0 次观看 • 3:12 分钟 • July 8th, 2025
为了将外源 DNA 显微注射到 Anopheles 胚胎中,取所需数量的新鲜采集的、处于胚层前阶段的蚊卵。在此早期发育阶段,卵内含有尚未形成细胞结构的细胞核。
将船形卵放置在载玻片表面湿润的滤纸上边缘处。此步骤可确保胚胎充分水合,便于后续注射操作。将卵彼此相邻排列,使其腹面朝外暴露。
现在,取一支含有目标质粒溶液的细口显微注射针。使用解剖显微镜将注射针置于卵的后极附近——即生殖细胞前体所在的位置。以适当的角度插入注射针,使其穿透卵壳的外层(外 chorion)和内层(内 chorion),最终到达胚胎。
将质粒混合物注射到胚胎的卵黄中。轻轻抽出针头,使卵在适宜条件下生长。随着卵的发育,部分细胞核会迁移至后极,在此可整合显微注射的DNA。这些细胞核随后将发育为配子——即可产生可遗传的种系突变的生殖细胞。
观察成年蚊子的转化表型——后续世代中可观察到的特征,以确认显微注射成功。
使用微量加样器吸头将两微升(2 µL)DNA 混合物注入针头中。将针头插入针头架,并连接自动压力泵的管路。调整针头方向,使其与载玻片平面成 15 度角。
通过轻轻接触第一个卵子来打开针尖。然后,将针尖插入卵子后极约10微米处。成功的注射将导致卵子内细胞质出现轻微移动。
使用显微镜同轴载物台控制装置移动至下一个卵细胞以继续注射。为确保注射针尖端保持通畅并未堵塞,在进入另一个胚胎前按下“注射”按钮,并观察针尖开口处形成的小液滴。如果针头发生堵塞,请按下“清除”按钮以疏通针头,然后重复进行液滴观察测试。
根据需要调整压力,若针尖开口略微变大,需确保液滴尺寸保持较小。每根针注射约40至50枚卵。注射完成后,将卵冲洗至一个内衬滤纸并盛有50毫升去离子水的玻璃容器中。
本文介绍了一种将外源DNA显微注射到按蚊胚胎中的方法,重点针对蚊卵的早期发育阶段。该技术旨在促进可遗传的生殖系突变的基因改造。
该技术可在疾病传播媒介模型中实现精确的基因操控,有助于在早期发现阶段进行靶点验证和机制性风险排除。通过将外源DNA导入生殖系前体细胞,可产生可遗传的突变,从而支持功能基因组学研究和信号通路解析。该方法通过实现遗传构建体的稳定整合,用于表型筛选和转化生物标志物的匹配,从而提高临床前模型的预测可靠性。
该方法适用于从发现到临床前研究的连续过程,能够在早期生物学研究中进行假设验证、制备可用于检测的样品,并提供定量的表型读数,以支持决策是否进入下一阶段。
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最后更新:22 八月 2026