染料的结合，这可能是由于TC基序发生了修饰所致。
获得稳定结果的另一个关键因素是细胞密度。我们发现，成像时细胞应呈松散分布，而过度聚集可能导致不同细胞中双砷染料染色不均。
<img src="/files/ftp_upload/2857/2857fig1.jpg" alt="荧光显微镜，CFP/ReAsH叠加，像素强度相关性，蛋白质相互作用研究。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 
图1. 转染表达亨廷顿蛋白（外显子1-25Q）-青色荧光蛋白融合蛋白的活细胞中四半胱氨酸标签与ReAsH染色结果。TC标签位于亨廷顿蛋白与青色荧光蛋白融合处的连接区域（如文献7所述）。像素强度相关性图可用于评估细胞内不同区域ReAsH结合的差异，并可用于绘制由构象变化或配体相互作用引起的ReAsH结合变化图谱。

<ol><li>Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+green+fluorescent+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Biochem%22%5BJournal%5D)">The green fluorescent protein.</a> Ann. Rev. Biochem. 67, 509-544 (1998).</li>
<li>Griffin, B. A., Adams, S. R., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+covalent+labeling+of+recombinant+protein+molecules+inside+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Specific covalent labeling of recombinant protein molecules inside live cells.</a> Science. 281, 269-2672 (1998).</li>
<li>Uttamapinant, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fluorophore+ligase+for+site-specific+protein+labeling+inside+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">A fluorophore ligase for site-specific protein labeling inside living cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 10914-10919 (2010).</li>
<li>Ignatova, Z., Gierasch, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+protein+stability+and+aggregation+in+vivo+by+real-time+fluorescent+labeling%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Monitoring protein stability and aggregation in vivo by real-time fluorescent labeling.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 101, 523-528 (2004).</li>
<li>Coleman, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conformational+detection+of+prion+protein+with+biarsenical+labeling+and+FlAsH+fluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Conformational detection of prion protein with biarsenical labeling and FlAsH fluorescence.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 380, 564-568 (2009).</li>
<li>Luedtke, N. W., Dexter, R. J., Fried, D. B., Schepartz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surveying+polypeptide+and+protein+domain+conformation+and+association+with+FlASH+and+ReAsH%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Surveying polypeptide and protein domain conformation and association with FlASH and ReAsH.</a> Nat. Chem. Biol. 3, 779-784 (2007).</li>
<li>Ramdzan, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conformation+sensors+that+distinguish+monomeric+proteins+from+oligomers+in+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Conformation sensors that distinguish monomeric proteins from oligomers in live cells.</a> Chem. Biol. 17, 371-379 (2010).</li>
<li>Abramoff, M. agelhaes, PJ, S. J. R. am <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Image+processing+with+ImageJ%5BTitle%5D)+AND+%22Biophotonics+International%22%5BJournal%5D)">Image processing with ImageJ.</a> Biophotonics International. 11, 36-42 (2004).</li>
<li>Hearps, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biarsenical+dye+Lumio+exhibits+a+reduced+ability+to+specifically+detect+tetracysteine-containing+proteins+within+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Fluor%22%5BJournal%5D)">The biarsenical dye Lumio exhibits a reduced ability to specifically detect tetracysteine-containing proteins within live cells.</a> J. Fluor. 17, 593-597 (2007).</li>
<li>Adams, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+biarsenical+ligands+and+tetracysteine+motifs+for+protein+labeling+in+vitro+and+in+vivo%3A+Synthesis+and+biological+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">New biarsenical ligands and tetracysteine motifs for protein labeling in vitro and in vivo: Synthesis and biological applications.</a> J. Am. Chem. Soc. 124, 6063-6076 (2002).</li>
<li>Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+choosing+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Meth%22%5BJournal%5D)">A guide to choosing fluorescent proteins.</a> Nat. Meth. 2, 905-909 (2005).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

