基于 SEC 的小胶质细胞衍生的细胞外囊泡分离:一种从小胶质细胞条件培养基中分离细胞外囊泡的技术

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小胶质细胞以细胞外囊泡或 EV 的形式将免疫介质(包括较大的凋亡小体和较小的微量囊泡)释放到体外生长培养基中。

要分离 EV,首先服用小胶质细胞调节培养基。该培养基含有小胶质细胞以及释放的EV。离心培养基以沉淀细胞。

含有EV,碎片和蛋白质聚集体的上清液收集在新鲜管中。再次离心以去除细胞碎片和大的凋亡体。

将上清液转移到超速离心管中。高速离心。

丢弃含有废培养基的上清液,并将EV和蛋白质聚集体沉淀重悬于所需的缓冲液中。

同时,取一根尺寸排阻色谱柱,其底部装有适当的过滤器。

用由球形凝胶珠组成的凝胶过滤基质紧密填充色谱柱,形成具有规定孔径的多孔筛。

EV 和蛋白质聚集体悬浮液加载到固定相的顶部。

当悬浮液穿过色谱柱时,较大尺寸的 EV 穿过凝胶珠之间的颗粒间空间,以较短的路径移动。相比之下,较小尺寸的蛋白质聚集体沿着更长的路径进入孔隙。

因此,EV首先从色谱柱中洗脱出来。

收集含有 EV 的馏分并将它们用于进一步分析。

条件培养基从小胶质细胞或巨噬细胞培养物转移到锥形管中,并以 1,200 x g 离心 10 分钟以沉淀细胞。将上清液转移到新的锥形管中,再离心20分钟以消除细胞凋亡小体。

然后,将上清液转移到 10.4 毫升聚碳酸酯管中。将试管放入 70.1 Ti 转子中,并在 4 摄氏度下以 100,000 x g 超速离心 90 分钟,以沉淀 EV。离心后,弃去上清液并将沉淀重悬于 200 微升 0.2 微米过滤的 PBS 中。

要分离EV,请通过清洗和灭菌玻璃色谱柱并在底部放置60微米过滤器来制备自制的尺寸排阻色谱柱。将色谱柱与交联琼脂糖凝胶过滤基质堆叠在一起,形成直径为 0.6 厘米、高度为 20 厘米的固定相。

然后,用 50 毫升 0.2 微米过滤的 PBS 冲洗相。如有必要,将色谱柱存放在 4 摄氏度以备后用。将重悬的EV沉淀放在固定相的顶部,并收集20个250微升的连续馏分,同时继续将PBS添加到固定相的顶部。馏分可以储存在零下 20 摄氏度。

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Last updated: 18 July 2026