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卵巢外表面的上皮细胞可能发生恶性转化,转变为可生长为卵巢肿瘤的癌细胞。
为了分离这些上皮性卵巢癌细胞(EOC),首先取卵巢肿瘤标本并将其切成小块。将切碎的组织转移至含有消化缓冲液的离心管中,缓冲液需添加所需的蛋白酶。
这些蛋白酶可降解组织中的细胞外基质蛋白,使上皮性卵巢癌细胞、红细胞以及少量解离的成纤维细胞释放到悬浮液中。
将细胞悬液通过滤网过滤,以分离悬浮的单细胞与未解离的组织碎片。离心悬浮液,使上皮卵巢癌细胞(EOC细胞)、红细胞和成纤维细胞沉淀。弃去含有酶的上清液。
将细胞沉淀重悬于上皮细胞生长培养基中,并转移至培养皿内。培养后,使卵巢上皮癌细胞和成纤维细胞贴附于培养皿底部,而红细胞则悬浮于培养基中。
通过更换培养基去除悬浮的红细胞。随着时间推移,培养基可促进上皮性卵巢癌细胞相对于成纤维细胞的选择性生长,从而形成原代卵巢癌细胞的单层。
从手术室采集样本后,将其置于冰上并运送至实验室。仍在运输容器内时,将样本放入生物安全柜中。将样本从50毫升锥形管转移至含有10毫升新鲜冰冷PBS的60毫米×60毫米培养皿中。
接下来,使用无菌剃刀片将样本进一步切成2毫米或更小的组织块。然后,在15毫升锥形管中用含dispase II的DMEM处理样本。将切碎的组织转移至含有DMEM和dispase II的混合管中。随后,将样本在5%二氧化碳、37摄氏度条件下孵育30分钟。每隔5分钟手动振荡细胞悬液,以确保充分消化。
孵育后,将细胞悬液通过置于50毫升锥形管上方的70微米孔径细胞筛网。使用注射器活塞轻轻按压筛网。弃去筛网上方未解离的组织,收集流入50毫升无菌锥形管中的细胞悬液。
接下来,在 4 摄氏度条件下,以 320 × g 离心锥形管 7 分钟。弃去上清液,并将细胞沉淀重悬于 10 毫升含有 10% FBS 和 1% PS 的 DMEM 培养基中。然后,将细胞悬液转移至培养皿中,并在 5% 二氧化碳和 37 摄氏度条件下孵育。初次接种后 24 小时更换培养基,以去除培养物中的细胞碎片以及大部分红细胞。
最后,在接下来的两周内每三天更换一次培养基,此后原代EOC细胞培养物即可用于后续实验应用。