0 次观看 • 3:21 分钟 • April 30th, 2023
为了分离和纯化肽段,首先从含有消化后肽段混合物的蛋白质裂解液悬液开始。
使用三氟乙酸或基于三氟乙酸(TFA)的试剂处理混合物。这种阴离子或带负电荷的试剂可与肽段上的碱性或带正电荷的残基形成离子对复合物,从而屏蔽其电荷并提高肽段的疏水性。
现在,组装一个反相高效液相色谱(RP-HPLC)柱,该色谱柱包含以多孔硅胶为基质的固定相,并固定有非极性疏水性配体。向色谱柱中加入适用于肽类的平衡缓冲液,以在上样前对固定相进行预处理。
现在将酸化后的样品上样到色谱柱中。在柱内,疏水性肽段会选择性地吸附到固定相的疏水配体上。用洗涤缓冲液冲洗色谱柱,以洗去未结合或不需要的组分。
接下来,将一种极性较弱、疏水性较高的有机洗脱缓冲液通过色谱柱。由于肽段对洗脱缓冲液具有选择性亲和力,因此会从色谱柱基质上解吸下来。
收集含有肽段的洗脱液。将洗脱液冻干以去除水分,获得纯度高且稳定的肽段干粉。
为了酸化样品,每毫升裂解液中加入约20微升5%三氟乙酸(TFA)。充分混匀管内液体,并使用pH试纸测定pH值。如有必要,可额外添加5% TFA将pH值调节至2.5。接下来,将C18柱的短端连接至真空 manifold。将真空压力调节至17至34 kPa之间后,使用3毫升100%乙腈和玻璃移液管润洗柱子。
使用玻璃移液管,加入两份各3毫升的0.1%三氟乙酸(TFA)对色谱柱进行平衡。然后将酸化后的样品加载到色谱柱上。用三份各3毫升的0.1% TFA溶液洗涤色谱柱。接着加入2毫升含40%乙腈(ACN)和0.1% TFA的洗脱液,洗脱样品,并将洗脱液收集到两个玻璃培养管中,每管2毫升。用Parafilm封口膜覆盖收集管,在封口膜上用20号针头扎3至5个小孔,随后将样品冷冻干燥过夜。
本文详细介绍了一种使用反相高效液相色谱法(RP-HPLC)从蛋白质裂解液中分离和纯化肽段的方法。该过程包括用三氟乙酸处理裂解液以增强肽段的疏水性,随后通过一系列洗涤和洗脱步骤获得纯化的肽段。
通过反相高效液相色谱法(RP-HPLC)进行肽段纯化,可从复杂的裂解液中可靠地分离消化后的肽段,支持药物发现中的后续蛋白质组学分析。该方法通过提供高纯度的肽段样品用于机制研究和生物标志物发现,从而增强靶点验证。该技术解决了样品制备中的关键瓶颈问题,提高了早期发现工作流程的可重复性和数据质量。
该方法适用于从样本制备到分析检测的整个发现流程,能够实现可靠的肽段生成,用于质谱分析和功能检测。
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最后更新:22 八月 2026