CRISPR 连接体介导的多基因敲除:一种在小鼠肠道细胞中通过非同源末端连接途径同时敲除多个基因的技术

0 次观看4:13 分钟 • July 8th, 2025

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要使用 CRISPR-concatemer-Cas9 系统同时敲除多个基因,请从装有小鼠肠细胞悬液的试管开始。用 CRISPR-串联载体补充管,其中包含用于多个相互相邻整合的多个向导 RNA 或 gRNA 的表达盒。

每个 gRNA 盒都是定制设计的,可单独敲除预期基因。将编码Cas9核酸内切酶的表达载体添加到同一管中。电穿孔细胞-质粒混合物 - 一种使用电流促进质粒进入细胞的技术。在细胞内,CRISPR-concatemer 和 Cas9 载体的共表达分别形成 gRNA 序列和 Cas9 核酸酶。

每个 gRNA 序列与相应的 Cas9 酶结合,形成多个 Cas9-gRNA 复合物,这些复合物附着在宿主基因组中的靶位点。这种结合激活了 Cas9 酶,该酶在上游的原间隔区相邻基序 (PAM) 位点的两条 DNA 链中产生切口。这会导致目标 DNA 中出现双链断裂或 DSB。

在与靶基因没有任何同源序列的情况下,细胞的内源性修复机制(称为非同源末端连接)被触发,允许修复蛋白和激酶分子在断裂位点结合。后来,连接酶修复 DSB,导致靶基因序列的修饰。这些修饰破坏了基因的功能,导致多个基因敲除。

通过

将 9 毫升还原血清培养基添加到含有细胞悬液的 15 毫升管中开始此过程,并在室温下以 400G 离心 3 分钟。除去所有上清液,并将沉淀重悬于电穿孔溶液中。将总量 10 微克 DNA 添加到两个新管中。然后,加入电穿孔溶液至最终体积为 100 微升,并将细胞-DNA 混合物保持在冰上。

将细胞-DNA混合物转移到电穿孔比色皿中。将比色皿放入电穿孔室中。按下电穿孔器上的相应按钮测量阻抗,并确保其为 0.030 至 0.055 欧姆。根据文本协议中指示的设置进行电穿孔。向比色皿中加入 400 微升电穿孔缓冲液加 ROCK 抑制剂,然后将其所有内容物转移到 1.5 毫升管中。

室温下孵育 30 分钟,让细胞恢复。30分钟后,室温下400G旋转3分钟。除去上清液并将沉淀重悬于每孔 20 微升基质中。在 48 孔板中每孔接种约 1 x 104 至 1 x 105 个细胞,并加入 EGF 加 Noggin GSK-3 抑制剂、ROCK 抑制剂和 1.25% 二甲基亚砜培养基。在37摄氏度下孵育。

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最后更新:1 八月 2026