通过免疫染色偶联细胞分选分离小胶质细胞:一种使用荧光激活细胞分选从斑马鱼脑细胞中分离小胶质细胞的免疫染色方法

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在病理条件下,激活的小胶质细胞--专门的脑巨噬细胞--有助于消除病原体和细胞碎片。这些小胶质细胞表达独特的受体,将它们与其他巨噬细胞区分开来。

要分离小胶质细胞,首先是源自转基因斑马鱼的脑细胞培养物,在不同细胞类型中表达特定的荧光分子。

培养物包含表达红色荧光的神经元、表达绿色荧光的巨噬细胞和非荧光小胶质细胞的混合物。

现在,加入封闭试剂并在间歇性搅拌下孵育培养物。封闭试剂与细胞上的非特异性位点结合并降低背景信号。

接下来,加入一抗并孵育。这些抗体与小胶质细胞表面表达的特定受体结合。

心培养物并除去含有未结合抗体的上清液。将细胞沉淀重悬于新鲜培养基中。

随后,加入荧光染料偶联二抗并孵育。这些抗体与一抗结合,并赋予小胶质细胞-抗体复合物红色。

心培养物并去除未结合的抗体。将沉淀重悬于新鲜培养基中。

过滤细胞以去除任何碎屑。

使用荧光激活细胞分选仪或 FACS,根据小胶质细胞的细胞大小和荧光对小胶质细胞群进行分选。

分离的小胶质细胞可用于进一步的应用。

要对小胶质细胞进行免疫染色,请使用 0.3 毫升培养基 A 加 2% NGS 重悬细胞沉淀。然后,将细胞分成三个 1.5 毫升的试管:一个用于未染色的细胞以测量自发荧光,一个用于测量二抗与小胶质细胞的非特异性结合,第三个用于测试。

向所有试管添加 1% 低内毒素,无叠氮化物 (LEAF),以阻断 CD16/CD32 与免疫球蛋白 Fc 结构域的相互作用。然后,将细胞孵育 10 分钟,每 5 分钟轻轻搅拌一次。

接下来,加入第三个管中,加入 4C4 抗体并孵育 30 分钟,每 10 分钟轻轻搅拌一次。然后,将试管以 300 x g 和 4 摄氏度旋转 10 分钟。

弃去上清液后,用0.5毫升培养基A加2%NGS洗涤沉淀一次,然后再次旋转试管。用 0.5 毫升培养基 A 加 2% NGS 重悬细胞沉淀,然后加入 1% LEAF 并孵育细胞 10 分钟,每 5 分钟轻轻搅拌一次。

在试管 2 和 3 中,添加二抗并将试管置于黑暗中。旋转试管并丢弃上清液后,使用 0.5 毫升培养基 A 加 2% NGS 洗涤样品两次,然后用 1 毫升培养基 A 加 2% NGS 重悬细胞沉淀。

细胞悬液通过 35 微米细胞过滤器盖,并将其转移到避光冰上的冷 5 毫米 FACS 管中。最后,根据文本方案进行FACS分选和RNA提取。

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Last updated: 18 July 2026