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肠道内壁布满突起结构(绒毛)和凹陷结构(隐窝)。隐窝即肠腺,主要负责分泌消化酶。
为了分离小肠隐窝,首先将麻醉后的小鼠仰卧固定在解剖板上。使用剪刀纵向解剖腹膜,以暴露消化系统。
找到小肠,并轻轻将其从鼠体中提起。在小肠基部剪断。将采集的小肠转移至含有适当缓冲液的培养皿中。沿纵轴剪开小肠,暴露肠腔。
将肠道管腔面朝上放置于切板上,以暴露绒毛。用倾斜的玻璃片在肠表面来回刮擦,以刮除绒毛,从而完全暴露隐窝。
将肠组织切成微小片段,并将这些片段转移至含有冰冻缓冲液的离心管中,以确保隐窝结构受到最小程度的损伤。
接下来,用EDTA处理并孵育。EDTA可使整个隐窝从肠壁上松脱。移除含有EDTA的废液。加入新鲜缓冲液,用移液器吹打以使隐窝从肠壁上脱离。
将含有隐窝的上清液收集到新的离心管中。向离心管中加入适量的培养基,离心以沉淀隐窝。
用剪刀纵向切开腹膜。用镊子夹住胃部,从此处开始,使用肠剪横向将胃切成两半。将肠管拉出,并置于含有PBS的培养皿中。操作时,先将钝头端插入胃内,轻轻推动通过幽门。
用剪刀剪开,并用镊子牵拉。将整个小肠纵向完全切开后,用镊子夹住小肠,以U形动作在冷的PBS溶液中轻轻冲洗,清洗残留的粪便。待所有粪便残留物清除后,将小肠管腔面向上平铺于切板上。
管腔面因缺乏血管且与外层相比颜色较浅而易于识别。用玻片沿压平的肠段轻轻刮取,以去除绒毛。在整个组织长度上重复此操作两次。然后,用无菌外科刀片将小肠切成2至5毫米长的小段。
将小肠组织片段放入含有10毫升冰上预冷的PBS的50毫升离心管中。通过在PBS中反复吹打去除组织碎片上的残留杂质。弃去上清液,并重复此步骤直至PBS完全澄清。接着,加入15毫升冷PBS,使PBS的最终总体积达到25毫升。加入2毫摩尔EDTA,并在4摄氏度下于旋转摇床上孵育45分钟。
弃去 PBS/EDTA 后,加入 10 毫升 PBS,通过剧烈吹打组织碎片使隐窝脱落,然后收集上清液。重复该步骤四次。加入培养基至终体积为 50 毫升。通过离心收集细胞沉淀。最后,在离心收集隐窝之前,将沉淀重悬于 10 毫升培养基中。