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在病理条件下,活化的微胶质细胞——特化的脑部巨噬细胞——有助于清除病原体和细胞碎片。这些微胶质细胞表达独特的受体,使其区别于其他巨噬细胞。
为了分离小胶质细胞,首先从 源自转基因斑马鱼的脑细胞培养物,可在不同细胞类型中表达特定的荧光分子。
该培养物包含表达红色荧光的神经元、表达绿色荧光的巨噬细胞以及不具荧光的的小胶质细胞。
现在加入封闭试剂,并在间歇性振荡条件下孵育培养物。封闭试剂可结合细胞上的非特异性位点,从而降低背景信号。
接下来,加入一抗并进行孵育。这些抗体可结合小胶质细胞表面表达的特异性受体。
离心培养物并移除含有未结合抗体的上清液。将细胞沉淀重悬于新鲜培养基中。
随后加入荧光染料标记的二抗并进行孵育。这些二抗会与一抗结合,并使小胶质细胞-抗体复合物呈现红色。
离心培养物并去除未结合的抗体。将沉淀重悬于新鲜培养基中。
过滤细胞以去除任何碎片。
使用荧光激活细胞分选仪(FACS),根据细胞大小和荧光特性对小胶质细胞群体进行分选。
分离的小胶质细胞可用于进一步的应用。
为了对小胶质细胞进行免疫染色,使用 0.3 毫升培养基 A 加 2% NGS 重悬细胞沉淀。然后将细胞分装到三个 1.5 毫升离心管中:一管用于未染色细胞,以检测自发荧光;一管用于检测二抗对小胶质细胞的非特异性结合;第三管作为检测样本。
向所有试管中加入1%低内毒素无叠氮化物(LEAF)以阻断免疫球蛋白Fc区与CD16/CD32之间的相互作用。然后,每5分钟轻柔振荡混匀一次,共孵育10分钟。
接着,向第三支试管中加入 4C4 抗体,每 10 分钟轻柔振荡一次,共孵育 30 分钟。然后,在 300 × g 和 4 摄氏度条件下离心 10 分钟。
弃去上清液后,用0.5毫升含2% NGS的A培养基将沉淀洗涤一次,然后再次离心。用0.5毫升含2% NGS的A培养基重悬细胞沉淀,再加入1% LEAF,于轻柔振荡条件下每5分钟混匀一次,共孵育10分钟。
向第2和第3管中加入二抗,并将试管置于避光环境中。离心后弃去上清液,用0.5毫升含2% NGS的A培养基将样品洗涤两次,然后用1毫升含2% NGS的A培养基重悬细胞沉淀。
将细胞悬液通过35微米细胞滤器帽过滤,转移至预冷的5毫米FACS管中,置于冰上并避光保存。最后,根据文本方案进行FACS分选和RNA提取。