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在完整的组织中,细胞会将细胞外囊泡(EVs)释放到间质液中。这些囊泡包括凋亡小体、微囊泡和外泌体。EVs 在维持细胞间通讯方面发挥着重要作用。
为了提取EVs,首先取一份完整的组织样本。
使用适当的解离缓冲液处理组织。解离缓冲液的组分可破坏组织中存在的细胞外基质,最终使细胞松散分离。
将悬液转移至匀浆器中,进一步进行机械破碎,以解离组织并释放细胞。
接下来,将匀浆液以低速离心,使细胞和组织碎片沉淀,而细胞外囊泡保留在上清液中。
将上清液转移至新的离心管中。高速离心以沉淀大部分较大尺寸的凋亡小体,使较小尺寸的细胞外囊泡(EVs)保留在上清液中。
用注射器收集含有细胞外囊泡的上清液。过滤组分以去除任何残留的凋亡小体,并收集小尺寸的细胞外囊泡群体。
离心滤液以获得沉淀中的细胞外囊泡(EVs)。弃去剩余缓冲液,并将EV沉淀重悬于蔗糖溶液中。该溶液可为EVs提供等渗环境,以维持其形态。
现在,将EV悬液在4°C下保存,以备后续使用。
首先,每处理 0.4 至 1.0 克组织,需在 Hibernate-E 培养基中配制 10 毫升解离缓冲液。将新鲜或冷冻的完整组织加入 50 毫升离心管中的缓冲液内,于 37 摄氏度的温水浴中孵育 20 分钟。
此后,在解离缓冲液中加入蛋白酶和磷酸酶抑制剂,使其终浓度为1×。将含有组织的溶液倒入松配合的Dounce匀浆器中。每个样本约使用30次缓慢的研磨冲程,轻柔地解离组织。
然后,将解离的组织和缓冲液转移至50毫升的锥形管中。在4摄氏度下以500 ×g离心5分钟,使细胞及残留的纤维或凝聚组织碎片沉淀。
将上清液转移至洁净的50毫升锥形管中,在4摄氏度条件下以2,000 ×g离心10分钟,以沉淀并弃去大量细胞碎片。
将此上清液转移至一个洁净的50毫升锥形管中,在4摄氏度下以10,000 ×g 离心40分钟,以沉淀任何不需要的较大囊泡或小型凋亡小体。将上清液经0.45微米滤器过滤,转入一个洁净的12毫升超速离心管中。
接下来,在 4 摄氏度条件下,以 100,000 ×g 离心 2 小时,使小细胞外囊泡(EVs)沉淀。倒去上清液,将超速离心管倒置放置 5 至 10 分钟,并频繁轻敲,以去除管壁残留的液体。
然后,将EV沉淀重悬于1.5毫升0.25摩尔的蔗糖缓冲液中。用封口膜覆盖管口,涡旋使EV充分溶解。室温下轻轻摇动超速离心管15至20分钟,再涡旋一次。
以低于 1,000 x 的速度短暂离心试管 g 回收管底的液体悬浮液。如有需要,可将悬浮液在4摄氏度下保存过夜。