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为了利用CRISPR-concatemer-Cas9系统同时敲除多个基因,首先准备一个含有小鼠肠细胞悬液的离心管。向该管中添加包含多个向导RNA(gRNA)表达盒的CRISPR-concatemer载体,这些表达盒以彼此相邻的方式整合。
每个gRNA表达盒均经过定制设计,可分别敲除目标基因。将编码Cas9内切酶的表达载体加入同一离心管中。对细胞-质粒混合物进行电穿孔——该技术利用电流促进质粒进入细胞。在细胞内,CRISPR串联体与Cas9载体分别表达生成gRNA序列和Cas9核酸酶。
每条gRNA序列与相应的Cas9酶结合,形成多个Cas9-gRNA复合物,这些复合物结合到宿主基因组中的靶位点。这种结合会激活Cas9酶,使其在原间隔序列邻近基序(PAM)位点上游的DNA双链上各产生一个切口,从而在靶DNA中形成双链断裂(DSB)。
在缺乏与目标基因同源序列的情况下,细胞内源性修复机制(称为非同源末端连接)将被激活,使得修复蛋白和激酶分子能够在断裂位点结合。随后,连接酶修复双链断裂,导致目标基因序列发生改变。这些改变会破坏基因功能,从而实现多个基因的敲除。
开始此操作时,向含有细胞悬液的15毫升离心管中加入9毫升低血清培养基,在室温下以400G离心3分钟。吸除所有上清液,将沉淀重悬于电穿孔溶液中。向两个新离心管中各加入总量为10微克的DNA。然后加入电穿孔溶液至终体积为100微升,并将细胞-DNA混合物置于冰上保存。
将细胞-DNA混合物转移至电穿孔比色皿中。将比色皿放入电穿孔仪的腔室内。按下电穿孔仪上的相应按钮测量阻抗,确保其值在0.030至0.055欧姆之间。根据文本方案中指示的设置进行电穿孔操作。向比色皿中加入400微升电穿孔缓冲液和ROCK抑制剂,然后将其中所有内容转移至1.5毫升离心管中。
室温孵育30分钟,使细胞恢复。30分钟后,在室温下以400 × g离心3分钟。弃去上清液,将沉淀重悬于每孔20 µL基底膜基质中。在48孔板中每孔接种约1 × 104 至 1 × 105 个细胞,并加入含EGF、Noggin、GSK-3抑制剂、ROCK抑制剂和1.25%二甲基亚砜的培养基。于37 °C孵育。