0 次观看 • 4:10 分钟 • April 30th, 2023
小鼠大脑由三层脑膜构成——最外层的硬脑膜、中间的蛛网膜以及最内层的软脑膜。
在脑的后部区域,蛛网膜和软脑膜之间存在一个充满脑脊液(CSF)的蛛网膜下腔,称为小脑延髓池。
为进行肿瘤细胞的颅池注射,首先取一只已麻醉的小鼠模型。通过去除小鼠头部腹侧表面的毛发来准备小鼠。
现在,将小鼠置于俯卧位,并将其头部固定于立体定位仪上。调整小鼠鼻部位置,使其略微向下倾斜,以使脊柱与小脑延髓池处于同一水平。
使用剪刀在脑部后端、耳部水平位置做一较小的正中切口。
小心地将浅层肌肉层拨开。小脑延髓池可被观察到,呈倒三角形,表面覆盖着透明的硬脑膜。
接下来,取一支含有循环肿瘤细胞悬液的注射器。
保持周围肌肉组织牵开,将注射器插入硬脑膜下方,刺穿蛛网膜。此步骤可将肿瘤细胞直接注射到枕大池的脑脊液中。
最后,使用伤口夹闭合切口部位,并让小鼠恢复。
首先,以每公斤体重1毫克的剂量,对小鼠进行皮下注射缓释布托啡诺。将小鼠麻醉后,准备手术。修剪手术区域及其周围足够范围的毛发,以防止毛发污染切口部位。
剃除头部整个表面的毛发,并使用无菌技术准备皮肤。然后,从部位中心向外围涂抹杀菌性皮肤消毒剂,直至充分浸润,并待其自然干燥。
调整身体位置,确保脊柱与小脑延髓池保持水平。在对尾巴施加轻微牵引的同时,用胶带固定尾根部以稳固尾巴。
使用无菌巾或带粘性的无菌塑料敷料覆盖手术区域,以防止污染。将颈部完全伸展,从耳廓之间稍靠后的位置开始,沿枕骨向下轻轻施压,用手术剪尖端沿中线向尾侧划开。
在可触及的凹陷处稍上方做一长度为3至5毫米的正中切口。用30G Hamilton注射器吸取5微升细胞悬液。使用尖端宽度为1至2毫米的钝头镊子轻轻按压小脑延髓池。
将镊尖以闭合状态插入,同时施加向下的压力并张开镊尖以分离硬脑膜。重复钝性分离操作,直至硬脑膜清晰可辨,且暴露区域内的相关血管可见。
用镊子固定并牵开周围肌肉组织。将一根30G无芯针头插入硬脑膜下方,观察针尖斜面,确保针头仅伸入至斜面稍前方即可。
缓慢推出注射器活塞,将细胞注入硬脑膜下方。若发现注射部位有渗漏,可用棉签轻轻按压。使用伤口夹或微量皮肤黏合剂闭合皮肤。
术后第一周内每天监测小鼠状况。若小鼠出现疼痛或痛苦迹象,根据兽医咨询和指示,可给予每千克体重10毫克的卡洛芬皮下注射,每12至24小时一次,最多持续5天。
本文描述了在小鼠模型中进行小脑延髓池注射肿瘤细胞的操作步骤。该技术包括精细的手术准备和操作过程,以确保将细胞准确注入脑脊液中。
该手术技术可将肿瘤细胞直接递送至小鼠模型的中枢神经系统,为研究肿瘤向脑膜的转移扩散提供了具有生理相关性的系统。通过模拟软脑膜疾病的进展过程,该方法有助于在肿瘤药物研发中进行靶点验证和机制性风险评估。该技术可提高对靶向中枢神经系统疗法在临床前评价中的预测可靠性。
该方法通过在靶点验证与先导化合物优化阶段之间建立中枢神经系统转移模型,整合到肿瘤学发现工作流程中。
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最后更新:22 八月 2026