0 次观看 • 4:21 分钟 • July 8th, 2025
在中枢神经系统中,周细胞是一类多功能细胞,包裹着形成毛细血管内层细胞衬里的内皮细胞。周细胞有助于调节血流并维持大脑稳态。
为了分离周细胞,首先取含有冷冻牛脑毛细血管的冻存管。解冻后,将内容物转移至含有所需培养基的离心管中。离心以沉淀毛细血管。弃去含有冻存液的上清液。用培养基重悬毛细血管沉淀物,并将悬液接种到包被有细胞外基质蛋白的培养瓶中。
孵育以使毛细血管贴附于培养瓶中的包被层。更换为含肝素的培养基。在培养过程中,细胞外基质蛋白包被可促进周细胞从毛细血管片段迁移并增殖,而肝素则可刺激内皮细胞迁移。
用含有肝素的培养基替换用过的培养基。随着时间推移,周细胞会伸出细长的突起,并牢固地贴附在培养瓶上。在底物空间有限的情况下,内皮细胞增殖并形成接触抑制的单层细胞。当周细胞达到适当密度时,移除培养基,并用缓冲液清洗培养瓶。
使用胰蛋白酶-EDTA 从培养瓶中消化并分离松散贴壁的内皮细胞。随后加入培养基以中和胰蛋白酶-EDTA 的活性。反复用培养基洗涤,以去除已脱落的内皮细胞。加入新鲜培养基,并确保周细胞仍贴附在培养瓶上。将富含周细胞的培养物置于培养箱中孵育,使其增殖。
首先,在37摄氏度水浴中解冻一管毛细血管。毛细血管完全解冻后,将其转移至离心管中,加入30毫升DMEM-完全培养基,于500 × g 离心5分钟。随后弃去上清液,将沉淀物重悬于10毫升新鲜DMEM-完全培养基中。将细胞悬液转移至已包被的T75培养瓶中,在37摄氏度、含10%二氧化碳的培养箱中孵育4至6小时,使毛细血管贴壁。孵育结束后,在光学显微镜下观察培养瓶中的细胞状态。
毛细血管片段现在应已贴附在培养瓶底部。在接种毛细血管后的第4天,在显微镜下观察以确认其融合度约为60%至70%。吸除培养基,用PBS轻轻洗涤细胞。加入2毫升解冻的胰蛋白酶-EDTA溶液,将培养瓶放入培养箱中孵育1至3分钟,期间频繁取出培养瓶并在显微镜下观察细胞脱落情况。当内皮细胞开始变圆时,轻轻敲击培养瓶以促进细胞脱落。
当细胞脱落后,加入10毫升DMEM-完全培养基以终止胰蛋白酶消化。用培养基冲洗培养瓶数次,吸出内皮细胞悬液,该悬液现在可用于其他用途。向培养瓶中加入10毫升DMEM-完全培养基,置于光学显微镜下观察,确认周细胞仍存在并贴壁。随后将培养瓶放回培养箱中,使富含周细胞的培养物继续生长。
本文讨论了从牛脑毛细血管中分离和培养周细胞的方法。周细胞在调节血流和维持脑内稳态中发挥着关键作用。
在无内皮细胞污染的情况下,可靠地分离和培养原代脑周细胞,满足了神经血管研究中对疾病相关体外模型的关键需求。该方法提高了中枢神经系统药物研发早期发现和靶点验证的预测可信度。通过支持对周细胞功能及神经血管相互作用的机制研究,该技术有助于实现转化研究的连续性。
这种周细胞分离方法适用于早期发现与临床前模型开发之间的衔接,为后续的筛选和机制研究奠定了基础。
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最后更新:29 八月 2026