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在哺乳动物卵巢中,来自窦状卵泡的完全成熟卵母细胞仅需在体外培养中进行短暂的成熟过程,这是体外胚胎发生的关键因素。这些卵母细胞被一群体细胞包围,必须通过去颗粒细胞处理将其去除,以利于精子注射。
为了分离裸鼠的窦状卵泡卵母细胞,首先使用已注射孕马血清促性腺激素以促进卵泡生长的雌性小鼠,并使其处于麻醉状态。对小鼠进行消毒处理后,在下腹部做切口。
将肠管外置以暴露位于V形输卵管顶端的卵巢。解剖一侧卵巢,将其转移至预先平衡的培养基中,以维持卵母细胞的活性。在体视显微镜下,通过其特有的充满液体的腔隙识别窦状卵泡。
使用无菌针头穿刺卵巢中的窦状卵泡以释放卵母细胞。采用合适直径的移液管,小心抽吸卵母细胞,避免其受到机械损伤。避免抽吸卵泡细胞及其他组织碎片。
随后,将卵母细胞转移至多个覆盖矿物油的培养液滴中。此步骤有助于去除周围的体细胞,获得去颗粒细胞的卵母细胞。最后,将去颗粒细胞的卵母细胞转移至含有矿物油的新鲜培养液滴中,保存以备后续实验使用。
为收获卵巢,首先通过腹腔注射向3至6周龄的雌性小鼠注入2.5国际单位的孕马血清促性腺激素。两天后,在收获前约一小时,将一个无菌培养皿中加入M2培养基,并在第二个培养皿中加入数滴20微升的M2培养基,每滴覆盖1.5毫升矿物油。
然后,将所有培养皿转移至37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中,使培养基达到平衡状态。接着,使用无菌解剖剪在第一只激素注射小鼠的腹壁皮肤上剪开一个切口,随后在腹膜上剪开另一个切口。
使用无菌镊子将肠道移开,以定位从膀胱起始呈 V 形的输卵管。在肾脏下方找到卵巢后,夹住一侧输卵管,并在组织底部做一小切口,释放相应的卵巢。
重复上述步骤以收获另一侧卵巢,然后将两侧卵巢均置于盛有预先平衡的M2培养基的培养皿中。在分离窦状卵母细胞之前,用双手握住玻璃巴斯德吸管的两端,将其水平放置于本生灯火焰上方,以制备玻璃口吸管。
当玻璃开始熔化时,将移液管从火焰中取出,并迅速将仪器拉开。用指甲在移液管狭窄处附近用力剪断多余的玻璃,以缩短尖端,使毛细管内径达到约100微米。
使用合适直径的移液管非常重要;如果管径过细,卵母细胞会卡住、破碎并死亡。
然后,将移液管未改动的一端连接到吸管上。接着,将卵巢转移至含有1毫升预平衡M2培养基的培养皿中,并使用无菌胰岛素注射针头轻轻穿刺卵巢的窦状卵泡。
当卵母细胞释放后,用口吸管轻轻收集,注意避免吸入任何卵泡细胞或其他组织碎片。随后,迅速将每个卵母细胞依次通过多个预先平衡的M2培养基液滴,以去除附着在卵母细胞透明带上的所有卵丘细胞。卵母细胞去除卵丘细胞后,小心地将其沉降至新鲜平衡M2培养基单个液滴的底部。