0 次观看 • 2:52 分钟 • July 8th, 2025
集落形成实验用于检测细胞增殖并形成集落的能力。
首先,将含有红细胞和单个核细胞(包括间充质干细胞或MSCs)的骨髓来源细胞悬液接种于培养板中的培养基内,并进行孵育。间充质干细胞会贴附于培养板底部,而红细胞和单个核细胞则保留在悬液中,随后被弃去。
加入含有生长因子的新鲜培养基以支持间充质干细胞(MSC)的存活。根据各自不同的增殖潜能,间充质干细胞会增殖并形成集落。
接下来,用甲醇处理菌落。甲醇可使细胞通透化,置换细胞内环境中的水,并使蛋白质变性,从而保存细胞结构。
将固定的菌落与吉姆萨染色液孵育——该染色液是亚甲蓝氧化产物的混合物,主要成分为碱性染料天青B和酸性染料伊红Y。当天青B扩散进入细胞后,其带正电荷的二聚体通过嵌入方式与细胞核中带负电荷的DNA结合,从而产生蓝色染色。
带负电荷的伊红Y单体随后与结合的亚甲蓝B二聚体上未被中和的正电荷相互作用,形成“伊红Y-亚甲蓝B复合物”,使染成蓝色的DNA颜色变为紫色。
在核糖体丰富的细胞质中,亚甲蓝B与带负电荷的RNA结合,但由于伊红Y难以穿透高度密集的核糖体,从而阻止了伊红Y-亚甲蓝B复合物的形成,使RNA染成蓝色。
现在,用缓冲液洗涤平板以去除多余的染料,并在空气中干燥。计数菌落数量,菌落表现为细胞簇,细胞核呈紫色,细胞质呈蓝色。
为进行集落形成单位(CFU)实验,每皿使用无菌水将储备液按1:10稀释,制备10毫升吉姆萨溶液。移除细胞培养皿中的培养基,并用PBS小心洗涤细胞。
用纯甲醇在室温下固定细胞 5 分钟,然后弃去甲醇并加入吉姆萨染液。在 37 摄氏度的湿化孵育箱中孵育 60 分钟。孵育结束后,用 PBS 洗涤细胞两次。随后,将培养板正面朝上置于纸巾上自然风干。用记号笔在培养板背面手动计数克隆集落。
本文介绍了集落形成实验,这是一种用于评估骨髓来源细胞(尤其是间充质干细胞(MSCs))增殖能力的方法。该过程包括接种细胞悬液、培养,并采用染色技术以观察所形成的集落。
间充质干细胞(MSC)增殖能力的定量评估对于细胞治疗和再生医学研发早期阶段的靶点验证和风险降低至关重要。经吉姆萨染色的克隆形成实验可提供一种标准化、可重复的检测方法,用于评估MSC的存活率和扩增潜能,从而提高临床前候选分子筛选的预测可靠性。该实验流程能够对不同细胞群体进行稳健比较,并为发现阶段及转化研究项目中的风险调整型推进决策提供依据。
吉姆萨染色的集落形成实验位于早期发现与临床前研究的交汇点,可在先导化合物筛选或转化研究之前,用于对间充质干细胞(MSCs)进行假设验证和功能验证。
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最后更新:29 八月 2026