0 次观看 • 3:33 分钟 • July 8th, 2025
突触体是富含突触小泡的神经元分离组分。这些突触体通过一种称为吞噬作用的过程,被星形胶质细胞(脑内的一类免疫细胞)所吞噬。
为了在体外研究星形胶质细胞介导的吞噬作用,首先取一个含有星形胶质细胞单层的培养板。然后向培养板中加入 pH 指示剂标记的突触体悬液。该指示剂染料仅在低 pH 条件下具有特异性荧光特性。将培养板孵育所需的时间。
孵育期间,突触体外膜上存在的磷脂酰丝氨酸(PS)可与其星形胶质细胞膜上相应的PS受体结合,从而促进突触体在基底的附着。吸去孔板中的废弃培养基及未结合的突触体。
接下来,向培养板中添加促进吞噬作用的因子并进行孵育。随后,使用荧光显微镜对培养板进行成像。星形胶质细胞在结合表面后会吞噬突触体,使其进入吞噬体。一旦进入吞噬体,低pH环境将导致指示染料分子强烈荧光。
实时成像显示,星形胶质细胞吞噬的、与pH指示剂偶联的突触体呈现出明亮的荧光斑点。最终,这些荧光斑点消失,表明突触体被成功降解。
为了对突触体的吞噬过程进行活体成像,首先移除融合星形胶质细胞培养板中每个孔的上清液,并用1毫升DPBS快速洗涤细胞三次,每次洗涤使用1毫升DPBS。最后一次洗涤后,向每孔加入300微升免疫筛选星形胶质细胞基础培养基、5微升pH指示剂偶联的突触体,以及任何可调节胶质细胞吞噬作用的其他因子。
将突触体置于37摄氏度、5%二氧化碳条件下,使其沉降至孔底,并与星形胶质细胞上的磷脂酰丝氨酸受体结合。40分钟后,弃去上清液,每孔用1毫升DPBS迅速但轻柔地洗涤三次。
最后一次洗涤后,向相应的孔中加入500微升新鲜培养基(补充目标因子),并将培养板转移至活细胞成像仪器。选择成像位置,调节焦距、曝光时间、亮度和LED功率,并根据实验需求设置活细胞成像的图像格式、时间间隔和总循环次数。随后,开始对吞噬实验进行活细胞成像。
本研究探讨了星形胶质细胞介导的突触体吞噬过程,突触体是富含突触小泡的神经元组分。该方法包括使用连接pH指示剂的突触体悬液,以在体外可视化星形胶质细胞的吞噬过程。
该检测方法可实现对星形胶质细胞介导的吞噬作用进行实时定量,这是突触修剪和神经炎症中的关键机制。该方法提供了一种活细胞成像读出手段,可用于筛选调节胶质细胞吞噬活性的化合物,支持在神经退行性疾病模型中进行靶点验证。该技术可提供定量的动态数据,有助于降低关于神经-免疫相互作用的早期研究假设的风险。
该检测适用于从靶点命中验证到先导化合物优化的整个发现过程,尤其适用于神经免疫调节类化合物。
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最后更新:22 八月 2026