通过免疫染色联合细胞分选法分离小胶质细胞:一种利用荧光激活细胞分选从斑马鱼脑细胞中分离小胶质细胞的免疫染色方法 关键词:小胶质细胞,免疫染色,荧光激活细胞分选,斑马鱼,脑细胞,细胞分离

0 次观看3:50 分钟 • April 30th, 2023

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在病理条件下,活化的微胶质细胞——特化的脑部巨噬细胞——有助于清除病原体和细胞碎片。这些微胶质细胞表达独特的受体,使其区别于其他巨噬细胞。

为了分离小胶质细胞,首先从  源自转基因斑马鱼的脑细胞培养物,可在不同细胞类型中表达特定的荧光分子。

该培养物包含表达红色荧光的神经元、表达绿色荧光的巨噬细胞以及不具荧光的的小胶质细胞。

现在加入封闭试剂,并在间歇性振荡条件下孵育培养物。封闭试剂可结合细胞上的非特异性位点,从而降低背景信号。

接下来,加入一抗并进行孵育。这些抗体可结合小胶质细胞表面表达的特异性受体。

离心培养物并移除含有未结合抗体的上清液。将细胞沉淀重悬于新鲜培养基中。

随后加入荧光染料标记的二抗并进行孵育。这些二抗会与一抗结合,并使小胶质细胞-抗体复合物呈现红色。

离心培养物并去除未结合的抗体。将沉淀重悬于新鲜培养基中。

过滤细胞以去除任何碎片。

使用荧光激活细胞分选仪(FACS),根据细胞大小和荧光特性对小胶质细胞群体进行分选。

分离的小胶质细胞可用于进一步的应用。

为了对小胶质细胞进行免疫染色,使用 0.3 毫升培养基 A 加 2% NGS 重悬细胞沉淀。然后将细胞分装到三个 1.5 毫升离心管中:一管用于未染色细胞,以检测自发荧光;一管用于检测二抗对小胶质细胞的非特异性结合;第三管作为检测样本。

向所有试管中加入1%低内毒素无叠氮化物(LEAF)以阻断免疫球蛋白Fc区与CD16/CD32之间的相互作用。然后,每5分钟轻柔振荡混匀一次,共孵育10分钟。

接着,向第三支试管中加入 4C4 抗体,每 10 分钟轻柔振荡一次,共孵育 30 分钟。然后,在 300 × g 和 4 摄氏度条件下离心 10 分钟。

弃去上清液后,用0.5毫升含2% NGS的A培养基将沉淀洗涤一次,然后再次离心。用0.5毫升含2% NGS的A培养基重悬细胞沉淀,再加入1% LEAF,于轻柔振荡条件下每5分钟混匀一次,共孵育10分钟。

向第2和第3管中加入二抗,并将试管置于避光环境中。离心后弃去上清液,用0.5毫升含2% NGS的A培养基将样品洗涤两次,然后用1毫升含2% NGS的A培养基重悬细胞沉淀。

将细胞悬液通过35微米细胞滤器帽过滤,转移至预冷的5毫米FACS管中,置于冰上并避光保存。最后,根据文本方案进行FACS分选和RNA提取。

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最后更新:15 八月 2026