利用荧光蛋白标记蛋白质定位，并用第二种染料标记其构象特性，这种方法在绘制蛋白质不同构象在细胞内的分布以及揭示影响蛋白质构象动态变化的事件方面具有巨大潜力。ReAsH/FlAsH 最初被用作哺乳动物细胞维甲酸结合蛋白 I 蛋白折叠的细胞内传感器4。在此实例中，FlAsH 结合至经基因工程改造、插入细胞维甲酸结合蛋白 I 中的 TC 标签，在蛋白质折叠状态下的荧光产率低于未折叠状态，从而可在E. coli细胞中追踪其折叠过程。最近，通过双位点四半胱氨酸展示技术，已在模型蛋白中实现了对蛋白质折叠和自关联现象的检测6。在此示例中，当含有双半胱氨酸对的两个肽段结合时，或通过一个肽段折叠从而重建出可结合双砷染料的功能性四半胱氨酸基序时，原本位于远端的双半胱氨酸对被拉近至邻近位置。我们进一步拓展了该方法，开发出能够区分单体与寡聚体的传感器，其原理在于所有寡聚体形式中，TC 标签均因空间位阻而无法与双砷染料结合7。
尽管TC标签和双砷染料作为构象变化和相互作用的报告分子具有潜力，但由于存在基线背景荧光，其信噪比较荧...

<table><tbody><tr><td>8孔 &amp;mu;-载玻片</td><td>Ibidi</td><td>80826</td><td>我们发现这些培养室载玻片在用于成像的细胞培养中特别有用。</td></tr><tr><td>TC-FlAsH II 细胞内四半胱氨酸标签检测试剂盒 *绿色荧光* *适用于活细胞成像*</td><td>Invitrogen</td><td>T34561 (FlAsH) 或 T34562 (ReAsH)</td><td></td></tr><tr><td>Hanks&amp;rsquo; 平衡盐溶液</td><td>Invitrogen</td><td>14175-103</td><td></td></tr><tr><td>2,3-二巯基-1-丙醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1129-5ML</td><td></td></tr><tr><td>1,2-乙二硫醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>02390-25ML</td><td></td></tr></tbody></table>

细胞中四半胱氨酸传感器蛋白的reash/flash标记与图像分析

ReAsH/FlAsH Labeling and Image Analysis of Tetracysteine Sensor Proteins in Cells

荧光蛋白和染料是研究细胞内蛋白质转运、定位和功能的重要工具。虽然绿色荧光蛋白（GFP）等荧光蛋白已被广泛用作融合标签，以追踪目标蛋白的特性1，但近年来发展的小分子标签技术使得在细胞中研究蛋白质的新功能成为可能，例如构象变化和蛋白质相互作用2, 3。其中一种小标签系统是在目标蛋白中基因插入四半胱氨酸基序（CCXXCC），该基序可特异性结合双砷染料ReAsH（红色荧光）和FlAsH（绿色荧光），即使在活细胞中也具有高度特异性2。与荧光蛋白相比，TC/双砷染料系统的空间位阻更小，因此已促成多种用于检测构象变化和蛋白质-蛋白质相互作用的新方法4-7。我们最近开发了一种TC标签的新应用，用于检测表达突变亨廷顿蛋白的细胞中的寡聚化状态；该蛋白在亨廷顿病中发生突变后会在神经元中形成聚集体7。我们将亨廷顿蛋白标记了两种荧光探针：一种是用于追踪蛋白位置的荧光蛋白，另一种是TC标签，后者仅在单体状态下结合双砷染料。因此，通过分析蛋白与双砷染料反应性之间的共定位变化，可实现对细胞内亚显微水平寡聚体含量的空间定位成像。本文中，我们描述了如何在活体哺乳动物细胞中使用FlAsH或ReAsH对与荧光蛋白（Cherry、GFP或CFP）融合的TC标签蛋白进行标记，并介绍如何定量分析双色荧光信号（Cherry/FlAsH、CFP/FlAsH或GFP/ReAsH组合）。

双砷染料FlAsH和ReAsH可特异性结合蛋白质中的四半胱氨酸基序，能够选择性地标记活细胞中的蛋白质。近年来，该标记策略已被用于开发针对不同蛋白质构象或寡聚状态的传感器。本文描述了该标记方法及定量分析结合情况的技术。

