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要使用 CRISPR-concatemer-Cas9 系统同时敲除多个基因,请从装有小鼠肠细胞悬液的试管开始。用 CRISPR-串联载体补充管,其中包含用于多个相互相邻整合的多个向导 RNA 或 gRNA 的表达盒。
每个 gRNA 盒都是定制设计的,可单独敲除预期基因。将编码Cas9核酸内切酶的表达载体添加到同一管中。电穿孔细胞-质粒混合物 - 一种使用电流促进质粒进入细胞的技术。在细胞内,CRISPR-concatemer 和 Cas9 载体的共表达分别形成 gRNA 序列和 Cas9 核酸酶。
每个 gRNA 序列与相应的 Cas9 酶结合,形成多个 Cas9-gRNA 复合物,这些复合物附着在宿主基因组中的靶位点。这种结合激活了 Cas9 酶,该酶在上游的原间隔区相邻基序 (PAM) 位点的两条 DNA 链中产生切口。这会导致目标 DNA 中出现双链断裂或 DSB。
在与靶基因没有任何同源序列的情况下,细胞的内源性修复机制(称为非同源末端连接)被触发,允许修复蛋白和激酶分子在断裂位点结合。后来,连接酶修复 DSB,导致靶基因序列的修饰。这些修饰破坏了基因的功能,导致多个基因敲除。
通过
将 9 毫升还原血清培养基添加到含有细胞悬液的 15 毫升管中开始此过程,并在室温下以 400G 离心 3 分钟。除去所有上清液,并将沉淀重悬于电穿孔溶液中。将总量 10 微克 DNA 添加到两个新管中。然后,加入电穿孔溶液至最终体积为 100 微升,并将细胞-DNA 混合物保持在冰上。
将细胞-DNA混合物转移到电穿孔比色皿中。将比色皿放入电穿孔室中。按下电穿孔器上的相应按钮测量阻抗,并确保其为 0.030 至 0.055 欧姆。根据文本协议中指示的设置进行电穿孔。向比色皿中加入 400 微升电穿孔缓冲液加 ROCK 抑制剂,然后将其所有内容物转移到 1.5 毫升管中。
在
室温下孵育 30 分钟,让细胞恢复。30分钟后,室温下400G旋转3分钟。除去上清液并将沉淀重悬于每孔 20 微升基质中。在 48 孔板中每孔接种约 1 x 104 至 1 x 105 个细胞,并加入 EGF 加 Noggin GSK-3 抑制剂、ROCK 抑制剂和 1.25% 二甲基亚砜培养基。在37摄氏度下孵育。