细胞中四半胱氨酸传感器蛋白的ReAsH/FlAsH标记与图像分析

荧光蛋白和染料是研究细胞内蛋白质转运、定位和功能的重要工具。尽管荧光蛋白……

本实验的总体目标是对表达四半胱氨酸和荧光标记蛋白的细胞用 flash 或 ash 染料进行标记，并对结果进行定量分析。首先将携带荧光蛋白及含有四半胱氨酸标签的目标蛋白的质粒转染至目的细胞系中。接着，用 R 或 flash 对表达的蛋白进行标记，然后用 BAL 洗涤去除非特异性结合的染料，以备显微成像使用。然后使用共聚焦显微镜采集细胞在 ash 或 flash 及荧光蛋白通道下的荧光图像。最后，利用 ImageJ 分析图像，以定量 ash 或 flash 与靶蛋白的结合情况。最终可获得结果显示在细胞中 ash 或 flash 与靶蛋白结合的程度，该结果通过 ash 荧光与荧光蛋白荧光的相关性得出。与现有方法（例如仅将目标蛋白与GFP结合）相比，该技术的主要优势在于能够同时追踪蛋白的第二项特性，例如在定位之外还能检测其构象变化。该方法有助于回答蛋白质亚结构与功能研究领域中的关键问题，例如定位事件、构象变化以及影响TAC结合或闪光能力的LI结合事件。我们最初提出该方法的设想，是源于希望评估微小的亚显微多聚体形式的突变亨廷顿蛋白在细胞内是如何形成的。该方法的可视化演示至关重要，因为数据分析步骤在技术上较为复杂，难以学习。本视频将演示实验操作流程：步骤一至三由本实验室研究助理 Yasmin Ranson 演示数据分析过程；步骤四由本实验室研究生 Sevki GaN 演示，使用标准的细胞培养方法培养您感兴趣的细胞系，并准备可用于转染的活细胞成像载片。准备贴壁细胞的培养物，并转染含有目的TC标签基因的质粒。根据所选的转染方法，设置阳性对照和阴性对照非常重要，以便评估对TC标签的特异性结合程度，并在采集共聚焦显微图像时评估不同通道间荧光的漂移情况。因此，在进行双色实验时，应确保制备单色样品，即分别单独表达荧光蛋白，以及尽可能制备与T ctech蛋白结合的样品（如与flesh或vs结合）。但不含荧光蛋白。转染后一至两天，用300微升预温的Hank's平衡盐溶液（HBSS）轻轻冲洗细胞，用含10微摩尔的1,2-乙二硫醇（EDT）和1微摩尔荧光染料（flash or ash）的新鲜预温HBSS溶液。从细胞中移除HBSS后，轻柔地替换为300微升含荧光染料的培养基，在37摄氏度的组织培养箱中准确孵育30分钟。根据我们的经验，较长的孵育时间会显著增加背景荧光。轻轻吸去细胞中的标记溶液，加入 300 微升预热的 HBSS，其中含 250 微摩尔的二硫苏糖醇、巯基丙醇或 BAL，在 37 摄氏度下孵育 15 分钟。通过轻柔吸液去除洗涤溶液，再加入 300 微升预热的 HBSS。经过此洗涤步骤后，可使用多聚甲醛固定细胞，但我们发现这会增加非特异性背景荧光。因此，我们通常在室温下对活细胞进行成像。此外，标记前对细胞进行固定会阻止双功能染料的结合。开始在共聚焦显微镜上对细胞进行成像时，需为各个

reashflash-labeling-image-analysis-tetracysteine-sensor-proteins

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科研

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生物学

ReAsH / FLASH标签和图像分析Tetracysteine​​传感器蛋白在细胞中

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学习使用双砷染料FlAsH和ReAsH标记活细胞中的四半胱氨酸标签蛋白，并通过共聚焦显微镜和ImageJ软件进行定量结合分析。该方法可用于研究蛋白质构象变化。

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